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Contenido

Directorio DIRECTOR/EDITOR Biol. Manuel Reyes Fierro manuel.reyes@industriaacuicola.com ARTE Y DISEÑO Ana Gabriela Villalobos Vázquez diseno@industriaacuicola.com SUSCRIPCIONES Y CIRCULACION suscripciones@industriaacuicola.com VENTAS Verónica Sánchez Díaz ventas@industriaacuicola.com CONTABILIDAD Y FINANZAS C.P. Jorge René López Vega administracion@industriaacuicola.com

Artículos 4 6 10

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Reseña

Pesquera Delly: cultivando camarón en jaulas sumergibles

Investigación

El control de la Mancha blanca (WSSV) en Tailandia

Investigación

Estreptococosis en Litopenaeus vannamei cultivados Una nueva enfermedad bacteriana en los peneidos

Investigación

Camaronicultura ¿ Actividad sostenible o industria contaminante ?

Investigación

Bacterias nitrificantes y su aprovechamiento en la engorda de camarón

OFICINA MATRIZ Olas Altas Sur No. 71 5A Centro C.P. 82000 Tel./Fax: 669 981 85 71 Mazatlán, Sinaloa, México SUCURSAL Coahuila No. 55A entre Hidalgo y Allende C.P. 85000 Tel./Fax: 644 413 73 74 Cd. Obregón, Sonora, México COMENTARIOS Y SUGERENCIAS manuel.reyes@industriaacuicola.com

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La publicidad y promociones de las marcas aquí anunciadas son responsabilidad de las propias empresas. La información, opinión y análisis de los análisis contenidos en en esta publicación son responsabilidad de los autores y no refleja, necesariamente, el criterio de esta editorial. INDUSTRIA ACUÍCOLA, Revista bimestral, enero 2010. Editor responsable: Manuel de Jesús Reyes Fierro. Número de Certificado de Reserva otorgado por el Instituto Nacional del Derecho de Autor: 04-2007-100211233500. Número de Certificado de Licitud de Contenido: 11574 y número de Certificado de Licitud de Título: 14001, emitidos por la Secretaría de Gobernación. Registro Postal PP25-0003. Domicilio de la Publicación: Olas Altas Sur No. 71-5ª Centro C.P. 82000, Mazatlán, Sinaloa, México. Impresión: Preprensa Digital, S.A. de C.V. Caravaggio No. 30 Col. Mixcoac C.P. 03910 México, D.F. Distribuidor: Aqua Negocios, S.A. de C.V. Olas Altas Sur No. 71-5ª Centro C.P. 82000, Mazatlán, Sinaloa, México

Secciones fijas 3

Editorial

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Noticias nacionales

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Noticias internacionales

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Oportunidades

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Directorio de publicidad

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Congresos y eventos

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Humor

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Recetario

En portada

Estreptococosis en Litopenaesu vannamei cultivado: una nueva enfermedad bacteriana de los peneidos

Volumen industriaacuícola 2 6 Número 2 Enero 2010


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Editorial El cambio climático ¿Hasta dónde afectará a la acuicultura?

Estamos viendo en el mundo cambios drásticos del clima en varias latitudes de nuestro planeta, estos efectos repercuten en diversas áreas productivas dañando diversos cultivos que causan desbasto de algunos productos y por consecuencia aumenta la demanda y el precio de los mismos.

Definitivamente a causa de estos cambios, hay algunos organismos que son afectados en la disponibilidad de alimento, zonas de refugio o simplemente se tienen que desplazar a otros lugares en busca de alimento o de mejores condiciones de vida.

Es importante tomar cartas en el asunto y analizar de qué manera el cambio climático puede afectar a la acuicultura, es necesario prepararnos a conciencia porque somos parte de la naturaleza y no podemos estar libres de los efectos de nuestra madre naturaleza.

La búsqueda de alternativas que ayuden a nuestro cultivo y que sean amigables con la naturaleza, será la mejor ruta para seguir teniendo éxito a largo plazo y mantener ese equilibrio tan necesario para ayudar a nuestra madre tierra.

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Pesquera Delly Cultivando camarón en jaulas sumergibles en México

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he New Aquaculture (thenewaquaculture.blogspot.com) es el blog del periodista Whit Richardson; que con la ayuda de uno de sus compañeros del Centro Internacional de Periodistas, lo utiliza para rastrear lo que acontece con la acuacultura en mar abierto y lo que significa para la industria, para los océanos y para la raza humana. Los reportes de Richardson sobre la Pesquera Delly, una granja de camarón ubicada en Sonora, México, que está cultivando el crustáceo en grandes y esféricas jaulas sumergidas llamadas “Aquapods”. Noviembre 17, 2009

Noviembre 10, 2009 Richardson bloguea: Vine a Guaymas a encontrarme con Óscar Valdez, propietario de una compañía pesquera local que ha cambiado sus botes pesqueros para cultivar camarón. En su plenitud, Pesquera Delly contaba con once barcos pesqueros en su flota. Ahora sólo tiene dos. Valdez dice que la pesca del camarón se ha vuelto menos rentable debido a que la captura silvestre cayó y los costos se incrementaron. Fue cuando supo que era tiempo de hacer un cambio. Así que aprovechando Óscar Valdez, dueño de Pesquera Delly un programa del gobierno que Foto: thenewaquaculture.blogspot.com pagaba al pescador $100,000 dólares por cada barco tomando su Mientras que la alimentación comcomisión, Valdez obtuvo efectivo por prende una gran parte del costo de la cuatro de sus embarcaciones y utilizó granja de camarón tradicional, Valdez el dinero para comprar tres Aquapods comenta que necesita alimentar mucho a Ocean Farm Technologies en Searsmenos al camarón en sus Aquapods mont, Maine, Estados Unidos. ya que sus dietas se suplementan con alimento de la naturaleza que flota   Aparte de los tres grandes Aquaa través de las jaulas. Añade que así pods con que Pesquera Delly ya cuenmismo, las jaulas sumergidas ofrecen ta, está utilizando ocho pequeños para un ambiente más saludable para el carealizar pruebas con diferentes diseños marón. y configuraciones.

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Recibí una llamada a las 8 am de Steve Page, dueño de Ocean Far Technologies en Searsmont, Maine. Arribó a Guaymas la noche anterior se encontraba en México para ayudar a la Pesquera Delly a utilizar sus Aquapods las próximas semanas. Steve llamó a las jaulas más pequeñas MicroPods porque sus 27 pies de diámetro y sus 212 m3 de volumen fueron eclipsados por los 64 pies de diámetro y 3,600 m3 de volumen de sus hermanos mayores. Sin embargo, cada uno de los ocho MicroPods que Delly planea utilizar puede proveer hasta ocho toneladas de camarón. Eso no es un mal rendimiento, tomando en cuenta que un pesquero de arrastre local puede recoger, en promedio, 13 toneladas de camarón durante una temporada de pesca de seis meses. Steve también se encontraba en Guaymas para obtener una actualización de Óscar Valdez acerca de cómo iba el proyecto. Utilizar jaulas en mar abierto para cultivar peces es una nueva idea, pero al utilizarlas para el cultivo de camarón el esfuerzo es aún mayor. “Al principio, cuando iniciamos este proyecto, mucha gente me dijo ‘Estás loco’ ” dijo Valdez. Pesquera Delly ya cuenta con un Aquapod de 3,600 m3 utilizada en San Carlos, y ya ha producido una cosecha de aproximadamente 13 toneladas, o 130,000 camarones adultos. Des-


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afortunadamente, se esperaba un rendimiento de 40 toneladas. ¿Qué pasó? El huracán Jimena. Creó fuertes corrientes que hicieron huecos entre algunos de los páneles del Aquapod lo que provocó que un número significante de camarones escapara. Esta prueba les dejó de experiencia muchas cosas: “Necesitamos cambiar el diseño de la jaula ya que se trata de camarones, no de peces”, dijo Valdez. Uno de los cambios que ya se han hecho: un nuevo sistema de amarras para las jaulas, basado en la experiencia que tuvieron con el huracán.

Gustavo Valdez, frente a la mitad de un Aquapod Foto: thenewaquaculture.blogspot.com

será mucho más grande que el actual en San Carlos. Es probable que abarcará 500 hectáreas, alrededor de 60 jaulas (3.600 metros cúbicos cada uno). WR: ¿Cuál es la posición del gobierno mexicano respecto a tu proyecto?

Gustavo Valdez, Pesquera Delly Foto: thenewaquaculture.blogspot.com

 Noviembre 20, 2009 Gustavo Valdez es el hijo de Óscar, dueño de la Pesquera Delly y el director operativo de la incipiente división de acuacultura de la compañía. Richardson entrevistó a Gustavo para este reporte.  Whit Richardson: Actualmente siguen en fase experimental; sólo tienen un Aquapod en el agua. En el futuro, digamos cinco o diez años a partir de este momento ¿Cómo se ve el negocio de la acuacultura de la pesquera? Gustavo Valdez: Nuestros planes a largo plazo son establecer tres granjas a mar abierto: una en San Carlos, donde se encuentra actualmente el Aquapod, otra cercana a esa y estamos considerando también a Puerto Vallarta. Ya estamos prospección de sitios del país y se han comenzado los trámites para solicitar un contrato de arrendamiento. Ese proyecto

GV: Un funcionario del gobierno trató de convencernos de reorientar el proyecto a los peces ya que es lo que se trabaja a nivel mundial. Pero existen algunos problemas con el cultivo de peces marinos en México. Por ejemplo, prácticamente no existe tecnología de laboratorio en el país. Así que su primera reacción fue renuente a apoyar cualquier cosa que no hubiera sido probada ya. Durante los últimos dos años hemos podido cambiar la perspectiva del gobierno de una total renuencia a un apoyo parcial. WR: ¿Existe una reglamentación adecuada para el cultivo en jaulas marinas en México? GV: No. Debido a que es tan nueva aún no existe ningún tipo de reglamento. Así que si vamos por ahí y probamos que es un tremendo negocio, el riesgo es que el gobierno no tendrá la planificación adecuada de lo que la industria puede llegar a ser. Ese es el riesgo, así que tenemos que ser muy cuidadosos sobre cómo proceder. WR: Sigan en sintonía.

Información: Rosario Morales, Director, Pesquera Delly, S.A. de C.V. (a seafood processor and shrimp fishing company), Av. Serdán y Calle 22, No. 75, Depto. 1, 2o. Piso, Centro, Guaymas, Sonora 85400, Mexico (Tel. 52-62-2222-8870, fax 52-62-2224-3633, email: pdelly@tetakawi.net.mx)  Steve Page, Ocean Farm Technologies, Inc., 114 Higgins Road North, Searsmont, Maine 04973, USA (Tel 1-888-540-5554, fax 1-207-433-1300, email: info@oceanfarmtech, página web http://oceanfarmtech.com)   Fuente:  The New Aquaculture.  Whit Richardson. (1)Pesquera Delly, (2) Steve arrives in Guaymas y (3) Gustavo Valdez acerca del futuro de Delly. Noviembre 10, 17 y 20, 2009.

Bob Rosenberry Shrimp News International email bob@shrimpnews.com www.shrimpnews.com

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El Control de la

Mancha blanca WSSV en Tailandia

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etomando el artículo pasado de la revista Industria Acuícola, “La prevención y tratamientos del virus de la mancha blanca WSSV en Tailandia”, en la que se estableció la problemática de la mancha blanca como una de las enfermedades con mayores repercusiones económicas en la industria del camarón. Se mencionó entonces como alternativa la eliminación de los vectores de infección como único tratamiento eficaz contra el virus WSSV. Estudios actuales han demostrado la utilización de otros métodos eficaces para la eliminación y/o control de la enfermedad. Tan sólo en el estado de Sinaloa esta enfermedad ha impedido que la producción de camarón rebase las aproximadamente 2, 599 toneladas en los dos últimos años de producción. Teniendo un potencial de mercado que sobreexcede abismalmente la capacidad productiva del estado y de México es de importancia vital la aplicación eficaz de métodos que ayude a consolidar la cosecha del granjero.

A) Vacunas Primero definamos lo que es una vacuna. Una vacuna es.- Una preparación de antígenos (virus o bacteria inactivado o activo) que se inyectan en un cuerpo y generan una respuesta de ataque por medio de los anticuerpos que contribuyen a ponerle fin a algún virus o bacteria. Una vez que han sido suministradas en el organismo generan lo que se conoce como “memoria inmunológica” por lo que, en la mayoría de los casos, vuelven inmune a la persona a esa enfermedad determinada. Creemos que los invertebrados como los crustáceos no tienen un sistema in-

munológico avanzado que le permite crear una resistencia al virus con el cual ha sido vacunado o inoculado. Estudios hoy demuestran algún tipo de reconocimiento a la infección con el virus desactivado y también con infección del virus a una población y tomando los sobrevivientes de ella. Los estudios de Tim Fleggel, en su trabajo “ The Shrimp Response to Viral Pathogens” demuestran que los camarones tienen un tipo de pseudoimunidad adquirida. Donde se sugiere que la vacunación de los camarones produce una resistencia al virus. Como se demuestra en las tablas tomadas del trabajo del Dr. Fleggel en Tailandia.

Tomando experiencias de otros sectores agroindustriales como la avicultura, la agricultura, etc., se han llevado a cabo varios estudios para minimizar el impacto viral de la mancha blanca, WSSV en la industria del camarón. A continuación nos concentraremos en 3 diferentes métodos para contrarrestar el virus de la mancha blanca, WSSV: A) Vacunas, B) Quimioterapia y C) Termoterapia.

