Pediatrika
ISSN 2007-4247
Publicación trimestral.
Año 5, Número 1 Enero - Marzo 2015 Editor: Dr. Sergio Francisco Camacho Gutiérrez Urólogo Pediatra
Tinción de Gram. Dr. Sergio Francisco Camacho Gutiérrez Urólogo Pediatra Introducción: Iniciamos este 5º año de edición del boletín, la
Editores Asociados: Dra. María Lucía Pérez Ricárdez Infectóloga Pediatra Dr. Froylán Hernández Lara González Nefrólogo Pediatra
Tinción de Gram. Importancia Fundamento Técnica Aplicaciones en Microbiología Práctica clínica
Espacio Bioético PEDIATRIKA
permanencia de este medio de comunicación ha sido posible por aquellos que desean compartir. Para este número invité a un selecto grupo de profesionales quienes compartirán con nosotros todo lo relacionado con la Tinción de Gram. Método cuya utilidad sigue estando vigente y que fue descrito por el Dr. Gram en el siglo 19. La carrera es larga, el conocimiento infinito. Panel de expertos:
Es una publicación trimestral. Toda correspondencia debe dirigirse a: Dr. Sergio Camacho, Calle 29 A Sur # 3302, colonia el Vergel, C. P. 72400, Puebla, Puebla, México
Teléfono: (222) 2 42 28 14
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Blog: www.pediatrika2010.blogspot.com correo: sefrac2000@yahoo.com
NAGC: M.D.E. Narmí Adelaída Gutiérrez Cázares. Química farmacobióloga. nafab@live.com.mx RCRG: D. en C. Rosa del Carmen Rocha Gracia. Microbióloga. rochagra@yahoo.com PLZ: D. en C. Patricia Lozano Zarain. Microbióloga. plozano_zarain@hotmail.com GCC: M.C. Gerardo Cortés Cortés. Microbiólogo. dorarger1020@hotmail.com ZGC: M.C. Zita Gutiérrez Cázarez. Microbióloga. Hospital para el Niño Poblano. zitgut2000@yahoo.com GAPF: Q.F.B. Gustavo Armando Parada Flores. Hospital para el Niño Poblano. dragonarmando@hotmail.com MLPR: Dra. María Lucía Pérez Ricárdez. Infectóloga Pediatra. Hospital para el niño Poblano. lucia2857@hotmailcom CNC: Dra. Cruz Netza Cardoso. Maestría y Doctorado en Bioética UNAM. Trabaja en la ciudad de Puebla. Editora de la revista Bios & Ethos. dragoncorzo111@gmail.com
Dr. Camacho: Gracias por compartir con nosotros, nos puede comentar acerca de algunos aspectos históricos? IMPORTANCIA DE LA TINCIÓN DE GRAM EN EL DIAGNÓSTICO MICROBIOLÓGICO DE ENFERMEDADES INFECCIOSAS
2 profesor a partir de 1891 hasta 1900, en 1892 es nombrado Jefe de Medicina Interna en el Hospital Kongelige Frederiks, puesto que mantuvo hasta su jubilación en 1923 GRAM fue un gran clínico que murió en Copenhague el 14 de noviembre de 1938.
NAGC: M.D.E. Narmí Adelaida Gutiérrez Cázares. Química Farmacobióloga, Profesora y Maestra en desarrollo educativo. Bachillerato Gral. Oficial Prof. “Fausto Félix Aguilar Quiroz” Clave: 21EBHO148R . HISTORIA. GRAM, Hans Christian Joachim (1853-1938), (figura 1). Descubrió, en Berlín en 1884, el método para teñir las bacterias que lleva su nombre y que se usa ampliamente para clasificarlas. Mientras analizaba los tejidos de pacientes fallecidos por neumonía descubrió bacterias que mantenían al observarlas al microscopio la coloración (violeta) y otras no, realizó la tinción con violeta de genciana, después fijó con lugol, luego lavo con etanol. Más tarde Carl Weigert, agrego safranina después del lavado con etanol. De esta manera las bacterias se observaban teñidas de rojo, y fueron llamadas Gram negativas, frente a las que sí se teñían de violeta que eran las Gram positivas (figura 2). GRAM, nació en Copenhague en 1853, su padre fue Frederik Terkel Julius Gram, abogado y profesor; su madre fue Louise Cristiane Roulund. Recibió el título de “Bachiller” de la Escuela Metropolitana de Copenhague en 1871, era ayudante del profesor de Botánica y Zoología, se gradúo en Medicina en 1878. Viajo a Europa (Estrasburgo, Marburgo, Berlín) donde estudio Farmacología y Bacteriología entre 1878 y 1885. Durante varios años ejerció como interno en el Hospital de Copenhague, después como médico residente, se habilitó y estuvo como ayudante en farmacología entre 1886 y 1889. Fue
Fig. 1. Hans Christian Joaquim Gram (1853-1938).
