ANTECEDENTES
Las micotoxinas son metabolitos secundarios producidos por especies fúngicas en alimentos y piensos. La mayoría son producidas por Aspergillus, Fusarium y Penicillium spp.
Comúnmente, se piensa en las seis principales micotoxinas que contaminan los piensos:
Aflatoxinas (AF)
Deoxinivalenol (DON)
Toxina T-2
Fumonisinas (FUM)
Ocratoxina A (OTA)
Zearalenona (ZEN)
Un reciente estudio sobre el maíz realizado por PATENT CO. DOO Mišićevo, Serbia, en 2024 también demostró una mayor presencia de micotoxinas emergentes en el maíz.
Sin embargo, las pruebas y los informes sobre la prevalencia de micotoxinas en los piensos han aumentado la concienciación sobre las micotoxinas emergentes, como el ácido fusárico (AF), las enniatinas (ENNs), la beauvericina (BEA) y la monilformina (MON), que también suelen producir varias especies de Fusarium.
Enniatins (ENNs): Fusaric acid (FA)
Leer el estudio: Mayor prevalencia y coocurrencia de aflatoxinas, fumonisinas y micotoxinas emergentes detectadas en el maíz cosechado en 2024 en 18 países
Las estructuras de las micotoxinas emergentes se muestran en la Figura 1
Figura 1. Estructuras químicas de micotoxinas emergentes producidas por Fusarium spp. Estructuras químicas de micotoxinas emergentes producidas por Fusarium spp.: ácido fusárico (AF), enniatinas (ENNs), beauvericina (BEA) y moniliformina (MON). La tabla muestra las cadenas laterales químicas (R1, R2, R3) de los principales análogos de las enniatinas (A, A1, B, B1).
Beauvericin (BEA) Moniliformin (MON)
ÁCIDO FUSÁRICO (FA)
Enniatins (ENNs): Fusaric acid (FA)
Enniatins (ENNs): Fusaric acid (FA)
ENNIATINAS (ENNS) MONILIFORMINA (MON)
(BEA) Moniliformin (MON)
BEAUVERICINA (BEA)
OBJETIVO
MYCORAID es un producto premium de remediación de micotoxinas desarrollado por PATENT CO. para la biorremediación de micotoxinas polares y menos polares.
En este estudio, MYCORAID se testó a pH 3,0 para la adsorción y a pH 6,5 para la desorción con micotoxinas emergentes.
MATERIALES Y MÉTODOS
Se pesó un total de 100 mg del producto de remediación de micotoxinas en tubos Falcon duplicados de 15 mL.
Se pipetearon en cada tubo 10 mL de tampón citrato 0,1 M (pH 3,0) que contenía 2 ppm de BEA, ENN A, ENN A1, ENN B, ENN B1, FA y MON.
Se preparó una muestra de control para medir la unión no específica y eliminar los picos exógenos.
Los tubos se colocaron en un agitador orbital a 37 °C durante 30 minutos y, tras la incubación, todas las muestras (de ensayo y de control) se centrifugaron a 4.200 rpm durante 5 minutos.
Se transfirieron 100 μL de sobrenadante a un vial de vidrio y se mezclaron con 900 μL de disolvente de dilución (50 % de acetonitrilo:50 % de agua con 0,1 % de ácido fórmico).
Se utilizó una alícuota de la solución de micotoxinas tamponada con pH 3,0 como patrón para cada micotoxina.
Todas las muestras y controles se analizaron por LC-MS/MS.
Se eliminó el sobrenadante de los tubos Falcon de prueba y control restantes, y el sedimento del producto de remediación de micotoxinas se resuspendió en 4 mL de tampón fosfato 0,1 M (pH 6,5).
Los tubos se agitaron de nuevo y las muestras se prepararon siguiendo el mismo procedimiento descrito anteriormente.
Estas muestras y los controles también se analizaron por LC-MS/MS.
La eficacia global del producto de remediación se calculó a partir de los datos de adsorción y desorción.
RESULTADOS
La eficacia global contra las micotoxinas emergentes se muestra en la Figura 2.
Los resultados muestran que MYCORAID eliminó eficazmente el 56 % de MON, el 89 % de BEA y más del 95 % de ácido fusárico y enniatinas.