Método 1 de Vacunación.En esta tabla se infectó una población de camarones con el virus de la mancha blanca WSSV. Se tomaron los sobrevivientes de esta población y se volvieron a exponer al el virus de la mancha blanca. Observando que los camarones expuestos dos veces al virus tuvieron una supervivencia similar al la del control, haciendo suponer que la población adquirió inmunidad al virus. industriaacuícola

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Método 2 de Vacunación.Vacuna con virus inactivado prueba ser eficaz en contra de la mancha Blanca. Camarones tratados con el virus inactivado tienen una protección de largo plazo contra el virus de la mancha blanca. Animales tratados con esta vacuna son WSSV positivos al ser analizados por medio de PCR, pero no mueren al ser expuestos por el virus de la mancha Blanca, WSSV. Por otro lado por ser inoculados con el virus inactivado, los camarones no son capaces de infectar debido a la inactivación del virus suministrado. CP (Charoen Pokphand Co. Ltd.) tiene a la venta una vacuna llamada SEMBVAC, usando este mismo principio. Método 3 de Vacunación.Aislamiento de una proteína del virus de la mancha Blanca WSSV y suministrada a los camarones. Esto no es una vacuna en el estricto sentido ya que el inoculo es solo una proteína del virus y no todo el virus. Esto ha demostrado ser eficaz produciendo una protección

contra la mancha blanca. Como se muestra en un a tabla tomado del trabajo del Dr. Fleggel. donde se demuestra claramente la protección del VP28, (proteína del virus WSSV), en donde se ve mortalidad del 20% en contra del 100% de mortalidad en el control y en el placebo.

Tomando experiencias de otros sectores agroindustriales como la avicultura, la agricultura, etc., se han llevado a cabo varios estudios para minimizar el impacto viral de la mancha blanca, WSSV en la industria del camarón. B) Quimioterapia El término quimioterapia suele reservarse a los fármacos empleados en el tratamiento de las enfermedades neoplásicas que tienen como función el impedir la reproducción de las élulas cancerosas. a

La utilización de drogas como preventivos y como correctivos contra las enfermedades virales/bacteriales de ganado, pollos y legumbres. Este método es caro por lo cual su uso es muy limitado y poco práctico. En el pasado estos químicos se han enfocado al uso de antibióticos y antivirales de amplio espectro. Los nuevos estudios biotecnológicos para la transportación y biodisponibilidad de ciertas sustancias que actúan como bloqueadores de la replicación de virus están siendo analizados con resultados muy alentadores. Especialmente un área llamada “nanotecnología”, que se dedica a la producción de partículas de un tamaño menor a 120 nanomicras. Lo cual hacen que algunos materiales tengan la capacidad de bloquear la replicación de virus y bacterias. Trabajos como en de “Synthesis and Antimicrobial Activity of Silver Citrate Complexes” Stojan Djokić Elchem Consulting Ltd., Edmonton, AB, Canada T5X 6B3

b Actividad bacteriostática de a) Solución de complejo de ácido cítrico/citrato de plata b) Control

Han indicado buenos resultados utilizando este tipo de tratamientos. El costo es mucho mas bajo haciéndolos más prácticos para la agro-industria. Estos tratamientos estarán cada vez más presentes en la agro-industria en los próximos años.

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C) Termoterapia Termoterapia es el uso de temperaturas elevadas para la erradicación de agentes patógenos como virus o bacterias. Hoy usado principalmente en la agricultura para erradicar o controlar infecciones virales. Estudios acerca de la temperatura necesaria para eliminar o bloquear la replicación de ciertos virus. Estos métodos son ampliamente usados en la agricultura en donde la planta en cuestión es tratada con temperaturas altas por un determinado tiempo para erradicar la contaminación viral. Como ejemplo tenemos las siguientes tablas del “Manual Techniques in Plant Virology” CIP, Training Manual. En donde se ve el flujo usado para erradicar el virus.

Conclusión Métodos alternativos para la erradicación del virus de la mancha Blanca deben de ser investigados, desarrollados y adaptados al cultivo de camarón, con el fin de minimizar el impacto productivo y económico en industria camaronera derivado de este problema. La industria camaronera en Asia se ha enfrentado por muchos años a este problema por lo que se ha dado a la tarea de innovar en las aplicaciones y usos de los Métodos de vacunación, Termoterapia y Quimioterapia, con resultados positivos y significativos que han repercutido en el crecimiento sorprendente de la industria en un 300% en los ultimos anos. En nuestro siguiente artículo definiremos a detalle cómo se están usando estos métodos en la industria del camarón en Asia específicamente y los avances logrados hasta hoy. Por último, es importante que recordemos el diagrama tomado de un trabajo de Donald Lightner y Carlos Pantoja, la mejor forma de prevenir una enfermedad es excluyendo el patógeno de nuestro sistema.

Aedrian Ortiz Johnson Director de Producción SyAqua Group, Tailandia aedrian.ojohnson@syaqua.com aedrianortiz@hotmail.com Móvil: (66-81) 918 6032 Fax: (662) 661 7610

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Estreptococosis en Litopenaeus vannamei cultivado: una nueva enfermedad bacteriana de los peneidos Resumen

como S. parauberis.

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e detectaron histológicamente presuntas infecciones sistémicas por estreptococos en juveniles cultivados de Litopenaeus vannamei provenientes de un país latinoamericano y la bacteria aislada. El trabajo de caracterización demostró que los cocos gram positivos forman cadenas, crecen en condiciones aeróbicas y anaeróbicas, son negativos para oxidasa y catalasa, no hemolíticos, inmóviles, estreptococos del grupo B positivo y PCR positivos cuando se amplifica con el primer universal estreptocócico. A diferencia del Streptococcus las identificaciones se han obtenido utilizando API 20 Strep y los sistemas de Biolog, la primera identificación de la cepa de S. uberis y la segunda

La inyección a Litopenaeus vannamei libre del agente patógeno específico (SPF) con la bacteria causó una mortalidad del 100% 3 días después de la misma con la recuperación exitosa del agente de las muestras de hemolinfas del camarón moribundo. La cepa recuperada se utilizó en los estudios de exposición per os y vía acuática de L. vannamei SPF con rangos de mortalidad de 40 a 100% y de 80 a 100% respectivamente. Los análisis histológicos demostraron que de 5 a 8 camarones moribundos de cada método de exposición todos contenían una bacteremia severa caracterizada por numerosos cocos libres dentro de la hemolinfa y agregados de hemocitos vacuolados con un notable número de cocos

intravacuolares. Este tipo único de lesión fue más pronunciada en el órgano linfoide y se consideró diagnóstico patológico para esta enfermedad. Las lesiones inducidas para la experimentación fueron idénticas a las de los camarones cultivados naturalmente infectados y el Streptococcus sp. responsable fue re-aislado completando los postulados de Koch. Se realizaron 5 ciclos de congelación-descongelación experimentales en 10 camarones infectados durante un periodo de 2 meses y la bacteria fue cultivada satisfactoriamente de todos los camarones en cada intervalo. Estos descubrimientos colectivos describen el primer caso reportado de Estreptococosis en camarones peneidos marinos en el hemisferio occidental y nos indican que el agente puede diseminarse por el camarón vivo o infectado congelado.

Palabras clave: Estreptococo • Estreptococosis • Camarones peneidos • Postulados de Koch • Litopenaeus vannamei • Bacteremia

Introducción La estreptococosis es una enfermedad económicamente importante que se ha detectado en 30 especies cultivadas de peces de agua dulce y salada que incluyen al catfish (Shewmaker et al. 2007), tilapia (Eldar et al. 1995), trucha (Hoshina et al. 1958, Eldar et al. 1995), salmón (Romalde et al. 2008), corvina roja (Eldar et al. 1999), platija (Baeck et al. 2006), cola amarilla (Kusuda et al. 1991), lubina estriada híbrida (Evans et al. 2000) y el rodaballo (Toranzo et al. 1994). La aparición de estreptococosis en peces parece deberse al estrés relacionado con la mortandad crónica de bajo grado observado en algunas especies de peces y la mortandad grave del 30 al 50% ocurre en las otras como resultado de una encefalitis y/o de una infección sistémica que afecta a múltiples órganos.

Este grupo de bacterias no parecen tener un huésped específico, son capaces de infectar tanto a peces como a las especies de mamíferos y que incluyen Streptococcus iniae, S. agalactiae (S. dificilis), S. phocae y S. parauberis con S. ictaluri siendo el miembro más recientemente descrito de este género que infecta a especies de la acuicultura. Las infecciones letales debidas a cocos gram positivos en crustáceos son raras y sólo se han reportado en los camarones de agua dulce Macrobrachium rosenbergii (Cheng & Chen 1998). La enfermedad del músculo blanco, causa pérdidas significativas en las poblaciones de M. rosenbergii y se le han atribuido a dos especies diferentes de Lactococcus, L. lactis subsp. lactis y L. garvieae que están incluídas en la familia Streptococcaceae (Vendrell et al. 2006, Wang et al. 2008). Las enfermedades bacterianas en los camarones marinos cultivados son muy comunes, y pueden ocasionar altas pérdidas en la producción y son causadas principalmente por el oportunista bacilo gram negativo correspondientes a la familia Vibrionaceae (Sindermann & Lightner 1988, Brock & Main 1994). Hasta la fecha no se han publicado reportes de infecciones de estreptococos en camarones peneidos.

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Durante septiembre de 2008, Litopenaeus vannamei conservado en fijador AFA-Davidson (alcohol, formol, ácido) y originario de dos granjas separadas de cultivo intensivo de camarón localizadas en un país latinoamericano, fueron recibidas por el Texas Veterinary Medical Diagnostic Laboratory (TVMDL) para una evaluación diagnóstica. Una de las granjas utilizaba la fuerza del agua de mar (29 a 32 ppt) mientras que la otra operaba con agua de estuario (12 a 18 ppt). Ambas tenían tanto estanques revestidos como no revestidos con densidades de población de 135 camarones m2 y 85 camarones m2, respectivamente. Todos los estanques contaban con aireadores con calidad de agua dentro de los límites normales y el oxígeno disuelto durante las noches bajó de 2.5 a 3.5 ppm cuando el problema empezó. La mortandad crónica se observó en los estanques con y sin revestimiento en ambas granjas y primero se vio en los juveniles de camarón con peso de 6 a 7g. Las pérdidas ocurrieron de un 20 a un 40% en los estanques durante un periodo de 3 semanas.

La estreptococosis es una enfermedad económicamente importante que se ha detectado en 30 especies cultivadas de peces de agua dulce y salada

No se observaron síntomas clínicos o lesiones externas de la enfermedad entre los camarones muertos encontrados en el fondo de los estanques. Muchos de éstos presentaban exoesqueletos vacíos intactos con grandes porciones de tejido interno y ausencia del músculo de la cola, como si se lo hubieran comido o degradado de adentro hacia fuera. Los análisis histológicos y tinción de Gram de los camarones conservados de cada granja demostraron la presencia de una infección bacteriana sistémica previa no reportada caracterizada por numerosos cocos gram positivos sueltos dentro la hemolinfa de la vascularización y los senos hemales así como dentro de vacuolas citoplasmáticas de hemocitos individuales o pequeños agregados de estas células. Se detectaron un número variable de cocos extracelulares, hemocitos contaminados con bacteria y pequeños nódulos hemolíticos dentro del órgano linfoide, corazón, branquias, músculo esquelético, intestino anterior, intestino grueso, nervios, tejidos conectivos tanto de los senos hemales como de ceca de la glándula antenal y hepatopáncreas. Ya que no se ha encontrado literatura publicada de una septicemia bacteriana provocada por cocos gram positivos en camarones peneidos y parece ser una enfermedad nueva, el estudio actual se inició con la presentación del camarón fresco y muestras de la hemolinfa de las granjas afectadas. Los objetivos de éste fueron cuatro: (1) aislar y realizar el trabajo de caracterización del agente bacteriano, (2) llevar a cabo los postulados de Koch reproduciendo la enfermedad y recuperando la cepa libre del agente patógeno específico (SPF) Litopenaeus vannamei utilizando la exposición por inyección intramuscular, vía acuática y per os; (3) describir los cambios histológicos inducidos por la enfermedad y (4) determinar el efecto de los ciclos repetidos de congelación y descongelación en la viabilidad del organismo.

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Métodos y materiales Aislamiento e identificaciñon bacteriana Camarón enfriado (n=6 por estanque) y sus correspondientes muestras agrupadas de hemolinfa originarias de un solo estanque en dos granjas intensivas de Litopenaeus vannamei de la región afectada (mencionadas anteriormente como granjas A y B y que se reservan la locación exacta a petición de la granja). El cefalotórax de cada uno de uno de los 12 camarones se limpió con etanol al 70%, el exoesqueleto se retiró con unas tijeras estériles, y los órganos linfoides fueron expuestos para la inoculación en placas agar sangre (BA) (agar de soya tríptico con la sangre de borrego al 5%, BBL ) utilizando un lazo de plástico desechable estéril, siguiendo los métodos de Cheng y Chen (1998). De manera similar, cada una de las dos muestras agrupadas de hemolinfa fueron estriadas en BA, y los cultivos incubados aeróbica y anaeróbicamente durante la noche a 28 °C para determinar el patrón hemolítico real de los aislados. Exámenes bioquímicos Una colonia pura de bacterias similares a Streptococcus, caracterizada por el desarrollo de numerosas colonias blancas, pequeñas, circulares en BA, fue aislada de las muestras del camarón y la hemolinfa provenientes de las dos granjas después de 18 a 24 horas de incubación y posteriormente estriadas para su pureza en placas BA. Se seleccionó un cultivo aislado puro y fue sometido a pruebas de oxidasa y catalasa, a la tinción de gran e identificación bioquímica utilizando el API 20 (Biomerieux) siguiendo las instrucciones del fabricante. Las cepas también fueron inoculados en caldo triptosa fosfato (Remel) e incubado aeróbicamente a 28OC por 18 horas con el subsecuente examen al fresco para observar la morfología celular. La cepa seleccionado para usarse en los tres bioensayos después se analizó con PathoDx kit (Remel) para determinar su denominación de los grupos de Lancefield (Lancefield 1933) e identificados mediante el sistema Omnilog ID (Biolog) junto con una S. porcinus ATTC aislada para verificar la capacidad del sistema de identificar un Strepetococcus sp. conocido. Estos últimos exámenes se realizaron de acuerdo a las instrucciones del fabricante. Análisis por PCR El ADN genómico bacteriano fue extraído de 4 muestras bacterianas separadas (Bacteria similar a Streptococcus de la granja A, bacteria similar a Strepto-

No. de tanque

Tratamiento

No. de camarones

Bioensayo 1. Exposición mediante inyección 1 1 2

Control negativo por exposición a la inyección (2% salina) Exposición a la inyección (Aislamiento Streptococcus-like)

6 6

Bioensayo 2. Exposición Per os y por vías acuáticas 1 2 3 4 5 6

Control negativo de exposición Per os Exposición Per os utilizando pellets remojados de bacteria Exposición Per os utilizando pellets remojados de bacteria Control negativo de exposición por vía acuática Exposición por vía acuática (Aislamiento Streptococcus-like) Exposición por vía acuática (Aislamiento Streptococcus-like)

5 5 5 5 5 5

Bioensayo 3. Exposición mediante inyección 2 1 2

Exposición por inyección (Aislamiento Streptococcus-like) Exposición por inyección (Aislamiento Streptococcus-like)

5 5

Tabla 1. Diseños experimentales de 3 bioensayos. 1 y 2 determinaron el efecto en juveniles de Litopenaeus vannamei libre de patógeno específco de la bacteria similar a Streptococcus utilizando métodos de inyecciones intramusculares, de vías acuáticas y per os y re-aislando el agente bacteriano del tratamiento de camaron moribundo. El bionesayo 3 fue un estudio de exposición a la inyección para producir bacteria infectada en el resto de L. vannamei y así evaluar la tolerancia del Streptococcus-like aislado a múltiples ciclos de congelamiento-descongelamiento.