A
B
C
D
Fig. 2. Tinción de Gram de cultivos bacterianos puros y muestras clínicas de pacientes pediátricos. A. Cepa pura de Staphylococcus aureus (Cocos Gran Positivos, color azul-negro). B. Cepa pura de Escherichia coli (Bacilos Gram Negativos, color rojo). C. Cocos Gram Positivos, de una Secreción de Herida Quirúrgica. D. Bacilos Gram Negativos de un Líquido de Diálisis Peritoneal.
Bibliografía 1.
www.bookrags.com/biography/hans-christian-joachingram-wob.
2.
www.iqb.es/historiamedicina/personas/gram.htm.
Dr. Camacho: ¿Pueden fundamento de este proceso?
explicarnos
el
RCRG, PLZ, GCC: D. en C. Rosa del Carmen Rocha Gracia. Profesor Investigador, Posgrado en Microbiología y Laboratorio de Enfermedades Hospitalarias y de la Comunidad. D. en C. Patricia Lozano Zarain. Profesor Investigador, Posgrado en Microbiología y Laboratorio de Enfermedades Hospitalarias y de la Comunidad. M. C. Gerardo Cortés Cortés. Posgrado en Microbiología. Centro de Investigaciones de Ciencias Microbiológicas del Instituto de Ciencias. Benemérita Universidad Autónoma de Puebla. FUNDAMENTO. Podemos definir al término tinción como el proceso mediante el cual las moléculas de un colorante se adsorben a una superficie. El uso de colorantes permite cambiar el color de los microorganismos y poder realizar su observación en el microscopio, dado que las bacterias son casi incoloras y no pueden observarse claramente sin algún tratamiento previo.
Peptidoglucano Pared Celular Grampositiva
Pared Celular
Membrana Plasmática
a) Grampositivo
Proteína
Lipopolisacárido Pared Celular Gramnegativa
Peptidoglucano Proteína
Membrana Externa Pared Celular
Gel Periplásmico
Membrana Plasmática
b) Gramnegativo Figura 3. Diferencias estructurales entre bacterias Gram positivas y Gram negativas. Bacterias teñidas con la tinción de Gram: bacilos Gram positivos (morados) y bacilos Gram negativos (rojos).