Fig. 1 Patrones de banda de la electroforesis de 4 Streptococcus spp. seguido de PCR utilizando un cebo universal que amplifica una región única de 207 bp dentro del gen rDNA estreptocócico. Líneas 1 y 7: escalera 1kb; Línea 2: plantilla de control negativo de agua; Línea 3: Streptococcus-like aisalado de granja A; Línea 4: Streptococcus-like aisalado de granja B; Línea 5: Streptococcus-like aisalado recubierto del camarón moribundo del tratamiento de bioensayo 2; Línea 6: ATCC S. porcinus aislado.

coccus de la granja B, bacterias similar a Streptococcus recubierta del tratamiento del bioensayo 2 y cepa S. porcinus ATTC) siguiendo el protocolo de Berridge et al. (1998) con modificaciones. Brevemente, la bacteria fue aeróbicamente cultivada en 3ml de caldo triptosa fosfato durante la noche (28oC) y después dividida equitativamente en dos tubos Eppendorf de 1.5 ml. Después de centrifugar a 11 000 x g (15 minutos), los dos pelets resultantes fueron suspendidos y combinados en 300 μl de industriaacuícola

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buffer de lisis (50 mM Tris, 100 mM NaCl, 20 mM EDTA, 0.5% dodecil sulfato sódico, pH 6.0) junto con 10 μl mutanolisin (10 U μl–1, Sigma). La solución se mezcló brevemente por agitación, incubada a 37oC durante 45 minutos y después colocada en agua hirviendo por 10 minutos para inactivar el mutanolisin. Tras la centrifugación a 16 000 x g (3min), 100 μl de lisado de AND fue transferido a una columna Croma-spin (Clonetech) de acuerdo a las instrucciones del fabricante y fue centrifugada a 700


x g (15 minutos). El filtrado resultante se almacena a 4oC hasta su análisis por PCR. Las mezclas de reacción de PCR (25 μl) y el programa termociclador utilizadas fueron de acuerdo a Meiri-Bendek et al. (2002) y utilizado su cartilla Streptococcus universal 16S ADNr conjunto (C1: 5’-GCG TGC CTA CAT GCA ATA A 3 ‘C2: 5’-TAC AAC GCA GGT CCA TCT-3’), que fue diseñada para producir un amplicón 207 pb. Los produc-

tos de PCR resultantes se ejecutaron en un 2% gel de agarosa (80 V, 40 min), que luego fue teñido por sumersión en 0,001% de bromuro de etidio (20 min). El gel después fue desteñido bajo el chorro de agua durante 3 minutos, el patrón de bandas visualizados por transiluminación UV y fotografiado con una cámara de fotos Polaroid de Documentación (Fisher Scientific).

Camarón de prueba Fueron utilizados juveniles SPF Litopenaeus vannamei de la línea Fast Growth (peso promedio= 8g; provistos por Shrimp Improvement Systems) para conducir los 3 bioensayos por separado. Se utilizaron acuarios de vidrio estáticos de 10 galones (37,9 l) en cada bioensayo, llenadas con 10 l de 30 ppt de agua de mar preparada (Sal del bioensayo Mar de Cristal, Marine Enterprises International) y fueron abastecidos con 5 ó 6 camarones (biomasa 4.0 a 4.8 g l-1). Dos de los acuarios se utilizaron para el estudio de exposición por inyección (Bioensayo 1), 6 para el de la exposición vía acuática/per os (Bioensayo 2) y 2 para el segundo estudio de inyección (Bioensayo 3) como se muestra en la tabla 1. Todos los acuarios fueron aireados continuamente con un solo airstone, se cubrieron para prevenir el escape de los animales y se realizó un 90% de recambio de agua cada mañana. Los acuarios expuestos a la bacteria se mantuvieron en una sala separada del control negativo para minimizar la posibilidad de contaminación cruzada. Se mantuvo una media de 28oC de temperatura en ambas salas durante los tres estudios a través de la colocación de calentadores eléctricos de operación continua. Todos los camarones se alimentaron con una ración de pellets (Ziegler No. 4) ad limitum una vez diariamente durante los estudios. Las únicas excepciones fueron en los tratamientos de exposición per os en el tratamiento del camarón y las correspondientes al per os del grupo de control negativo (descrito abajo). Bioensayo 1. Exposición por inyección a la bacteria similar a Streptococcus aislado El aislado bacteriano utilizado en este bioensayo fue cultivado del órgano linfoide de un L. vannamei de la granja A infectada naturalmente y almacenada a -80oC en caldo brucella con glicerol (Tubo CryosaverTM). Después la bacteria fue descongelada, estriada y cultivada aeróbicamente en BA durante 18 h a 28oC, posteriormente la colonia fue transferida a 50 ml de caldo triptosa fosfato. Seguida de 18 h de incubación con agitación (28 a 30oC), la suspensión bacteriana fue peletizada por centrifugación (2080 × g, 30 min, 4°C), el líquido sobrante se descartó y los pelets suspendidos en 2% solución salina esterilizada 2% para alcanzar la turbidez equivalente a el estándar no. 2 de McFarland (una concentración de ~600 × 106 ml-1 unidad formadora de colonias [CFU]). Una alícuota de 10 μl se transfirió a un tubo de 15 ml y diluido 1:100 con 2% de solución salina esterilizada para obtener una concentración de ~6000 CFU μl–1. Después se inyectó intramuscularmente (IM) a 6 camarones el el tercer segmento abdominal con ~50 a 80 μl de la disolución bacteriana utilizando una jeringa tuberculina para alcanzar de 3 a 5 x 105 CFU camarón -1, similar a las dosis utilizadas en estudios pasados de infectividad de Vibrio sp. (Saulnier et al. 2000). Se inyecta-

ron 6 camarones de manera similar con 2% de solución salina esterilizada para que sirvieran de controles negativos. Los camarones moribundos y muertos recientemente (es decir, que no se observó la opacidad de los músculos o diferencia en el color con el camarón vivo) se recolectaron, se insertó la aguja de 1ml de jeringa tuberculina en la base del cuarto periópodo y se extrajeron de ~50 a 100 μl de hemolinfa del seno ventral. La muestras de hemolinfa (1 ó 2 gotas de la muestra -1) inmediatamente fueron estriadas en placas BA y se observó para crecimiento después de 18 a 24 h de incubación aeróbica (28°C). A una colonia representativa por placa se le aplicó la tinción de Gram y se observó a través de la luz de un microscopio para confirmar la presencia de cocos gram positivos. Finalmente, tres colonias representativas de una sola placa se seleccionaron al azar, se estriaron en BA slants y se incubaron por 24 h (28°C). Después se llenaron los slants con aceite mineral esterilizado y se alamacenaron a la temperature de la sala hasta que fueran utilizados en el Bioensayo 2. El ensayo se dio por concluído el día tres, cuando el último camarón inyectado con bacteria pasó a un estado moribundo.

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Bioensayo 2. Exposiciones vía acuática y per os a la bacteria similar a Streptococcus aislada Se utilizaron seis acuarios de 10 gal con 5 juveniles SPF L. vannamei (Tabla 1). Dos de los acuarios fueron designados como réplicas de los grup tratamiento per os y dos más como del tratamiento vía acuática. Los dos sobrantes se colocaron en una sala separada para prevenir la posibilidad de contaminación bacteriana y sirvieron como tanques de control negativo de ambos grupos. Las exposiciones vía acuática y per os de la bacteria similar al Streptococcus aislada se llevaron a cabo cada mañana durante los primeros 5 días de los 12 del estudio tras el recambio diario de agua. Todos los camarones moribundos y muertos recientemente fueron desangrados por el cultivo bacteriano como se describió en el Bioensayo 1 y se conservaron para su análisis histológico (véase “Materiales y métodos: Histopatología”). La bacteria similar al Streptococcus recuperada de la hemolinfa de los 2 camarones moribundos de la exposición per os y dos de los expuestos por vía acuática se analizaron utilizando el kit API 20 Strep para confirmar que las cepas eran las mismas y equivalentes al tipo original silvestre utilizado en el Bioensayo 1. Cultivo bacteriano y métodos de exposición del camarón: 1 matraz esterilizado de 1 litro conteniendo 400 ml de caldo triptosa fosfato fue inoculado cada noche con el aislado bacteriano recuperado durante el Bioensayo 1 y el cultivo aeróbicamente incubado con agitación continua de 28 a 30°C durante la noche (18 a 20h). Posteriormente el cultivo fue dividido equitativamente entre 8 tubos de centrifuga de 50 ml, la bacteria se paletizó por centrifugación (2060 × g, 30 min, 4°C) y el líquido sobrante se

Bioensayo 3. Efectos de congelacióndescongelación de la bacteria similar a Streptococcus aislada Se inyectó de manera intramuscular a un total de 10 juveniles L. vannamei SPF con el misma cepa aislada Streptococcus utilizada en el Bioensayo 2. Las inyecciones se realizaron siguiendo el protocolo descrito en el Bioensayo 1 y los camarones se dividieron equitativamente entre dos acuarios de 10 gal, que se describieron arriba. Se recolectaron los camarones muertos y moribundos (n=10), se dividieron equitativamente en dos grupos y se congelaron individualmente en bolsas de muestra Whirl-Pak(TM) (Nasco) ya fuera a -80oC (n=5) o a -20oC (n=5). Cuatro días después del congelamiento, todos los camarones se descongelaron a temperatura ambiente por 60 min, se limpiaron segmentos de la cabeza y la primera cola con 70% de etanol, el abdomen se separó asépticamente de la cabeza, cortando cada camarón de ventral a dorsal utilizando un escalpelo nuevo esterilizado. Se insertó un infusor des-

apartó utilizando una pipeta desechable. Los pelets bacterianos de 6 tubos fueron re-suspendidos individualmente en 50 ml de agua de mar artificial a través de mezclado y se agregaron 150 ml de suspensión bacteriana (3 tubos) a cada uno de los dos tanques del tratamiento de vía acuática. Los pelets bacterianos en los dos tubos restantes fueron re-suspendidos cada uno en 15 ml de agua de mar artificial, las suspensiones se trasfirieron a dos platos medianos de pesaje de plástico y se añadieron pelets de alimento (Ziegler No. 4) equivalente a 5% de biomasa (2 g) acuario-1. Después de 30 segundos los pelets hidratados fueron alimento para 2 grupos de tratamiento per os junto con el exceso de la suspensión bacteriana. De manera similar, 2 g de alimento paletizado fue hidratado con agua de mar artificial y dados al grupo de control negativo per os. Conteo bacteriano: Se recolectaron muestras de agua (50 ml acuario-1) de los dos tanques de tratamiento vía acuática y de su respectivo tanque de control ~30 min después de la inoculación diaria durante los primeros 4 días de 12 del estudio. Se prepararon tres disoluciones en serie divididas en 10 partes de cada muestra de agua (1:1000 a 1:100 000) y 100 μl fueron estriadas en placas BA utilizando un esparcidor de células bacterianas. De manera similar se colocó una muestra de agua pura de 100 μl del tanque de control. Seguido de 18 a 24 h de incubación aeróbica (28oC), las colonias de Streptococcuslike fueron contadas y se determinaron los CFU ml-1.

echable esterilizado en e l área del seno ventral del primer segmento de la cola y se extrajo asépticamente fluido y se colocó en BA. Posteriormente los camarones se regresaron a sus respectivos congeladores y las placas BA se incubaron durante la noche a 28°C. Cada placa se examinó la mañana siguiente para saber si había presencia de colonias de bacterias similar a Streptococcus, fueron sometidas a la tinción de gram y examinadas a través de microscopio para notar presencia de cocos gram positivos. La descongelación y colocación de las muestras del camarón se repitió una vez al día durante los siguientes 2 días y nuevamente a los 30 y 60 días después de su recolección para un total de 5 ciclos de congelamiento-descongelamiento. Histopatología Tras la recepción de la población de juveniles L. vannamei SPF utilizada en los tres bioensayos, se conservaron 5 camarones con AFA-Davidson y se prepararon tejidos incrustados en parafina para la histología de rutina H&E de acuerdo a industriaacuícola

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los métodos de Bell & Lightner (1988) para confirmar que están libres de enfermedad. Durante los bioensayos 1 y 2 todos los camarones moribundos y recientemente muert control negativos y de los grupos de tratamiento fueron desangrados para el cultivo bacteriano como se describió anteriormente y se conservaron con fijador AFA-Davidson para su análisis histológico siguiendo los métodos estándar. Tras término del Bioensayo 2, todos los camarones sobrevivientes tanto del control negativo como los expuestos se conservaron de manera similar. La severidad se la lesión Streptococcus fue graduado en una escala de 0 a 4, similar a la utilizada para puntuar las lesiones inducidas del Virus del Síndrome de Taura (TSV) (Hasson et al. 1995). Las lesiones de Streptococcus inducidas se definieron como focos que contienen agregados de vacuolados sencillos o múltiples de tamaños variables que presuntamente son hemocitos con cocos intravacuolares y extravacuolares y grados variables de melaminización. La ausencia total de dichas lesiones se graduó en 0, las lesiones en <25% de un tejido infectado se graduó


como 1, las lesiones del 25 al 50% de tejido fue de 2, las de 50 al 70% 3 y las lesiones en >75% de tejido se graduaron con 4. Mientras estas lesiones están presentes típicamente en múltiples tejidos, un grado de gravedad de las lesiones fue asignado a una muestra basada sólo al tejido u órgano mayormente afectado. Para apreciar mejor la bacteria en el tejido afectado, se recortaron los bloques de la muestra seleccionada y las secciones se sometieron a la tinción de gram de acuerdo a Carson (1997) junto con el tejido del control positivo que contenía el gram positivo y el organismo negativo. Fig. 2. Litopenaeus vannamei. Porcentaje diario de sobrevivencia del bioensayo 1 de los juveniles inyectados con la suspención salina que contenía una bacteria similar a Streptococcus aislado ó 2% de suero eserilizado como control negativo. La supervivencia entre el grupo del tratamiento de la bacteria inyectada fue 0% dentro de los 3 días posteriores a

la aplicación contro un 83% del grupo de control negativo.

RESULTADOS Indentificación bacteriana Se observaron pequeñas colonias bacterianas blancas circulares (0.3 to 0.5 mm diámetro) no hemolíticas que sugieren Streptococcus sp. en las placas BA de 1 de 6 camarones de cada granja y de ambas muestras de hemolinfa combinadas dentro de las 24 horas después de la inoculación. Las colonias crecieron aeróbica y anaeróbicamente y consistieron de cocos gran positivos inmóviles que dieron negativo para oxidasa y catalasa. El análisis en fresco de la bacteria cultivada en caldo triptosa fosfato reveló numerosas cadenas con 5 a 8 cocos, característica de estreptococos. El análisis de la cepa realizado por el API 20 caracterizó la bacteria como un 99% similar a S. uberis. (Código API 7463713). En contraste, el sistema Omnilog identificó la cepa como S. parauberis. El análisis PCR de ADN extraído de la cepa de la granja A, de la B, del Bioensayo 2 y el ATCC de S. porcinus utilizando el set universal de géneros específicos de Streptococcus resultando en una ampliación de banda de 207 bp para cada uno de las cuatro muestras (Fig. 1). Esto confirma que las cepas silvestres de las dos granjas y la recuperada del Bioensayo 2 eran miembros de estreptococos. Fig. 3. Porcentaje diario de supervivencia del bioensayo 2 de los juveniles Litopenaeus vannamei. expuestos a la cepa de bacteria similar a Streptococcus por vía acuática y per os. Los tratamientos se realizaron por duplicado durante los primeros 5 días del estudio. La supervivencia entre los dos grupos de tratamiento per os fue de 0 y 60%. La de los del tratamiento por vía acuática fue

de 0 y 20%. No hubo mortandades en ninguno de los dos grupos de controles negativos

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Bioensayo 1. Inyección de la cepa El principales objetivos de este estudio fueron verificar la patogenicidad del aislado de la bacteria similar a Streptococcus, reaislar el organismo para su uso posterior en el Bioensayo 2 y realizar las histología en el camarón moribundo del tratamiento. La inyección a 6 juveniles SPF de L. vannamei con la cepa Streptococcus de la granja A dio como resultado 100% de mortandad acumulada dentro de los 3 días después de la inyección en comparación al 17% de la correspondiente al camarón del control negativo. (Fig. 2). Cinco de los 6 camarones del tratamiento fueron recolectados moribundos o recientemente muertos. El sexto camarón

se encontró severamente degradado y se desechó. El camarón moribundo estaba letárgico y asumió una posición de decúbito lateral antes de la muerte, sin otros signos clínicos extremos observables. La expansión del cromatóforo con el consiguiente oscurecimiento del cuerpo y/o el enrojecimiento de los apéndices fue evidentemente ausente en los individuos afectados. Antes de su preservación en fijador Davidson, cada uno de los cinco camarones de tratamiento fueron desangrados y las muestras fueron puestas placas en BA. Cada uno de los 5 cultivos de Streptococcus sp. produjeron colonias de cocos gram positivos dentro de las 18 h siguientes a las inoculación y fueron morfológicamente idénticas a las muestras de

hemolinfa de las cultivadas originalmente en la granja. Se seleccionó una de las cepas, se cultivaron en 3 biseles de agar sangre y almacenados para su uso en el Bioensayo 2. Algunas colonias que fueron morfológicamente diferentes a la de Streptococcus sp. También se cultivaron de dos muestras de camarón tratado que fueron sangrados postmortem. Estas colonias se encontraban en menor número en comparación con las de Streptococcus sp., debido a los bacilos gram negativos y se consideraron contaminantes postmortem. El único camarón del control negativo que murió durante el estudio se conservó para su análisis histológico, pero no sangrado para cultivo bacteriano.

Bioensayo 2. Exposición vía acuática y per os

Fig. 4. Hemolinfa de un juvenil L. vannamei expuesto per os a cepa de la bacteria similar a Streptocuccus (Bioensayo2) aparece blanca y opaca cuando se extrae (jeringa inferior) en lugar de ser clara y translúcida como se ve en el camarón sano (similar a la muestra de agua de la jeringa superior). Nótese que las gradaciones de la jeringa inferior no son visibles debido a la opacidad de la muestra, que es causada por la presencia de numerosos cocos Streptococcus. La coloración oscura de la muestra es normal, ocurrió dentro de 1 ó 2 minutos despuès de haberse colectado y es debida a la oxidación de hemocianina en la hemolinfa. (Dawson & Mallette 1945)

La mortandad entre los grupos repetidos de tratamiento expuesto por vía acuática empezó en los días 4 y 5 y dieron como resultado un 80% de mortandad en uno de los grupos y de 100% en el segundo durante el día 12 del estudio (Fig. 3). La mortandad entre los grupos repetidos de tratamiento expuesto per os empezó en los días 6 y 7 con mortandad acumulativa del 40 y 100%. No hubo mortandad en ninguno de los dos grupos de control negativo. Similar al estudio de tratamiento de camarón por inyección, los principales signos clínicos de la enfermedad incluyeron letargo y recostado lateral justo antes de la muerte. Se recolectaron un total de 8 camarones expuestos a vía acuática y 7 expuestos per os moribundos o recientemente muertos. Durante la extracción de hemolinfa de estos camarones para cultivo bacteriano se notó que muchas de las muestras fallaron al coagular después de varios minutos y fueron marcadamente blancos y turbios (Fig. 4). Los exámenes microscópicos en fresco y de la tinción de gram en las muestras demostraron que la coloración blanca se debía a la presencia de numerosos cocos gram positivos. Los cultivos BA de las 15 muestras de hemolinfa dieron como resultado el desarrollo de numerosas colonias Streptococcus sp. en cada placa dentros de las 18 h siguientes a la inoculación y los análisis al fresco confirmaron la presencia de cocos en cada muestra. El análisis con API20 Strep de las cepas bacterianas recuperadas de dos camarones moribundos de la exposición vía acuática y dos de la exposición per os produjeron el mismo código para los cuatro (API 7463713) y fueron identificados como S. uberis.

No. de tanque

Día 0

Día 1

Día 2

Día 3

Día 4

Día 5

Media CFU ml-1

5

0.2 × 106

0.3 × 106

14 × 106

6 × 106

9 × 106

NA

6 × 106

6

0.2 × 105

0.2 × 106

6 × 106

10 × 106

11 × 106

NA

5.5 × 106

Conteo bacteriano en los acuarios del tratamiento por vía acuática Distintas colonias de Streptococcus sp. no hemolíticas se desarrollaron en todos las placas inoculadas con el agua del tanque de tratamiento vía acuática y no se observaron colonias de otro tipo. El conteo de la colonia fue hecho utilizando placas BA inoculadas con 10-15 diluciones de la muestra de agua. El recuento de colonias Streptococcus sp. de los 2 tanques de exposición por vía acuática oscilaron del 0.2 x 106 a 14 x 106 CFU ml–1 con un rango medio de ~5.5 a 6 × 106 CF U ml–1 (Tabla 2).

Tabla 2. Conteo diario de bacterias (unidad de formaciòn de colonias [CFU] ml–1) del agua de los tanques del Bioensayo 2 (tanques 5 y 6) sujeto a la exposición de Streptococcus sp. No se cultivaron colonias de Streptococcus sp. de las muestras de agua del grupo de control negativo. NA: No analizadas

El conteo de bacterias no se llevó a acabo el día 5 cuando fue realizada la última exposición por vía acuática. Los recuentos en los días 0 y 1 fueron considerablemente bajos que los posteriores ya que el caldo marino fue utilizado por error para producir los primeros dos cultivos. Todos los cultivos posteriores se realizaron con caldo triptosa fosfato, que dio como resultado conteos bacterianos 10 veces más altos. No se cultivaron colonias de Streptococcus sp. de las muestras de agua del correspondiente grupo de control negativo

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No. de tanque

Histología Tratamiento

Día de muestreo

No. examinado

Prevalencia de lesión

Severidad de lesión

Hemolinfa

API

Mortalidad acumulativa (%)

Día de llegada

5

0 de 5

ND

NA

NA

1/6 (17)

Día 2

1

0 de 1

ND

NA

NA

Día 2

1

1 de 1

G4

1 de 1

NA

Día 3

4

4 de 4

G3-4

4 de 4

NA

Streptococcus-positivo

Bioensayo 1 1

2

Inyección ctrl negativo Inyección Streptococcus

6/6 (100)

Bioensayo 2 1

Per os ctrl negativo

-

0

NA

NA

NA

NA

0/5 (0)

2

Per os Streptococcus

Día 6

3

3 de 3

G3-4

3 de 3

2 de 2

5/5 (100)

Día 7

1

1 de 1

G4

1 de 1

NA

Día 9

1

1 de 1

G4

1 de 1

1 de 1

Día 7

1

1 de 1

G4

1 de 1

NA

Día 10

1

1 de 1

G4

1 de 1

NA

Día 12

3

1 de 3

G1

0 de 3

NA

3

Per os Streptococcus

2/5 (40)

4

Vía acuática ctrl negativo

Día 12

4

0 de 4

ND

0 de 4

NA

0/5 (0)

5

Vía acuática Streptococcus

Día 4

1

1 de 1

G3

1 de 1

NA

5/5 (100)

Día 5

2

2 de 2

G4

2 de 2

2 de 2

Día 6

1

1 de 1

G4

1 de 1

NA

Día 5

1

1 de 1

G4

1 de 1

NA

Día 6

1

1 de 1

G4

1 de 1

NA

Día 8

2

2 de 2

G3-4

2 de 2

NA

Día 12

1

0 de 1

ND

0 de 1

NA

6

Vía acuática Streptococcus

4/5 (80

Tabla 3. Litopenaeus vannamei. Descubrimientos histológicos de los bioensayos 1 y 2 resumen el número de camarones por tratamiento analizados por histología, día de recolección, el número de infecciones por estreptococo, el grado de severidad general de la lesión y el porcentaje de mortandad acumulada al finalizar el día 3 (bioensayo 1) o el día 12 (bioensayo 2). Los camarones de prueba fueron expuestos a la cepa Streptococcus sp. por medio de inyección en el bioensayo 1 y por vìa acuática y per os en el bioensayo 2. El grado de severidad de la lesión (G) está basado en una escala del 1 al 4: 1= lesiones leves focales a multifocales en <25% del tejido afectado, 4= lesiones severas multifocales a difusas en >75% del tejido afectado. NA: no analizado; ND: no detectado.

Histopatología En la histología de rutina no se detectaron infecciones bacterianas o virales en los 5 camarones de prueba SPF L. vannamei que fueron conservados a la llegada al TVMDL o en el único camarón muerto del control negativo recolectado durante el Bioensayo 1. (Tabla 3). La causa de la muerte de este camarón de control recolectado el día 2 de ese estudio no se pudo determinar por medio de la histología, pero posiblemente fue debido al estrés de la muda inducida. Al término del Bioensayos 2 en el día 12, fueron recolectados 4 camarones sobrevivientes del control negativo per os, 3 del tratamiento per os y 1 del tratamiento vía acuática a los que se analizaron con la histología de rutina. Una de las 3 muestras expuestas a per os tenía un número bajo de cocos en el órgano linfoide (OL) (Severidad grado 1), mientras que no se detectaron infecciones o lesiones en las 7 muestras restantes. Los camarones moribundos o recientemente muertos del grupo de tratamiento por inyección del Bioensayos 1 (n=5),

del grupo de tratamiento per os del Bioensayos 2 (n=7) y del grupo de exposición por vía acuática del Bioensayo 2(n=8) fueron analizados por la histología de rutina. Se detectaron infecciones bacterianas sistémicas de Grado de severidad 3 y 4 en las 20 muestras (Tabla 3) con el tejido del órgano linfoide como el más severamente dañado. La morfología y distribución de ambas lesiones fueron idénticas a las observadas en los L. vannamei cultivados infectados naturalmente. Las secciones normales del órgano linfoide contienen numerosas arteriolas caracterizadas por un grueso muro que rodea un lumen de endoteliales forradas cuando se ven es una sección cruzada (Fig. 5A). En contraste, el camarón severamente infectado de este estudio muestra una marcada vasculitis hemocitíca del OL caracterizada por el reemplazo de arteriolas normales por un campo sólido homogéneo de numerosos hemocitos vacuolados. Por lo regular estas células contienen una vacuola grande cubierta con cocos y núcleos marginados o acéntricos. Numerosos cocos extracelulares mezclados con un número reducido de pequeños nódulos hemocíticos

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melanizados se encuentran típicamente (Fig. 5B-D) y no pueden distinguirse las arteriolas individuales. La morfología general de las arteriolas en los camarones infectados moderadamente fue distinguible (es decir, paredes y lumen) y contenían una baja cantidad de células vacuoladas contaminadas por cocos, pequeños nódulos hemocíticos y cocos extracelulares en comparación con los casos severos. También fueron visibles numerosos cocos dentro de los senos hemales rodeando las arteriolas del OL. Además estuvieron presentes cambios histológicos y distribución bacteriana en las paredes de la arteria subgástrica (Fig. 5E) y, en un grado mucho menor, en el resto de los tejidos afectados. Seguido al OL, en términos de severidad de la infección se encontraron las branquias (Fig. 6 A,B) y el corazón (Fig. 6C); los espacios interfasciculares del músculo esquelético del cefalotórax, abdomen y apéndices (Fig. 6D); el tejido conectivo submucoso o músculo del esófago (Fig. 6E), estómagos, intestino medio (Fig. 7A) y el intestino grueso. Se encontraron de raro a infrecuente dispersos nódulos hemocíticos vacuolados y un número variado de cocos en los senos o vasos hemales asociados al tejido hematopoyético (Fig. 7B), hepatopáncreas (Fig. 7C) y en la glándula antenal (Fig. 7D) así como los tejidos conectivos anterior y posterior de la ceca del intestino medio (Fig. 7E) y el cordón nervioso (Fig. 7F). En todos los casos, la bacteria fue difícil de detectar por la histología H&E de rutina. (Fig. 5C) debido a su pequeño diámetro (~0.8 μm diámetro) y a la ligera basofilia que contrastaba poco con los tejidos circundantes. En secciones de tejido sometidas a la tinción de gram la bacteria se mancha de azul a púrpura y es visualizada fácilmente con la luz del microscopio. (Figs. 5D,E, 6 y 7).