3 La tinción de Gram es una tinción diferencial, ya que utiliza dos colorantes y clasifica a las bacterias en dos grandes grupos: bacterias Gram negativas y bacterias Gram positivas. El principio de la tinción de Gram está basado en las características de la pared celular de las bacterias, la cual le confiere propiedades determinantes a cada microorganismo. La pared celular de las bacterias Gram negativas está constituida por una capa fina de péptidoglicano y una membrana celular externa, mientras que las bacterias Gram positivas poseen una pared celular gruesa constituida por péptidoglicano, pero no cuentan con membrana celular externa; así pues, la composición química y el contenido de péptidoglicano en la pared celular de las bacterias Gram negativas y Gram positivas explica y determina las características tintoriales (Figura 3). La pared de las bacterias Gram positivas es gruesa y consiste en varias capas interconectadas de péptidoglicano así como de ácidos teicoicos; generalmente, 80%90% de la pared de la célula Gram positiva es péptidoglicano. La pared de las bacterias Gram negativas, por otro lado, contiene una capa mucho más delgada de péptidoglicano, un espacio periplásmico y una membrana externa compuesta de fosfolípidos, lipopolisacáridos y lipoproteínas. Sólo del 10%-20% de la pared de la célula Gram-negativa es péptidoglicano. La tinción de Gram consiste en colocar como colorante primario al cristal violeta, que tiene afinidad por el péptidoglicano de la pared bacteriana. Posteriormente, se coloca lugol, que sirve como mordiente e impide la salida del cristal violeta por la formación de un complejo cristal violeta-yodo que satura los espacios del péptidoglicano de la pared bacteriana. En seguida, se coloca una mezcla de alcoholacetona, que deshidrata la pared bacteriana y cierra los poros de la misma y también destruye la membrana externa de las bacterias Gram negativas debido a que ésta es soluble en
solventes orgánicos, como la mezcla de alcoholacetona. Las bacterias Gram positivas, al contener una gran cantidad de péptidoglicano, retienen con mayor fuerza este complejo, mientras que las Gram negativas no lo pueden retener por tener menos cantidad de péptidoglicano. Por último, se coloca safranina, la cual funciona como un colorante secundario o de contratinción y sirve para teñir las bacterias que no pudieron retener el complejo cristal violeta-yodo. Así las bacterias Gram positivas se observan de color azul obscuro a morado, mientras que las Gram negativas se observan de color rosa a rojo. Hay bacterias de un mismo género que pueden observarse en la misma muestra como Gram positivas y como Gram negativas, a este evento se le llama tinción Gram variable, que es secundaria a la alteración de nutrientes, temperatura, pH o concentración de electrolitos. Pero no todas las bacterias se pueden teñir por este método ya que carecen de pared celular (micoplasmas) o la pared tiene una composición química diferente (como las micobacterias, que cuentan con una gran cantidad de ácidos micólicos); por lo que se usan otras técnicas especiales como la tinción de Wright, que utiliza eosina y azul de metileno para teñir compuestos ácidos o básicos. Bibliografía 1. López-Jácome LE, Hernández-Durán M, Colín-Castro CA, Ortega-Peña S, Cerón-González G, Franco-Cendejas R. 2014. Las tinciones básicas en el laboratorio de microbiología. Investigación en discapacidad, 3, 10-18. 2. Bartholomew, B. 2014. Random access gram stain automation: a review of current approaches. Lab management, 30–32.
Dr. Camacho: ¿Qué hay acerca de la técnica? ZGC: M.C. Zita Gutiérrez Cázarez. Microbióloga. Hospital para el Niño Poblano. Q.F.B. Gustavo Armando Parada Flores. Centro Universitario Interamericano Plantel Golfo Centro. Hospital para el Niño Poblano.
4 TÉCNICA 1) Realice un frotis fino a partir de la muestra biológica en estudio, o bien de un cultivo puro colocando en un portaobjetos, una colonia en una gota de solución salina isotónica estéril y déjelo secar al aire. Fije el material al portaobjetos pasándolo tres o cuatro veces a través de la flama de un mechero de Bunsen, cuidando que el material no se queme. 2) Coloque el frotis en un soporte para tinción y cubra la superficie con el colorante cristal violeta en solución, colorante primario, durante un minuto. Posteriormente lave con agua corriente de la llave. 3) Cubra el frotis con lugol durante un minuto y posteriormente lave nuevamente con agua corriente de la llave. 4) Sujete el frotis entre el pulgar y el dedo índice e impregne la superficie con unas gotas de alcohol-acetona (decolorante), hasta que el lavado deje de tener color violeta, (aproximadamente 10 segundos o menos). 5) Lave con agua corriente de la llave y coloque el frotis nuevamente en el soporte para tinción. Cubra la superficie con el colorante secundario safranina durante 30 segundos. Lave con agua corriente de la llave. Coloque el frotis en posición vertical, dejar secar al aire. Observe la preparación teñida bajo el objetivo 100 x con aceite de inmersión de un microscopio óptico. Las bacterias Gram positivas se tiñen de azul obscuro; las Gram negativas de color rojo (figura 6) Coloque el frotis en posición vertical, dejar secar al aire. Observe la preparación teñida bajo el objetivo 100 x con aceite de inmersión de un microscopio óptico. Las bacterias Gram
positivas se tiñen de azul obscuro; las Gram negativas de color rojo (figura 2). APLICACIONES EN MICROBIOLOGÍA. En la gran mayoría de los estudios Bacteriológico el primer paso para realizar el diagnóstico de una enfermedad infecciosa es el Examen Microscópico directo de la muestra biológica, con ello se proporciona al personal clínico un rápido diagnóstico presuntivo, además guía al Microbiólogo en la selección de los medios de cultivo necesarios para el aislamiento del agente. La tinción de Gram es una herramienta importante en este paso, nos ayuda a observar la morfología y disposición microscópica en los preparados de las muestras clínicas o cultivos y clasifica a las bacterias en Gram positivas y Gram negativas. Si en la tinción observamos Cocos Gram positivos (CGP) dispuestos en grupos sugieren Staphylococcus; la disposición en cadena indica Streptococcus. Los diplococos Gram Positivos (DCGP), con forma de lanceta son característicos de Streptococcus pneumoniae. Los diplococos Gram negativos (DCGN) arriñonados son característicos de las especies de Neisseria. Los bacilos grandes Gram positivos denotan especies de Bacillus o Clostridium; los bacilos Gram positivos más pequeños (BGP) sugieren especies de Listeria, si estos bacilos se observan en disposición similar a las “letras chinas” sugieren alguna de las corinebacterias. Los bacilos Gram negativos (BGN) curvos en muestras de heces diarreicas indican especies de Vibrio, en forma de alas de gaviota sugieren especies de Campylobacter. Los BGN rectos sugieren Enterobacterias o bacilos no fermentadores (ver figura 4). Todas estas morfologías descritas nos ayudan a orientar diagnósticos presuntivos, cuando se observan en los frotes directos de las muestras clínicas, conjuntamente con el sitio anatómico de procedencia de la muestra clínica analizada. Mencionaremos algunos ejemplos, si la muestra clínica es una secreción de lesiones cutáneas de un paciente con celulitis y se
5 observan CGP en cadenas sospechamos de Streptococcus pyogenes, si los CGP se observan en racimos, tétradas o en pares entonces nos sugiere la presencia de Staphylococcus aureus. Si el paciente presenta una mionecrosis y observamos en la tinción de Gram BGP grandes generalmente sin esporas, nos hace pensar en Clostridium perfringens. Cuando la muestra clínica es líquido cefalorraquídeo (LCR) y el paciente presenta meningitis y observamos en la tinción de Gram CGP en cadenas sospechamos A
B
C
D
E
F
Fig. 4. Tinción de Gram de cultivos puros bacterianos. A. Cepa pura de Staphylococcus
G
aureus (Cocos Gran Positivos agrupados). B. Cepa pura de Streptococcus spp. (Cocos Gram Positivos en cadena). C. Streptococcus pneumoniae (Diplococos Gram Positivos Lanceolados). D. Clostridium perfringens (Bacilos Gram Positivos grandes). E. Corynebacterium amycolatum (Bacilos Gram Positivos en forma de letras chinas. F. Campylobacter jejuni (Bacilos Gram Negativos en forma de alas de gaviota). G. Escherichia coli (Bacilos Gram Negativos).