Los descubrimientos colectivos de este estudio describen el primer caso reportado de Estreptococosis en camarones peneidos marinos en el hemisferio occidental. Bioensayo 3. Efectos de congelamiento-descongelamiento en la cepa de Streptococcus Como en el Bioensayo 1, los 10 camarones de tratamiento del Bioensayo 3 murieron o fueron recolectados moribundos dentro de los 3 días posteriores a la inyección y se dividieron en dos grupos de 5 camarones cada uno, uno fue congelado a –20°C y el otro a –80°C. Ambos grupos fueron descongelados, el fluido del seno ventral se colocó en BA y los camarones fueron vueltos a congelar en 3 días sucesivos iniciando al día 4 posterior a la recolección, y nuevamente en los días 30 y 60 para un total de cinco ciclos de congelamiento-descongelamiento. Se desarrollaron pequeñas colonias circulares blancas de bacterias similares a Streptococcus muy numerosas para poder contabilizarse, idénticas a las observadas durante este estudio, en todas las placas de agar sangre (BA) incluyendo a las preparadas después de haber descongelado los 10 camarones por quinta ocasión. El número y morfología de las colonias fueron virtualmente idénticos en los cultivos de camarón almacenados tanto para los de -20°C y los de –80°C. Los análisis microscópicos de las preparaciones de tinción de gram de la colonias representativas extraidas de cada placa confirmaron la presencia de cocos gram positivos en cada muestra.

Fig. 5 Secciones histológicas de la infección originada naturalmente y la inducida experimentalmente por Streptococcus sp. dentro del órgano linfoide y la arteria subgástrica de Litopenaeus vannamei. (A) Órgano linfoide de L. vannamei mostrando arteriolas individuales en las secciones cruzadas (flechas). Tinción H&E. (B) Órgano linfoide de L. vannamei con la infección natural por Streptococcus sp. Nótese la apariencia homogénea y altamente vacuolada del órgano y la pérdida de la morfología de la arteriola. Están presentes algunos pequeños nódulos hemocíticos melanizados.(flechas). Tinción H&E. (C) Vista muy aumentada de las células del órgano linfoide en (B); todas las células están altamente vacuoladas. El fino punteado que se ve alrededor de las células y el forro en el perímetro interior de las vacuolas son cocos. Tinción H&E. (D) Vista muy aumentada de una sección del órgano linfoide en un camarón al que se le indujo la infección. Son evidentes los numerosos cocos diminutos ( esferas azules) dentro del intersticio y están presentes numerosos vacuolas citoplásmicas. La arquitectura normal de la arteriola está ausente y se encuentran algunos nódulos melanizados (flechas). Tinción gram. (E) Sección longitudinal a través de la arteria subgástrica de un camarón con la infección exprimentalmente inducida (Bioensayo 2). Note los cocos gram positivos dentro de la pared arterial, vacuolas y lumen. (L) Tinción gram.

Discusión Los análisis histológicos de los juveniles L. vannamei cultivado realizados en septiembre de 2008 demostraron la presencia de cambios únicos en el órgano linfoide asociados a una infección sistémica presuntamente por Streptococcus sp. Se observaron por la histología de rutina numerosos cocos dentro de la hemolinfa en prácticamente todos los tejidos a lo largo del camarón junto con una respuesta inflamatoria relativamente leve en la parte del huésped como se sugirió debido a la ausencia de lesiones melanizadas. El agente bacteriano posteriormente fue aislado del tejido fresco de L. vannamei y de las muestras de hemolinfa originarias de las dos granjas que habían sido afectadas por una consistente mortandad crónica de camarones. Basados en el trabajo de caracterización bioquímica preliminar realizado en este estudio, se encontró que cepa bacteriana es no hemolítica, inmóvil, negativa para oxidasa y catalasa, del Grupo B de Lancefield, cocos gram positivos que

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reaccionan positivamente con los primers PCR universales se estreptococos. Aunque los análisis de la cepa utilizando el kit API strep 20 y el sistema Biolog produjeron una identificación de especies conflictiva (S. uberis vs. S. parauberis), los resultados globales indicaron definitivamente que la cepa pertenece al género Streptococcus. Históricamente, la diferenciación entre estas dos especies de estreptococos es difícil fenotípicamente ya que S. parauberis era clasificada como S. uberis tipo II en el pasado (Jayarao et al. 1991). La composición final de la cepa a través de los análisis genotípicos fue más allá del alcance de esta investigación y es el enfoque de un estudio que se está llevando a cabo. La inyección a juveniles L. vannamei SPF con un inóculo que contenía la cepa Streptococcus sp. (Bioensayo 1) dio como resultado una mortandad del 100% dentro de los 3 días posteriores a la inyección y produjeron lesiones histológicas en todos los camarones examinados idénticas a los observadas en los L. vannamei infectados de manera natural. Se recuperó exitosamente la cepa y se obtuvo un cultivo puro para utilizarse en el siguiente ensayo. Los resultados del Bioensayo 2 demostraron con los L. vannamei SPF pueden ser infectados por medio del agua o por medio del alimento con mortandades acumulativas de 80–100 and 40–100% respectivamente, dentro de un periodo de 12 días. Las concentraciones bacterianas de ~106 CFU ml–1 o más por vía acuática, como se informó en los estudios de infectividad en Vibrio sp. (Saulnier et al. 2000), fueron suficientes para inducir Estreptococosis en los camarones de prueba. Similar al Bioensayo 1, los descubrimientos histológicos de 15 camarones de prueba del Bioensayo 2 demostraron que la exposición per os y por vía acuática a la cepa de Streptococcus sp. causó una bacteremia y cambios histológicos idénticos a los observados en el camarón cultivado infectado naturalmente. Además, se obtuvo nuevamente un cultivo puro de la cepa del camarón infectado experimentalmente y se encontró que era morfológica y bioquímicamente idéntica a la original. La inducción exitosa de la enfermedad por 3 diferentes vías de exposición y la consiguiente recuperación del agente causante cumple con los criterios de los postulados de Koch para estas bacterias (Koch 1884), estableciéndola como la causa del primer caso reportado de estreptococosis en un camarón peneido marino del hemisferio occidental.

La única enfermedad de camarón reportada hasta el momento en la literatura que es similar a nuestros descubrimientos es la enfermedad del músculo blanco (WMD) de Macrobrachium rosenbergii, que es causada por dos distintos Lactococcus spp. (Wang et al. 2008). Cheng & Chen (1998) demostraron que las infecciones con el agente WMD mediadas por inyección en camarones de agua dulce dan como resultado una mortandad del 100% a los 11 días posteriores a Fig. 6. Secciones histológicas de los tejidos de L. vannamei sometidos a la tinción de gram muestran cambios de moderados a severos en el camarón con las la inyección. Sin infecciones por Streptococcus sp. inducidas exprimentalmente. embargo, como (A) Laminillas branquiales secundarias con numerosos cocos intravasculares. no se especifican (B) Arteria en la laminilla branquial principal con un gran agregado hemocítico las dosis inyecta- que contiene numerosos cocos. Miocardio con numerosos cocos libres en la hemolinfa y 2 agragados hemodas, no podemos (C) cíticos. comparar las pa- (D) Músculo esquelético con numerosos cocos interfascicular y algunos hemotogenicidad de la citos vacuolados. enfermedad con (E) Esófago con numerosos cocos extracelulares y algunas células vacuoladas la infección con contaminadas por bacteria dentro del tejido conectivo submocoso. Streptococcus hemolinfa dada, pueden servir como valiosp. en L. vannamei. Los análisis histo- sas herramientas para hacer un presunto lógicos de M. rosenbergii infectado ex- diagnóstico rápido de estreptococosis en perimentalmente fue limitado al músculo el campo. esquelético y al hepatopáncreas. La respuesta inflamatoria reportada fue de alguLos cambios histológicos causados na manera similar a nuestras muestras de por esta enfermedad en el órgano linfoide, L. vannamei en términos de encontrar nó- junto con la amplia distribución de cocos dulos hemocíticos melanizados dentro de a través de los tejidos, son únicas en los los senos hemales del hepatopáncreas e peneidos, no reportados previamente y infilitrados hemocíticos en el músculo es- pueden ser utilizados para hacer un diagquelético, pero serían necesarios análisis nóstico definitivo de estreptococosis en de tejidos adicionales de M. rosenbergii secciones sometidas a la tinción de gram. para hacer una comparación completa. A diferencia de la formación de esferoides Curiosamente, ambas cepas bacterianas en el órgano linfoide seguida de la conproducen hemolinfas blancas opacas o fiscación de varios virus del camarón y “lechosas” es sus respectivos huéspedes otros pequeños agentes antigénicos por como resultado de una alta concentra- hemocitos (Hasson et al. 1999) o la ención de bacterias circulantes. En vista de capsulación hemocítica de las bacterias la falta de otros signos clínicos patentes formando nódulos melanizados dentro del de enfermedad en L. vannamei infectado, órgano linfoide y otros tejidos vascularizaeste descubrimiento junto con la verifica- dos como se observa con la vibriosis sisción al microscopio de numerosos cocos témica (Lightner 1996), la estreptococosis gram positivos dentro de la muestra de industriaacuícola

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Fig. 7. Secciones histológicas de varios tejidos de L. vannamei sometidos a la tinción de gram demuestran presencia extracelular e intravacuolar de cocos gram positivos en el camarón con las infecciones por Streptococcus sp. inducidas exprimentalmente. (A) Submucosa del intestino medio. (B) Tejido hematopéyico (C) Senos hemal y hepatopancreático (D) Glándulas antenales del seno hemal (E) Intestino ciego del intestino medio anterior del tejido conjuntivo (F) Células neurosecretoras de un segmento del ganglio en el cordón nervioso ventral.

en L. vanammei produce vasculitis particular en OL. Esta enfermedad se caracteriza por la presencia de cocos que contienen vacuolas citoplásmicas (fagosomas) en numerosos hemocitos junto con una reducida cantidad de pequeños nódulos intersitiales hemocíticos melanizados. En infecciones severas, la morfología normal de la arteriola del OL se pierde y es reemplazado por células vacuolazas contaminadas por bacterias (Fig. 5). Estas células parecen incrementarse en número progresivamente dentro de las paredes de las arteriolas, esparciéndose dentro de los lúmenes de la arteriola y alrededor de los senos hemales hasta que ya no son perceptibles por la luz del microscopio y reemplazadas por un campo sólido de células vacuoladas (Fig. 5B,C). Estos cambios pueden considerarse el sello distintivo de la enfermedad y sugiere que la bacteria es fagocitada exitosamente y secuestrada por estos presuntos hemocitos o los hemocitos son activamente invadidos por la bacteria como ha sido demostrado que ocurre en algunas líneas de células epiteliales de mamíferos tras la exposición experimental a Streptococci del grupo B (Rubens et al. 1992, Almeida & Oliver 1995). Una vez en el fagosoma los cocos continúan duplicándose, llevando a una lisis celular eventual y luego suelta la progenie bacteriana en los tejidos del rededor. Otra posibilidad es que la bacteria simplemente utilice el fagosoma como un refugio seguro donde está protegida de las respuestas inmunes del huésped y expuesto a los antimicrobianos sin duplicarse. industriaacuícola

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Zlotkin et al. (2003) informó de un fenómeno similar en fagocitos de salmónidos expuestos a S. iniae. Apodado el “efecto del caballo de Troya”, estos investigadores demostraron S. iniae fagocitada, no solo sobrevive en peces macrófagos, sino que produce apoptosis en esta células, minimizando efectivamente la respuesta inmune del huésped mientras está siendo transportado y entregado a regiones generalmente inaccesibles como los nervios del sistema central. Se necesitan el análisis ultraestructural de las células del OL tiempo de muestreo del camarón en curso junto con una evaluación de su índice apóptico para determinar si el modo de entrada y las incidencias reportadas en los fagocitos de peces infectados con estreptococos o la células epiteliales de los mamíferos spn comparables a los hemocitos del camarón infectado con estreptococos.

demostrado experimentalmente que las cepas S. parauberis en el ganado y en el rodaballo puede durar 1 mes en agua salada y hasta 6 meses en sedimento marino entrando en un estado latente para así persistir por periodos más largos en el ambiente marino. Esta bacteria viable aún no cultivable puede estar presente en gran número en el ambiente, pero no son detectables a través de un recuento normal de placa (Currás et al. 2002). Esta característica, combinada con el hecho de que muchas especies de estreptococos ocurren naturalmente en el ambiente y La prevención y tratamiento para esta nue- puede llegar a ser endémica para una granja (Yanong & va enfermedad bacteriana ya resulta difícil Francis-Floyd 2006), sugiere para los productores que enfrentan este pro- que su detección y eliminación podría ser problemática. blema. La ubicación intracelular del agente En el Bioensayo 3 un total de influenciará el desarrollo de estrategias de ges- 10 camarones fueron infectados de manera experimental tión para el tratamiento de esta enfermedad. La prevención y tratamiento por medio de la inyección de para esta nueva enfermedad bacla cepa de Streptococcus sp. teriana ya resulta difícil para los Y murió dentro de los 3 días biótico para combatir el NHP. Otra estrateproductores que enfrentan este problema. gia empleada por los productores es redu- posteriores como en el Bioensayo 1. PosLa ubicación intracelular del agente in- cir la susceptibilidad a las enfermedades teriormente se llevaron a cabo pruebas de fluenciará el desarrollo de estrategias de bacterianas en la población minimizando congelamiento-descongelamiento múltigestión para el tratamiento de esta enfer- las condiciones estresantes del ambiente ple de 5 camarones a –20°C y 5 a –80°C. medad. Los resultados del antibiograma del cultivo basados en la premisa de que Después de un total de 5 ciclos de congeindican que la cepa es susceptible a una el Streptococcus sp. responsable es un lación-descongelación durante un periodo variedad de antibióticos incluyendo la oxi- patógeno oportunista y los brotes están de dos meses, el organismo Streptococtetraciclina (OTC) (P. W. Varner & K. W. relacionados con el estrés. Esto se intentó cus sp. fue cultivado exitosamente de los Hasson datos no publicados). Sin embar- reduciendo las densidades de población, senos ventrales de los 10 camarones en go, la adición de alimento medicado de incrementando los recambios de agua y cada ocasión. Estos resultados demuesOTC a los estanques afectados no pone a través de cosechas más temprana con tran que la cepa utilizada en esta serie fin a las mortandades. Especulamos que resultados combinados se reportaron. Se de estudios es muy resistente a la congela localización intracelular del organismo reportó que la baja concentración de oxí- lación a largo plazo y múltiples ciclos de pueda protegerlo contra los antimicrobia- geno disuelto incrementa la virulencia y congelación-descongelación y las difenos como OTC, haciendo el tratamiento distribución de la enfermedad Enterococ- rencias en las temperaturas congelantes de los camarones ya afectados ineficaz. cus seriolicida en cola amarilla Seriola no tienen un afecto aparente en la viabiquinqueradiata (Vendrell et al. 2006). Se lidad del organismo. Los descubrimientos Esto es similar al problema en el tra- informó que el oxígeno disuelto (OD) du- colectivos de este estudio establecen la tamiento de la hepatopancreatitis necroti- rante la noche bajó de 2.5 a 3.5 ppm en existencia de una nueva enfermedad eszante (NHP) una enfermedad intracelular las granjas con camarón infectado así que treptocócica en los camarones peneidos de L. vannamei por bacterias similares a debe ser probada la aireación continua- que puede dispersarse potencialmente a las rickettsias (Frelier et al. 1992). La pre- mente por las noches para determinar si otros países a través ya sea de camarón vención exitosa de NHP se ha alcanzado a el eludir las concentraciones de OD su- infectado vivo o congelado. través de la rápida aplicación de alimento bóptimo puede mejorar la supervivencia medicado con OTC a los primeros signos en tanques con camarón infectado por El énfasis de la investigación neceside brote mientras el camarón sigue siendo Streptococcus. ta enfocarse en desarrollar primers PCR alimentado Brock & Main 1994) y examipara la detección de esta Streptococcus nar las regiones afectadas por estreptocoOtros esfuerzos se han enfocado en sp., la identificación de la fuente(s) de la cos podría ser una estrategia que vale la encontrar y eliminar la fuente de la enfer- bacteria y desarrolar un plan de gestión pena. Sin embargo, la amenaza de pro- medad. Sin embargo, la eliminación de para la prevención, contención y trataducir resistencia al OTC en Streptococcus esta bacteria a través del secado de la miento de los brotes futuros. sp. es preocupante, especialmente en las granja puede resultar difícil, como se ha regiones que ya están usando este antiindustriaacuícola

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Este artículo fue publicado originalmente en DISEASES OF AQUATIC ORGANISMS Vol. 86: 93–106, 2009. Septiembre 23 y se reprodujo con su autorización.

industriaacuícola

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Ken W. Hasson kwhasson@yahoo.com, Ernesto Matheu Wyld, Yaping Fan, Sonia W. Lingsweiller, Stephanie J. Weaver, Jinling Cheng, Patricia W. Varner Texas Veterinary Medical Diagnostic Lab, 1 Sippel Rd, College Station, Texas 77843, USA


i

investigación

Camaronicultura

¿Actividad sostenible o industria contaminante? Resumen

A

ctualmente la acuicultura es la actividad agroindustrial de mayor desarrollo a nivel mundial, con un volumen global superior a los 60 millones de toneladas, y un valor de alrededor de 15 mil millones de dólares, con lo que contribuye en más del 40% a la producción de organismos acuáticos. La camaronicultura es una actividad con un desarrollo explosivo a nivel mundial y en nuestro país. La camaronicultura Mexicana creció alrededor de 17 % en solo dos años y se espera un crecimiento sostenido en los próximos 10 años. Los mayores tropiezos de la actividad son aquellos relacionados con

Panorama mundial de la acuicultura Asia es la región con el mayor desarrollo acuícola y China es el país líder con una producción en 2005 de 32.5 millones de toneladas (alrededor del 67 % de la producción mundial total). Las principales razones para este desarrollo tan polarizado son las siguientes: • Una mayor tradición de los países asiáticos en la actividad acuícola • Un mayor consumo per capita. Los peces proporcionan el 26% de la proteína consumida en Asia y el 22% en China, en comparación con menos del 10 % en Norteamérica (Tidwell y Allan 2001) • Se cuenta con enormes superficies adecuadas para acuicultura de tipo extensivo. China cuenta actualmente con una superficie de 2,219,976 ha de estanquería acuícola (Xia et al. 2004). • La necesidad de generar alimento, empleo y divisas para esos países (Naylor et al. 2000). China es el país que cuenta con el mayor número de piscicultores. Los diez principales países en cuanto a la producción acuícola en 2004 fueron: China, India, Vietnam, Indonesia, Tailandia, Bangladesh, Japón, Chile, Noruega y Filipinas

la aparición de epizootias y con el impacto ambiental sobre los ecosistemas aledaños a las granjas. Algunas alternativas han sido y/o están siendo aplicadas para minimizar estos problemas. El documento concluye que la camaronicultura puede ser una actividad sostenible si es manejada con la asesoría de expertos en investigación científica y desarrollo tecnológico y que en su crecimiento y expansión, sean tomados en cuenta no solo los beneficios económicos, sino primordialmente los aspectos ecológicos involucrados.

Mayores contribuciones de la acuicultura mundial Entre los beneficios más importantes que se le pueden atribuir a la actividad acuícola mundial, son los siguientes: 1.- Generación de millones de empleos: 36 millones de empleos directos (Tidwell y Allan, 2001). 2.- Contribución al desarrollo social. Cuando se desarrolla en áreas rurales se ejerce presión para mejorar infraestructura y promover el desarrollo de pequeñas comunidades, generando así un impacto social positivo (Malagrino et al. 2008). 3.- Generación de divisas para países en desarrollo. En estos países la producción de peces marinos y crustáceos durante el periodo de 2000-04 creció a una tasa anual de 11%, mientras que en países desarrollados fue de 2% (FAO 2007). 4.- Diseño de tecnologías apropiadas, tales como sistemas de recirculación de agua bioseguros, jaulas flotantes, sistemas con proliferación de bacterias nitrificantes en la columna de agua (Jory 2008), entre otros. 5.- Desarrollo de proyectos sustentables para ciertas especies, como el cultivo tierra adentro de L vannamei en el Valle de Mexicali B.C., donde el agua de los efluentes, enriquecida con nutrientes, se utiliza para riego agrícola.

industriaacuícola

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Fig. 1. Estanque de 1 ha con recambio de agua por diferencia del nivel de mareas. (tomado por CortesJacinto, E, CIBNOR).

Causas de las grandes fallas en la Actividad Camaronícola En términos generales las causas más importantes que han ocasionado las grandes fallas de la camaronicultura son las siguientes: 1. Mala selección de los sitios para el establecimiento de las granjas, principalmente debido a un desconocimiento de la capacidad de carga de los cuerpos de agua para la toma y descarga de la misma 2. Malas prácticas de manejo especialmente en aspectos tales como: sobrealimentación y sobrefertilización, uso de alimentos inadecuados, subutilización del alimento natural, falta de tratamiento de los estanques entre ciclos de cultivo y uso de especies exóticas que tienen impactos ecológicos en las aguas costeras.

Alternativas para avanzar en la sustentabilidad • Una adecuada selección del sitio en que serán ubicadas, considerando el tipo de suelo, su cubierta vegetal, tipo de terreno, y otros factores edáficos. En la actualidad se han utilizado los sistema de información geográfica (GIS, siglas en Inglés), así como el sistema de posicionamiento global (GPS, siglas en Inglés),

• Manejo del recambio de agua, con la menor cantidad posible de efluentes. Son también deseables sistemas en donde se maneje el recambio con la menor cantidad de energía, como los estanques de marea que se manejan en el CIBNOR, en La Paz, B.C.S. (Fig. 1). • Tratamiento de los estanques entre ciclos de cultivo. Remover los sedimentos de los estanques.

• Una evaluación precisa de la capacidad de carga de los cuerpos de agua para la toma y descarga.

• Cultivo de especies nativas. El desarrollo del cultivo de especies nativas de alto valor sería altamente deseable.

• Un adecuado sistema de toma y descarga del agua. Se debe evaluar la disponibilidad y la calidad de agua, condiciones climáticas, patrones de mareas, flujo de aguas continentales que incluyan niveles y frecuencia de inundaciones

• La implementación de prácticas adecuadas de manejo de los sistemas de cultivo, en términos de: alimentos y estrategias de la alimentación; fertilización, promoción y utilización óptima del alimento natural.

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La aplicación de cero recambio de agua y la tecnología de recirculación ha incrementado la confianza de los productores y su conocimiento del potencial de reducir el recambio de agua en

sus sistemas de producción de camarón. El cuadro 1, presenta un resumen de algunas especies que han sido evaluadas en policultivo o biorremediación.

Actualmente la acuicultura es la actividad agroindustrial de mayor desarrollo a nivel mundial contribuyendo en más del 40% a la producción de organismos acuáticos. Situación de la camaronicultura en México La producción acuícola en 2005 fue de 117,500 toneladas. Actualmente algunos grupos de especies están siendo considerados para acuicultura, como es el caso de peces de agua dulce (tilapias, pescado blanco, pejelagarto, entre otros), algunos peces marinos (atún, cabrillas, huachinangos, lenguados, etc), moluscos (almejas, pata de mula, mano de león, callo de hacha, abulones y pulpos), crustáceos dulceacuícolas (langosta de agua dulce, langostino) entre otros (erizos, pepinos de mar, etc.). En la figura 2, se presentan las áreas donde se practica la acuicultura de peces, moluscos, y crustáceos en ambiente dulceacuícola o marino. Existen aun varios aspectos en los que se debe avanzar para consolidar la actividad acuícola y que ésta llegue a ser una industria sustentable. Entre otros se pueden mencionar los siguientes: • Una mayor inversión en ciencia y tecnología orientada a la acuicultura en la que participen instituciones de educación superior (IES), gobierno y productores. • Una mayor cultura ecológica que realmente valore la importancia de mantener un equilibrio ente desarrollo económico y la salud del ambiente. • Una relación más estrecha entre productores, investigadores y gobierno. Modelo triple hélice (Fig. 3) • Avanzar en la creación de cadenas de valor (parques acuícolas integrales, empresas mixtas).

Fig. 2. Distribución de áreas de cultivo de especies dulceacuícolas y marinos en México

CONCLUSIONES

Institución de Educación Superior (investigadores)

Estados (gobierno)

en cuenta tanto los aspectos económicos, Industria Con base en la inecológicos, fi(productores) formación presentada nanciero, sociaen este documento, se les. puede concluir que: Fig. 3 Modelo de triple hélice, una eficiente comunica• Hay mución entre el gobierno, la academia y las empresas. chas herramien•La acuicultura tas actuales o mundial, es y continuará siendo una industria de gran importancia potenciales para avanzar en la sustentabidebido al crecimiento sostenido compa- lidad de esta importante industria alimentarado con otras actividades de producción ria, entre ellas: buenas prácticas de manealimenticia agroindustriales (pesca, gana- jo, códigos de conducta para la producción de especies acuícolas, ordenamiento cosdería, agricultura). tero, mejoramiento genético, alimentos • Actualmente en muchos de los casos, amigables, manejo de la productividad nala camaronicultura no es todavía una acti- tural, manejo de los efluentes, incluyendo vidad sustentable pero puede llegar a serlo prácticas de biorremediación, sistemas de si se maneja en forma adecuado, tomando recirculación y policultivo entre otros.

Edilmar CORTÉS-JACINTO1 ecortes04@cibnor.mx Luis R. MARTINEZ-CORDOVA2 y Marcel MARTÍNEZ PORCHAS 1 Programa de Acuicultura, Centro de Investigaciones Biológicas del Noroeste, Mar Bermejo 195, La Paz, 23090, B.C.S. 2Departamento de Investigaciones Científicas y Tecnológicas de la Universidad de Sonora. Blvd. Luis Encinas y Rosales, Hermosillo, Sonora, 83000, 3Centro de Investigación en Alimentación y Desarrollo, Carretera a La Victoria, Hermosillo, Sonora industriaacuícola

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i

investigación

Bacterias nitrificantes

y su aprovechamiento en la engorda de camarón

R

ealmente es muy poco el avance en el cultivo de camarón desde que tuvo sus inicios a nivel comercial, aún cuando se volvió una actividad económica importante, y si bien es cierto que se han dado algunos cambios, como en la elaboración (formulación, forma y características propias) de alimentos balanceados, así como la producción y particularidades en cuanto a la entrega de post-larvas, por citar algunos avances; también es cierto que hay rezagos en diversos tópicos como en mejoramiento genético, del cual mucho se habla pero poco se hace, calidad de agua o lo que desde siempre he venido escuchando y que aún me parece algo muy burdo, el tan mencionado “manejo”, y que en ocasiones no sé ni a lo que se refiere porque sencillamente se ha limitado a 4 simples pasos: preparación, siembra, engorda y cosecha; con sus variables, nacidas de ciertas necesidades técnicas, financieras y de mercado, como la pre-engorda y la pre-cosecha, mismas que en muchas granjas ya forman parte del proceso medular del proyecto técnico e

incluso del proyecto financiero. Pero estos 4 pasos, por no citar tan solo 3, si descartamos el último paso que sólo representa la búsqueda del retorno de inversión, es lo que realmente debe ser ¿el manejo?, es decir, basamos una inversión con un riesgo alto, medio o bajo, dependiendo del cristal con que se mire, en un proceso que se ha vuelto tan rutinario y que sigue siendo igual de burdo como lo conocí desde hace más de 15 años. Actualmente las características principales del cultivo de camarón han sufrido transformaciones, mismas que pueden expresarse como altos costos de producción, derivados de fluctuación de paridad peso-dólar, riesgos sanitarios, caída de precios, competencia desleal de camarón importado en forma ilegal, por citar algunas y que están poniendo, sino es que ya lo está, en un hilo al negocio del camarón, todo ello nos obliga a buscar estrategias que consientan reducir no sólo el costo de producción sino también los riesgos sanitaros, al mismo tiempo que ofrezcan industriaacuícola

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resultados económicos que le permitan al inversionista tener la confianza de que la actividad, pero sobre todo el retorno de su inversión, tendrá cierto grado de “seguridad”; cuando lleguemos a este punto estoy seguro, y hasta entonces estaré satisfecho, de que en verdad habremos encontrado el “manejo” apropiado que vuelva, de esta actividad, toda una industria económica. Tratando de alcanzar ese tan anhelado “manejo técnico”, que más que técnico tiene que versar en un manejo económico, buscando el rápido retorno de la inversión al tiempo que permita optimizar los recursos disponibles (tiempo, clima, superficie de cultivo, infraestructura, equipamiento, personal, etc.) se ha llegado a la producción masiva de bacterias nitrificantes que, aplicadas a los estanques durante el tiempo que dura el ciclo productivo, nos ha

nergia que al final del día nos ofrece un menor costo de producción, es ahí donde debemos aplicarnos, procurando hacer de todo ello una constante en términos de resultados.