de Streptococcus agalactiae, si los CGP observan como DCGP lanceolados entonces nos indica la presencia de S. pneumoniae, pero si los CGP se observan en racimos, tétradas o en pares entonces nos indica la presencia de un S. aureus o un Staphylococcus coagalasa negativo (SCN), si el LCR pertenece a un paciente con una válvula. Por el contrario si observamos BGN sospechamos de Enterobacterias, si los bacilos son pleomórficos probablemente esté presente alguna especies de Haemophilus, si las formas bacterianas son DCGN en forma de riñón seguramente se trata de una Neisseria meningitidis, pero si observamos BGP pequeños nos sugiere que probablemente se trate de una Lysteria monocytogenes. En el caso de muestras de líquido articular de pacientes con diagnóstico de artritis si observamos en la tinción de Gram CGP en cadenas nos sugiere la
presencia de S. agalactiae, si los CGP se observan en racimos, tétradas o en pares entonces pensamos en un S. aureus, si las formas bacterianas son DCGN en forma de riñón sospechamos de Neisseria gonorrhoeae, si observamos BGN probablemente se trate de alguna Enterobacteria. Si el paciente presenta una neumonía y la muestra clínica es un esputo o un líquido pleural y en el examen microscópico directo con la tinción de Gram observamos CGP en racimos, tétradas o en pares sospechamos de S. aureus, si los cocos se observan como DCGP lanceolados entonces sospechamos de S. pneumoniae. Pero si observamos BGN probablemente se trate de una Enterobacteria y otros bacilos. En el caso de los Exudados uretrales de pacientes con uretritis si observamos en la tinción de Gram de la muestra directa DCGN en forma de riñón sospecharemos de N. gonorrhoeae. Bibliografía 1. Akter S, Shamsuzzaman SM, Jahan F. Commnunity acquired bacterial pneumonia: etiology, laboratory detection and antibiotic susceptibility pattern. J Pathol 2014; 36(2):97-103. 2. Nagata K, Mino H, Yoshida S. Usefulness and limit of Gram staining smear examination. Rinsho Byori 2010; 58(5): 490497. 3. Winn WC, Allen SD, Janda WM, Koneman EW, Procop GW, Schreckenberger PC, Woods GI. Koneman diagnóstico microbiológico Texto y atlas en color. 6ª ed. Buenos Aires: Panamericana; 2008.
Dr. Camacho: Platíquenos acerca de la práctica cínica. MLPR: Dra. María Lucía Pérez Ricárdez. Infectóloga Pediatra, Hospital para el Niño Poblano. APLICACIONES EN LA PRÁCTICA CLÍNICA. Para muchos médicos Infectólogos la tinción de Gram es el estudio rápido de mayor valor que nos puede aportar el laboratorio clínico para el diagnóstico y tratamiento de las enfermedades infecciosas en pediatría, incluso para los expertos está por encima de las pruebas de identificación por detección de antígenos. Este estudio tiene 4 funciones importantes que reditúan en el tratamiento adecuado del paciente con infección:
6 1.- Documenta ampliamente la calidad de la muestra tomada por la ausencia o presencia de: micro-organismos, células propias de los tejidos subyacentes y células del sistema inmune. 2.- Alerta al Microbiólogo de la presencia de micro-organismos habituales o de los que requieren cultivos especiales para su crecimiento. 3.- Orienta al Microbiólogo durante el proceso de recuperación por cultivo de los diferentes organismos: bacterias y levaduras. 4.- Orienta al médico sobre el agente etiológico para establecer tratamiento empírico adecuado y oportuno. Basados en la 4ª función, consideramos que la identificación de una bacteria (solo morfología y color) en algún espécimen del paciente, determina el antimicrobiano para el inicio de la terapéutica sin tener que esperar de 48-96 horas para el resultado del cultivo. Aunque la tinción de Gram es un procedimiento rápido y aparentemente sencillo es muy importante que se realice por expertos ya que la interpretación exacta, como ya lo mencionamos, nos dará información no solo de los organismos ahí plasmados sino la celularidad y características de la muestra recolectada. Es factible someter a tinción prácticamente toda muestra de líquidos corporales y tejidos. La técnica de Gram en el laboratorio clínico requiere de 5-10 minutos para la coloración de la muestra y aproximadamente 20-30 minutos para la observación microscópica y emitir un resultado probablemente 1 hora después de haber recuperado el espécimen a estudiar. La rapidez de la respuesta etiológica es la que da el valor médico a esta prueba. Tal vez las muestras más comúnmente estudiadas por esta práctica sean el líquido cefalorraquídeo (LCR) y liquido obtenido de algún absceso, colección o cavidad corporal, sin embargo, es factible realizar esta tinción a muestra de orina y heces
con resultados rápidos e importantes para el tratamiento de los pacientes. La tinción de Gram tiene un gran valor en el estudio cito-químico del LCR ya que nos permite identificar los agentes bacterianos involucrados en meningitis, actualmente: neumococo, entero-bacterias y meningococo y aunque en la actualidad Hemophilus influenzae tipo b prácticamente ha desaparecido como causa de esta infección (por la vacunación), durante décadas esta tinción fue el parteaguas en la identificación de este agente y esto permitía iniciar tratamiento empírico orientado inmediato. En pacientes con meningitis bacteriana que no han sido tratados, la posibilidad de apreciar la bacteria causal en el LCR es de hasta el 80%, y del 4060% de posibilidad cuando ya han recibido tratamiento antimicrobiano. Es importante saber que la sensibilidad depende: del número de organismos presentes y que esta es mayor en infecciones causadas por Gram positivos que en las causadas por Gram negativos. Esta técnica se utiliza aún en la rutina de estudio cito-químico del LCR. La tinción de Gram es de gran utilidad cuando se sospecha de urosepsis, sin embargo es desconocido o subestimado por muchos pediatras, un frotis de orina no centrifugada con identificación de 1 bacteria en un campo a alto poder (100x), es diagnóstico de infección urinaria, una bacteria en la mayoría de los campos representa 100 000 Unidades Formadoras de Colonias (UFC), este concepto aplica para cualquier muestra de líquido corporal. En caso de diarrea, la tinción de Gram aplicada a una muestra de heces nos puede permitir observar formas características de Campylobacter que podrán ser corroboradas por otras tinciones. Igualmente en muestra no diluida de sangre, tomada de catéter venoso, si son positivas para alguna bacteria o levadura a través de la tinción de Gram, son indicadoras de infección asociada al catéter.
7 Las bondades de la tinción de Gram van más allá de identificar morfológicamente alguna bacteria o levadura, también nos permite apreciar si existe células de diferente estirpe y la cantidad, por ejemplo la presencia de células escamosas en una muestra de expectoración nos habla de contaminación con saliva y células de cavidad oral, la muestra de expectoración es muy útil en el diagnóstico etiológico de neumonía adquirida en la comunidad, en caso de que la muestra esté contaminada pierde su utilidad. Otro tipo de células que observamos en la tinción de Gram es la presencia de polimorfonucleares o neutrófilos, monocitos-macrófagos y linfocitos, todos ellos relacionados a la inflamación que genera la infección. Las muestras con gran cantidad de bacterias pero sin células inflamatorias se traducen como contaminación del espécimen. La presencia de bacterias en el citoplasma de macrófagos y neutrófilos confirma la presencia de enfermedad. Bibliografía 1. 2.
3.
Aberg J, Goldman M. Gram stain in Infectious Diseases Handbook, Lexicomp. Hudson Ohio 2012. (Edición electrónica únicamente). Murray PR, Witebsky FG. The Clinician and the Microbiology Laboratory. Clinical Microbiology in Principles and Practice of Infectious Diseases, Mandell GL, Benett JE and Dolin R. Churchill Livingstone Elsevier. 7th Edition. 2010. 244. López-Jácome LE, Hernández-Duran M, Colín-Castro CA, Ortega-Peña S, Cerón-González Guillermo, Franco-Cendejas R. Las tinciones básicas en el laboratorio de microbiología. Investigación en Discapacidad; Vol 3 No 1 Enero-Marzo 2014. 10-18.