Nitrosomona a 40x

ofrecido una mejora inmediata en suelo, agua, y estado sanitario de camarón, que a su vez se traduce en un mejor equilibrio del sistema productivo, generando una si-

Con aplicaciones frecuentes de bacterias nitrificantes (Nitrosomonas sp. y Nitrobacter sp.), en concentraciones entre 8 x 108 y 10 x 108 cel./ml., 1 vez por semana al inicio del ciclo de producción y 3 veces por semana ya en la etapa final del ciclo, con alguna cuarta aplicación en estanques particulares sobre todo cuando las biomasas se encontraban por arriba de 10 ton./ha o bien cuando se reducía considerablemente el período de recambio, alcanzado un máximo de 30 días al final del ciclo sin recambio de agua, se logró obtener los resultados que a continuación se enlistan, con densidades de siembra de 43 a 110 pl/m2:

Uso en estanques - Se hacen aplicaciones de 20 L./Ha/semana, a medida que aumenta la biomasa se incrementan las frecuencias de aplicación hasta 3 veces por semana; se puede mantener como parte del protocolo. - Durante los muestreos de crecimiento se observaron mejores condiciones de suelo, sin presentarse lodos negros que regularmente eran levantados por la atarraya. - Durante los mismos muestreos se observaron, en todo el ciclo productivo, camarones muy limpios, tanto en branquias como en apéndices y cutícula, a diferencia de ciclos anteriores a la bacteria, donde se observaban animales sucios, sobre todo en los meses de mayo y junio, temporada de estiaje que coincide con alta biomasa (de 6 a 10 ton./Ha dependiendo del módulo que se trate, cada módulo tiene una densidad de siembra específica). - Cuando por condiciones de pérdida de productividad primaria, el oxígeno caía hasta <0.5 mg./L. no se observaron camarones levantados, consideramos que por la limpieza que presentaban en sus branquias el intercambio gaseoso se llevaban a cabo más eficientemente. - La sobrevivencia se mejoró ligeramente, de estar entre un 79-82% se incrementó a un 82-85% en ciclo de 150 días.

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Patología - El reporte de patología arrojó G1-G2, incluso se observaron G0 en protozoarios, cuando regularmente estábamos en G3 y G4, ya con 12 semanas de cultivo. Con el uso frecuente de las bacterias nitrificantes estas observaciones se vuelven una constante. -  Se observó exclusión en vibrio verdes y reducción en amarillos, si bien es cierto que el vibrio no es un problema en la zona, es mejor no tenerlos. Los primeros resultados de laboratorio arrojaron cero y muy bajos niveles de vibrio verde mientras que los amarillos apenas se encontraron, cuando en otros ciclos sin uso de bacterias se presentaban ambas (verdes y amarillas) en concentraciones de miles ufc/ml. - Se eliminaron adherencias en extremidades así como cicatrices en cutícula, condiciones observadas frecuentemente antes del uso de las bacterias. La presencia de materia orgánica en branquias se mantuvo en G0-G1 y cuando alcanzaba G2 la bajábamos con aplicación de bacterias, no se observó necrosis a diferencia de otros años sin el uso de bacterias nitrificantes.

Actualmente las características principales del cultivo de camarón han sufrido transformaciones, que están poniendo, sino es que ya lo está, en un hilo al negocio del camarón. Alimento - Actualmente estamos alimentando con formulación para cultivo extensivo y 30% de proteína con los mismos  crecimientos que teníamos anteriormente con el uso de formulaciones con mayor proteína y nutricionalmente más densas. - Se logró bajar un 15% el costo en alimento, por concepto de formulación y proteína. -  No se ha determinado si el FCA se logró reducir, estamos haciendo los análisis correspondientes para determinarlo.

Aireación y recambios - Las primeras observaciones que nos hicieron pensar que, efectivamente, las bacterias estaban trabajando fueron hechas por las lecturas de oxígeno, ya con 6 ton/ha. los aireadores se operaron a las 02:00 - 03:00 hrs., cuando regularmente se estaban operando desde las 22:00 hrs.

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- Se redujo el consumo de energía eléctrica entre 30-40% por concepto de kw-hora, no así por concepto de hp/kg de camarón; la relación hp/kg. sigue siendo la misma (1 hp/500 kg.) como límite superior. -  Se redujo el porcentaje de recambio, de estar en 10-15% diario se bajó al 1015% cada tercer día e incluso se mantuvo en 0% durante un mes al final del ciclo de producción, en un módulo de la granja, ya con 7 ton./Ha, con una mayor frecuencia

Con estos resultados y a sabiendas que estamos por el camino correcto, al menos desde nuestro punto de vista, nos hemos dado a la tarea de seguir explorando y explotando los elementos que tenemos a nuestro alcance pero procurando mantener un costo de producción que permita la operación del proyecto y sobre todo que nos pueda ofrecer un crecimiento a corto o mediano plazo, y más aún encontrar un verdadero manejo que ofrezca resultados satisfactorios ciclo tras ciclo.

de aplicación de bacterias. - Regularmente iniciábamos recambios al mes de siembra, con el uso de las bacterias el primer recambio lo hacemos hasta los 2 meses de cultivo, antes de ello reponemos niveles por evaporación, que debe ser como del 5% en ese tiempo. -  Los valores de oxígeno disuelto han sido más estables, sin las características caídas que teníamos anteriormente.  

Lograr estos beneficios es el resultado del trabajo diario durante 2 años que llevamos usando bacterias nitrificantes de manera frecuente, hoy ya forma parte de nuestro protocolo operativo y estoy seguro que el día de mañana estará incluido en el “manejo” de un importante número de exitosos productores de camarón que pretendan multiplicar resultandos con la suma de factores, y que para las condiciones en tiempos de globalización sólo tenemos una opción: ser competitivos

Las bacterias utilizadas en este trabajo fueron adquiridas en la empresa Bacsol S.A. de C.V. Para mayor información comunicarse al : (669) 981 8571

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Ing. Miguel Olguín Pineda mangelop1@yahoo.com.mx Cel. 311-263-04-63


Sección GRANJAS

Se vende granja en el sur de Sinaloa

Se vende granja de camarón en el Sur de Sinaloa

Superficie total: 270 hectáreas Superficie construida: 210 hectáreas

Superficie total: 188 hectáreas Superficie construida: 153 hectáreas Energía eléctrica Acceso pavimentado

Totalmente equipada

Se vende granja de camarón en el Sur de Sinal Superficie total: 300 hectáreas Superficie construida: 89 hectáreas Energía eléctrica Acceso pavimentado

Se vende granja de camarón en el Centro de Sinaloa

Superficie total: 47 hectáreas

Se vende granja de camarón en el Norte de Sinaloa Superficie construida: 142 hectáreas Acceso a agua marina

Se vende granja de camarón en el sur de Sinaloa 40 hectáreas Equipada 1 generador de 50 Kw 12 aireadores O2

Sección TERRENOS

Se vende terreno en el sur de Sin 23 hectáreas Frente al mar Energìa eléctrica Carretera pavimentada

Se vende terreno en el sur de Sinaloa

Terreno en Bahía de Kino (Hermosillo, Sonora) 500 hectáreas 2 km frente al mar Cuenta con estudios topográficos y ambientales Tierra virgen Venta o renta

1300 hectáreas

Sección EQUIPOS 4 6 2 6 2 2 2

EQUIPO EN VENTA Paquete con uso de una temporada Tinas de Aclimatación de 3,000 Lts. Bin de plástico 800 Lts. (1.20 largo x 1.70 ancho x 0.945 mt de alto) Oxímetros YSI 55-12 Ft (055200) TODO por Básculas Nuevo León, Plato y Cucharón $152,209.31 Medidores de PH Impermeable Hanna H198127 Refractómetros de salinidad Termómetro de bolsillo (40 a 70º C –TH26) Contacto: ansofi9@yahoo.com.mx Cel: 0 45 (644) 114-1959 Tel.: (644) 418-8036

Para mayor información dirigirse con Manuel Reyes industriaacuícola e-mail:manuel.reyes@industriaacuicola.com Tel: 669- 981 85 7132


Baja California Sur

15 de diciembre 2009

El CIBNOR, participa en la red multinacional para estudiar el grado de sustentabilidad de la camaronicultura en México

Profesores-Investigadores de la RED ACUINNOVA, de izquierda a derecha, María Teresa Cancelo Márquez (Decano Facultad de Ciencias Económicas y Empresariales-USC), Gonzalo Rodríguez (España); Javier Aros (Chile); Alberto Majó (Uruguay); Eddie Aristizábal, Maricel Bertolotti (Argentina). Elda Fontinele Tahim (Brasil); Edilmar Cortes Jacinto (México); Luis Franco (Guatemala); Suyapa de Meyer, Daniel Meyer (Honduras); Evelyn Henríquez y Jorge Muñoz Brand (Chile).

Argentina, Brasil, Chile, Guatemala, Honduras, España, México y Uruguay, a través de las Instituciones de Educación Superior de cada país, el Instituto Nacional de Investigación y Desarrollo Pesquero (INIDEP), Universidad Federal de Río de Janeiro (UFRJ), Instituto de Fomento Pesquero (IFOP), Universidad de San Carlos de Guatemala (USAC), Escuela Agrícola Panamericana (EAP-Zamorano), Universidad de Santiago de Compostela (USC), Centro de Investigaciones Biológicas del Noroeste (CIBNOR), y la Dirección Nacional de Recursos Acuáticos (DINARA), respectivamente, con la participación de profesores e investigadores (Figura 1) crearon una alianza en el marco de una Red Temática de Innovación y Desarrollo de la Acuicultura en Iberoamérica (ACUINNOVA), coordinado por el Dr. Gonzalo Rodriguez Rodriguez (USC) (Figura 2), financiada por el Programa Iberoamericano de Ciencia y Tecnología para el Desarrollo (CYTED). Los objetivos de la Red son: 1. La creación y consolidación de un marco metodológico y conceptual que permita en encauzamiento común de investigaciones en curso sobre innovación y aprendizaje en actividades acuícolas, promueva el desarrollo de nuevas investigaciones y proyectos bajo una perspec-

tiva compartida, facilitando así los análisis comparados, la transferencia del conocimiento disponible y generado entre grupos, países y actividades acuícolas distintas. 2. Contribuir al desarrollo local y la suficiencia alimentaria de los territorios que sustentan las actividades acuícolas o tienen potencial para su desarrollo en Iberoamérica.

Los días 14 a 16 de septiembre de 2009 se llevo a cabo el “II Seminario sobre innovación y desarrollo en la acuicultura en Iberoamérica: estado de la situación y metodologías para el análisis” El evento se realizo en FF. CC. Económicas y Empresariales, de la Universidad de Santiago de Compostela (Santiago de Compostela, España). En donde se hizo un análisis y discusión del estado del desarrollo de la acuicultura en Iberoamérica, atendiendo a la situación de los diferentes países y especies cultivadas, así como a los aspectos condicionantes en aquellos países en los que la acuicultura aún no se ha desarrollado. El Dr. Edilmar Cortés Jacintom, Investigador del Centro de Investigaciones Biológicas del Noroeste, S.C. (CIBNOR), presento el trabajo “Camaronicultura: ¿Actividad sostenible o industria contaminante?”. Una revisión básica para llevar a cabo un estudio de la innovación en la camaronicultura en México, el cual constituye un tema de elevado interés académico y utilidad social. Por lo que, el CIBNOR llevara a cabo una encuesta en granjas de cultivo de camarón en los Estados de Baja California Sur, Guerrero, Sinaloa y Sonora.

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Previamente se realizaran planes de trabajo: I. Plan de trabajo para las entrevistas con las Instituciones Educativas y de Investigación (escuelas técnicas, universidades, centros tecnológicos, etc.) y II.Plan de Trabajo para Entrevista con las Asociaciones. II. Plan de Trabajo para Entrevista con las Asociaciones y/o Empresas Estos planes determinaran las muestras y diseño de las entrevistas para los distintos grupos de actores locales de cada Estado. El estudio de la innovación desde la perspectiva sistémica constituye un campo con una importante capacidad de crecimiento, además de importantes implicaciones a la hora de asesorar medidas de política económica que contribuyan al impulso de los sistemas productivos analizados.

Dr. Edilmar Cortés Jacinto (CIBNOR), en su ponencia, Camaronicultura: ¿Actividad sostenible o industria contaminante?.

Fuente: Edilmar Cortés-Jacinto ecortes@cibnor.mx Investigador Titular Programa de Acuicultura, CIBNOR, S.C. Mar Bermejo 195 Col. Playa Palo de Santa Rita. La Paz, B.C.S. México 23090 Tel. +52 612 123-8484 Ext. 3316


Sinaloa

26 de noviembre 2009

15 de diciembre de 2009

Impulsan iniciativa para tipificar robo de

La Comisión de Pesca de la LIX Legislatura del Congreso del estado presentó una iniciativa de reformas al Código Penal para el Estado de Sinaloa para tipificar el robo de camarón de las unidades de producción. En sesión, el secretario de la Diputación Permanente, Alejandro Higuera Osuna, leyó la iniciativa elaborada a propuesta de la Confederación de Organizaciones Acuícolas del Estado de Sinaloa (COADES). En la exposición de motivos, el documento destaca que en el 2007, en Sinaloa operaron 309 granjas de camarón en una superficie sembrada de 40 mil 866 hectáreas, con producción de 33 mil 408 toneladas y un valor aproximado a los 150 millones de dólares. Se trata de una actividad que además de producir alimentos, es importante fuente de empleos en las zonas costeras y rurales del estado, al generar 37 mil 192 empleos, de los cuales 11 mil 668 son directos. “Impacta, además, con efectos multiplicadores a la economía estatal al requerir insumos y servicios provenientes de las empresas sinaloenses”, señaló. Reconoció que es una riqueza que se genera en terrenos salitrosos, considerados inútiles para cualquier actividad productiva. En ese contexto, dijo el diputado Higuera Osuna, “la COADES ha exteriorizado su preocupación por los niveles de inseguridad pública que han repercutido en esta actividad”. Ante ello, la Comisión de Pesca de la LIX Legislatura elaboró la iniciativa de re-

forma al Código Penal para el Estado de Sinaloa para que se tipifique la conducta de robo de camarón en las unidades de producción como un delito equiparable. Asimismo, valora que la seguridad de las personas y la protección del patrimonio es un asunto de primera importancia y preocupación. Actualmente, las unidades de producción acuícola de camarón son objeto de robos, principalmente de producto vivo extraído de sus estanques, pero también en su transporte. Tales ilícitos se registran en las unidades productivas localizadas en su mayoría en la zona rural. Además, persiste el robo de maquinaria, equipo, partes mecánicas, equipo de bombeo, embarcaciones y sus motores y herramienta y otros instrumentos de trabajo. “Lo más grave de todo es la impunidad alarmante que caracteriza a este delito particular. Una de sus causas, sin duda, es un vacío en la ley o en sus procedimientos”, consideró Higuera Osuna. En la iniciativa, la Comisión de Pesca propone que se aumenten de 2 a 10 años de prisión si el robo se realiza mediante la portación o el uso de armas o cualquier otro objeto que pueda intimidar a la víctima. Además, si es el robo de producción acuícola de camarón o de cualquier otra especie, en su etapa de transportación, con independencia de su talla y volumen, que se desarrolle en las unidades de producción acuícola. Fuente: www.notimex.com.mx

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Fuente: www.

notimex.com.mx


Estados Unidos Nueva ley para la Acuicultura en mar abierto La congresal norteamericana Lois Grimsrud Capps ha introducido el mes pasado el Acta Nacional de la Acuicultura Sostenible en Mar Abierto de 2009 para proteger la salud del océano de los riesgos de la acuicultura en aguas abiertas. Esta legislación establece los primeros estándares nacionales legalmenteobligatorios para cómo la acuicultura debe ser realizada en mar abierto en los Estados Unidos. Actualmente no existen políticas ni leyes que gobiernan cómo este método debe ser gobernado en aguas territoriales de América, generalmente más allá de tres millas del litoral. “Es el momento para establecer un estándar para la acuicultura de mar abierto, y esta ley es un paso importante. La legislación ofrece un enfoque cautelar basado en la ciencia, incluyendo estándares primordiales ambientales, socioeconómicos y normas de responsabilidad,”explicó George Leonard, director del programa de acuicultura del Ocean Conservancy. “Necesitamos un marco nacional sólido para la acuicultura marina antes de que se produzca la expansión en nuestras aguas, y la congresista Capps es digna de elogio por mostrar liderazgo sobre esta impor-

tante cuestión nacional.” “Mi legislación representa un gran paso adelante en nuestros esfuerzos para establecer un marco normativo integral para el desarrollo de la acuicultura en aguas abiertas que equilibre las preocupaciones ambientales, sociales y económicas,” dijo la congresista Lois Capps. Yo creo que trabajando juntos podemos crear un marco de sentido común que garantice que el desarrollo de la acuicultura en mar abierto proceda de una manera ecológicamente sostenible”. En enero de 2009, el Consejo Directivo para la Pesca del Golfo de México desarrolló el primer programa federal de concesión de permisos para la acuicultura de mar abierto, sentando un precedente peligroso. Más tarde, el plan fue aprobado por NOAA (Administración Nacional Oceánica y Atmosférica). “La ley de acuicultura en mar abierto es justo el tipo de legislación que nuestro país necesita para evitar regulaciones fragmentadas como la que entró en vigor cuando se aprobó el plan de acuicultura del Golfo. La salud de los océanos y la economía costera es crítica y el peligroso precedente establecido para la acuiFuente: www.fis.com

cultura con el plan del Consejo del Golfo es una amenaza para todas las costas, desde Nueva Inglaterra hasta el Golfo de México a la costa del Pacífico,”concluyó Leonard. Ocean Conservancy ha estado trabajando en fuertes normas medioambientales para la acuicultura durante los últimos dos congresos y a través de las legislaturas estatales. Directrices del estado de California, aprobadas en 2006, sirven de modelo para el tipo de legislación nacional que prevé Ocean Conservancy. El proyecto de ley de California y la legislación federal presentado por Lois Capps asegurará que la acuicultura en mar abierto se desarrolle de manera ordenada, incorporando aportaciones apropiada del público, protegiendo el interés a largo plazo para el buen estado de los ecosistemas marinos y planteando riesgos mínimos para la pesca, fauna marina y los ecosistemas de que dependen.

Indonesia Gusanos reemplazarán a la harina de pescado en alimentos acuícolas

El Ministerio de Asuntos Marítimos y Pesqueros invertirá este año más de medio millón de dólares estadounidenses para apoyar la producción de gusanos como una fuente barata de alimento para los peces. Los gusanos pueden ser usados como base para los alimentos, en vez de la harina de pescado, el cual debe ser importado desde Chile a un costo alto. El ministerio planea construir 4 000 granjas pequeñas de alimentos acuícolas en Sumatra y Kalimantan debido a que cuenta con muchas plantaciones de palma aceitera y los gusanos pueden ser industriaacuícola

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cultivados usando los subproductos de los árboles de palma aceitera. Made L Nurdjana, director general de acuicultura del ministerio, indicó que mediante el uso de los gusanos como base para el alimento de los peces, los costos de los alimentos se podrían reducir a la mitad. En los últimos meses, los piscicultores han tenido sufrir los altos costos de los alimentos de peces, indicando que esto no les permite expandir sus operaciones Fuente: www.aquahoy.com


ESTADOS UNIDOS La acuicultura ecológica, una opción de futuro en la apuesta por la diversificación de la actividad pesquera Un reportaje de la Consejería de Agricultura y Pesca indica el sector de la acuitura está mejorando constantemente la calidad, procurando un desarrollo sostenible e innovando para mantenerse y obtener mayor rentabilidad. De esta manera, la acuicultura se ha convertido en una actividad con futuro que en los últimos años ha experimentando un avance considerable en Andalucía. A partir de julio de 2010 La acuicultura ecológica se regula a través de una norma exclusiva --reglamento comunitario 710/2009--, que unifica los criterios para la cría de peces, crustáceos, moluscos y también algas en todos los países de la Unión Europea (UE). La normativa comenzará a aplicarse en julio de 2010 y establece unas reglas principalmente relacionadas con la calidad del agua, la reducción del impacto ambiental y el bienestar animal. Uso eficiente de los recursos El buen uso de los recursos naturales favoreciendo el ahorro es el objetivo de unos de los proyectos de cooperación científica y técnica que están desarrollando conjuntamente Andalucía y Portugal. La incorporación de nuevas especies y nuevos sistemas de producción acuícola que permitan el ahorro energético y generen menor impacto ambiental es lo que pretende EcoAqua. Colaboración con la Universidad del Algarve En este proyecto la Junta de Andalucía, a través del Instituto de Formación e Investigación Agraria y Pesquera (Ifapa), la Universidad de Algarve y el Instituto de Investigaciones Pesqueras y del Mar de Portugal estudian el desarrollo de prototipos para el uso de energía solar térmica y fotovoltaica en instalaciones acuícolas y el uso de métodos que mejoren el tratamiento del agua. En paralelo, se realizan estudios técnicos para mejorar los procesos de reproducción y cría de especies marinas de interés común para la acuicultura suratlántica. Uso de energías renovables El ahorro energético y las energías renovables son los fines de este proyecto que se está realizando para la instalación en el Centro Ifapa ‘Agua del Pino’ de Cartaya (Huelva) de sistemas piloto dotados de estos sistemas. Con una inversión de casi

1,4 millones de euros de los que 1,2 los financia el Ifapa, se va a poner en marcha una planta piloto de captación de energía solar térmica que funcione todo el año enfriando o calentando el agua, según lo requiera su temperatura, y una planta de producción de energía solar fotovoltaica, con la colaboración de la Agencia Andaluza de la Energía. Avances tecnológicos El Centro ‘Agua del Pino’ ha ido incorporando en los últimos años importantes avances tecnológicos que suponen un considerable ahorro, como la producción de microalgas en continuo para alimentación, el control remoto de parámetros de cultivo, la dosificación automática del alimento, y la recirculación del agua que permite los cultivos en circuito cerrado. 19 instalaciones Actualmente en Andalucía existen 19 instalaciones autorizadas en mar, en la zona sur mediterránea de las provincias de Cádiz, Málaga Granada y Almería, donde se emplean diferentes sistemas de cultivo, como son jaulas flotantes, jaulas sumergidas, bateas, long-lines, etc... y proporcionan prácticamente el 50 por ciento de la producción andaluza. Apoyo al sector y promoción En la línea de impulsar un desarrollo sostenible, compatible con los recursos naturales, la Consejería de Agricultura y Pesca apoya al sector mediante dos líneas de ayudas a la creación, conversión o mejora de industrias agroalimentarias ecológicas y a la creación y mejora de estructuras de distribución de alimentos ecológicos, respectivamente. Se subvenciona hasta el 50 por ciento de los proyectos de inversión de las empresas manipuladoras, envasadoras, transformadoras y distribuidoras de productos procedentes de la acuicultura ecológica. Sostenibilidad También la UE a través del Fondo Europeo para la Pesca financia el desarrollo de medidas hidroambientales dirigidas a la mejora de la sostenibilidad en la acuicultura, como son explotaciones que incluyan la protección y mejora del medio ambiente, de los recursos naturales y la diversidad genética. Fuente: www.vidasana.org

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Directorio de Publicidad 5 Aeration Industries

Congresos y eventos 2 0 1 0

11 Acuain Contrportada Aquatic Eco-systems 27 Bacsol 1er. forro Corporativo BPO 31 Cultivos y Servicios Profesionales 13 Ecolarvas 9 ESE & INTEC 21 Proveedora de larvas Fitmar 28 Gama Electrónica 19 Geosintéticos y Lonas Aconchi 7 Geomembranas Plásticas de Occidente 30 Granja El Caracol

● Febrero 2010

● Abril 2010

Seafood Summit 2009 1 - 3 febrero :: San Diego, Cal., USA www.seafoodchoices.com/seafoodsummit.php

Tercera Jornada de Actualización en Tilapia Abril-Mayo :: Mazatlán, Sinaloa

61st Pacific Fisheries Technologists Conference 21 - 24 febrero :: Seattle, WA., USA www.pftfish.net

● Mayo 2010

● Marzo 2010

Australasian Aquaculture 2010 International Conference and Trade Show 23 - 26 Mayo :: Hobart, Tasmania www.australian-aquacultureportal.com

Aquaculture UK 19 - 20 Mayo :: Aviemore, Reino Unido aquacultureuk.com/

25 Hanna Instruments 29 Industrias Rovira 3 Larv Mar 35 Lensa 2do. forro Libros de Acuacultura 23 Membranas Los Volcanes 1 Proaqua 33 Serpacsa 15 Tarra Fertilizantes

World Aquaculture 1-5 Marzo :: San Diego, CA, USA www.was.org ACUI. Feria Internacional de Acuicultura de Galicia 2-4 Marzo :: Galicia, España http://www.acui.es/ Aquasur 2010 24-27 Marzo :: Puerto Montt, Chile http://www.aqua-sur.cl/

Fé de erratas En la edición 6.1 de Noviembre 2009, en la página 22 el anuncio de Membranas Plásticas de Occidente S.A. de C.V. aparece repetido y alterado, lo que provocó que el artículo de dicha página igualmente se alterara, sin embargo su contenido está intacto. Por esta razón ofrecemos una sincera disculpa a nuestros lectores y colaboradores. Revista Industria Acuícola

Hu or

Recetario Tilapia frita rellena Ingredientes: • 6 Tilapias grandes • 100 Gramos de rostizador • 1 Taza de aceite de oliva Para el relleno: • 3 Cebollas medianas • 2 Tazas de perejil picado • 3 Dientes de ajo • 2 Limones • Sal y pimienta negra al gusto Preparación:

en la bolsa rostizadora frotándola hasta que quede cubierta en su totalidad.

Se limpian las tilapias, se prepara el relleno picando finamente el perejil, ajo y cebolla; se mezclan en un bol y se agrega sal, pimienta negra y limón. Se rellena generosamente el interior de cada tilapia, en una bolsa plástica se va hechando el rostizador conforme se requiera. Se introduce cada tilapia húmeda industriaacuícola

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En un sartén de teflón con aceite de oliva caliente se fríen las tilapias hasta que queden doradas de ambos lados; se sacan colocàndolas sobre toallas absorventes. Se sirve con una guarnición de salsa de tomate y col, u otra al gusto. Buen provecho .


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Industria Acuícola Vol. 6.2  

Estreptocosis en camarón blanco cultivado, una nueva enfermedad bacteriana de los peneidos

Industria Acuícola Vol. 6.2  

Estreptocosis en camarón blanco cultivado, una nueva enfermedad bacteriana de los peneidos

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