COMENTARIO DEL EDITOR:
8
El Dr. Gram escribió: He publicado un método, aunque estoy consciente de que
ESPACIO BIOÉTICO. Por Dra. Cruz Netza. Cardoso
todavía es defectuoso e imperfecto; pero
OBSERVATORIO MEXICANO DE BIOÉTICA (OMEBI)
deseo
que
en
investigadores
manos pueda
de
otros
resultar
de
utilidad. En 1884 publicó en el Journal Fortschritte der Medizin su método de coloración bacteriana. Fue miembro de la Comisión Real de Salud en 1893, miembro honorario del Colegio de Médicos Sueco en 1905, perteneció a la Federación de Médicos Internos de Alemania en 1907 y de la Federación Danesa de Medicina Interna en 1932. Detrás de este método de tinción de Gram
existen
seguramente
días
de
investigación, errores y aciertos para llegar a establecer los pasos a seguir en este procedimiento. No hay duda que la generación de este conocimiento ha beneficiado a nivel mundial a una cantidad inmensa de pacientes. Todas las naciones en las que se invierte en educación e investigación generan finalmente
conocimiento
y
este
conocimiento es vendido a través de sus
Los problemas de enseñar bioética Gracias a la presión que la Comisión Nacional de Bioética, la SEP aceptó que la bioética se implementara como materia obligatoria a nivel de pregrado; actualmente en prácticamente todas las 8 Facultades de Medicina se tiene contemplado un seminario de bioética dentro de los programas académicos. Lo bueno de esta medida es que los futuros médicos ya saben que existe la bioética. Lo malo es que la enseñanza de la bioética está enfrentando varios problemas, el primero es la escasez de especialistas en bioética, lo que conlleva a cubrir dicha enseñanza con profesores que en el mejor de los casos tiene una muy buena voluntad para trasmitir lo mejor posible lo que dicen los libros. El segundo es que algunos de esos improvisados profesores pretenden tener autoridad en la materia con solo haber acumulado ciertas lecturas. Tercero, algunos profesores pretenden imponer su moral a los alumnos ignorantes de que solo están siendo adoctrinados en una visión moral muy particular. Cuarto, no falta el que vea a la bioética solo como un recurso para canalizar inquietudes mesiánicas. Quinto, que la bioética y su mejor virtud acaben siendo banalizados al ser vistos como una materia más que debe aprobarse, con la subsecuente asimilación mecanizada de sus más importantes presupuestos. Al aceptar ser profesor de bioética, en realidad se está aceptando el reto de desarrollar una conciencia, en los futuros médicos, sobre lo que significa ser una persona virtuosa hoy en día; algo que visto en el contexto del deslumbramiento que la ciencia y tecnología ocasionan, puede tornarse en un verdadero cuesta arriba. En esta época de dilución de referentes, ausencia de ídolos y fugacidad en el todo, la virtud puede acabar siendo como algo obsoleto, de utilidad cero que no representa nada a nadie. Y sin embargo, el gigante se niega a morir, la virtud a pesar de todos los pesares sigue siendo un baluarte en la dimensión ética de cualquier persona y de cualquier profesión, podríamos decir que de forma preeminente lo es en la medicina, donde lo humano se manifiesta con la mayor sensibilidad, el nacer, el morir, los dos puntos de mayor impacto en la vida de cualquiera se relacionan con el ámbito médico en una forma por demás simbiótica. Así pues, luchar por el fortalecimiento y desarrollo de médicos virtuosos, aunque parezca una lucha de antemano perdida, una locura de proporciones quijotescas, acaba siendo una batalla que vale la pena pelear, corremos el riego de ganarla.
8
Hasta la próxima. Que la gentileza de su lectura nos distinga.
productos finales y generan riqueza que genera
más
investigación
y
nuevo
conocimiento. ¿Comentarios? sefrac2000@yahoo.com
PEDIATRIKA, Año 5, número 1, enero – marzo 2015, es una publicación trimestral, editada por Sergio Francisco Camacho Gutiérrez. Calle 29 A Sur # 3302, colonia el Vergel, Puebla, Pue., México, C. P. 72400, teléfono (222) 242 28 14, www.pediatrika.com, www.urologo-pediatra.com.mx, www.pediatrika2010.blogspot.com, sefrac2000@yahoo.com. Editor responsable: Sergio Francisco Camacho Gutiérrez. Reserva de Derechos al Uso Exclusivo No. 04-2011-060314325000-106; ISSN: 2007-4247; ambos otorgados por el Instituto Nacional del Derecho de Autor. Responsable de la última actualización de este Número, Dra. María Lucía Pérez Ricárdez, calle 29 A Sur # 3302, colonia el Vergel, Puebla, Pue., México, C.P. 72400, fecha de última modificación 18 de diciembre de 2012. Las opiniones expresadas en esta publicación son responsabilidad de los individuos participantes y pueden no reflejar la opinión general del editor y editores asociados del boletín. El boletín puede ser reproducido total o parcialmente con fines académicos citando la fuente. Todos los derechos reservados. Copyright 2015, Pediatrika.