MIP para el incremento de la productividad_Juan Salazar_TabSac (2)

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PRODUCTOS DE TECNOLOGÍAS AGROBIOLÓGICAS TABSAC

Beauveria bassiana

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Pochonia chlamydosporia


Hirsutella thompsonii Km. 7.5 Carretera a Lunahúana, Cañete, Perú. Cel. : 959 500 646 – 992 989 505 E-mail: tabsac@outlook.com

Lecanicillium lecanii


TRICHODERMA SPP. Km. 7.5 Carretera a Lunahúana, Cañete, Perú. Cel. : 959 500 646 – 992 989 505 E-mail: tabsac@outlook.com


TRICHODERMA SPP. División: Eumycota Subdivisión: Dicaryomycotina Clase: Ascomycetes Orden: Hypocreales Familia: Hypocreacea Género: Trichoderma Sección: Pachybasium Especie: Trichoderma spp Las colonias desarrollan muy rápido, el micelio es mayormente sumergido, algunas especies presentan micelio aéreo, floculento o algodonoso, el reverso puede ser incoloro, crema, amarillo claro a amarillo oscuro.

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Presentan fialides verticiladas, algunas especies con apéndices terminales en el extremo del conidióforo. Clamidósporas hialinas verdosas. Conidióforo con un eje principal ramificados en forma piramidal. Conidias.- Unicelulares, hialinos a verdes, lisos u ornamentados, subglobosos, ovoides o elipsoidales, acumulados en cabezuelas aparentemente húmedas, frescas y pulverulentas después.

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Las especies del género Trichoderma son los antagonistas más utilizados para el control de enfermedades de plantas producidos por hongos, debido a su ubicuidad, a su facilidad para ser aisladas y cultivadas, a su crecimiento rápido en un gran número de sustratos y a que no atacan a plantas superiores (Papavizas et al. 1982).

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Los mecanismos por los que las cepas del género Trichoderma desplazan al fitopatógeno son fundamentalmente de tres tipos. Competición directa por el espacio o por los nutrientes (Elad & Baker 1985, Elad & Chet 1987, Chet & Ibar 1994, Belanger et al. 1995), producción de metabolitos antibióticos, ya sean de naturaleza volátil o no volátil (Chet et al. 1997, Sid Ahmed et al. 2000, Sid Ahmed et al. 2003) y parasitismo directo de determinadas especies de Trichoderma sobre los hongos fitopatógenos (Yedidia et al. 1999, Ezziyyani et al. 2003).

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Se reporta que Trichoderma es eficaz en la solubilización del fosfato a través de la producción de ácidos orgánicos que reducen el pH del suelo haciéndolo más biodisponible, la liberación de metabolitos quelantes y enzimas especializadas en la degradación de compuestos orgánicos de fósforo como las fosfatasas ácidas y alcalinas.

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Mecanismos de acción MICOPARASITISMO CRECIMIENTO QUIMIOTRÓFICO: Los exudados del patógeno atraen a Trichoderma sp. RECONOCIMIENTO: Algunos aislamientos de Trichoderma son específicos a algunos fitopatógenos, y es en esta etapa donde el fenómeno de especificidad de ataque se define. PENETRACIÓN: Una vez que Trichoderma ha reconocido al patógeno lo envuelve y se adhiere a las hifas cubriéndolo totalmente. Las hifas de Trichoderma penetran en las del patógeno engrosándolas y produciendo austorios, a la vez que provoca la desorganización del contenido celular. SECRECIÓN: El paso final es la degradación de la pared celular del hongo fitopatógeno por medio de la producción y secreción de enzimas micolíticas. LISIS: Extracelularmente produce una serie de sustancias que dan lugar a la lisis de la pared celular del huésped en los puntos de interacción con el antagonista, a la vez, provocando su rápida desintegración.

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Antibiosis Ocurre cuando hay producción de metabolitos tóxicos o antibióticos, de naturaleza volátil o no volátil, de un organismo con acción directa sobre otro. En Trichoderma, la producción de metabolitos está fuertemente ligada a la producción de enzimas propias del proceso de micoparasitismo. Por otra parte, está establecido que las enzimas hidrolíticas de la pared celular tiene un efecto sinérgico con los antibióticos, siendo la acción anti fúngica de ambos compuestos muy superior a la de cualquiera de ellos por separado. Algunas de las especies de Trichoderma se caracterizan por presentar una alta producción de sustancias gaseosas de origen antibiostatico con un pronunciado aroma a coco.

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Competencia Un factor esencial para que exista competencia es la escasez o limitación de algún elemento esencial. Hay una competencia directa por espacio y nutrientes entre el microorganismo antagonista y el patógeno. En algunos casos Trichoderma actúa sobre algunos patógenos debido a su capacidad de colonizar rápidamente el sustrato. La zona colonizada por Trichoderma no podrá ser ocupada por ningún patógeno. Trichoderma al entrar en contacto con la planta, activa su sistema de defensa, fundamentalmente por inducción de su sistema enzimático oxidativo, preparando a la planta frente a los posibles ataque de patógenos.

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Otras propiedades PROMOCIÓN DEL DESARROLLO VEGETATIVO: Incrementan la tasa de crecimiento y desarrollo vegetal, actúa como bioestimulante del crecimiento radicular, promueve el desarrollo de raíces debido a la secreción de fitohormonas, lo que permite, por el incremento de masa radicular, una mejor asimilación de nutrientes y de humedad, aumentando la resistencia frente a situaciones de estrés biótico. Trichoderma produce sustancias estimuladoras del crecimiento y desarrollo de las plantas. FACILITA LA SOLUBILIZACIÓN Y ABSORCIÓN DE NUTRIENTES: Trichoderma necesita para desarrollar su metabolismo fuentes de carbono difícilmente biodegradables como ligninas y celulosas. siendo capaz de movilizar nutrientes del suelo mediante excreción de enzimas extracelulares que transforman compuestos nitrogenados orgánicos en inorgánicos, fundamentalmente amonio, compuestos fosforados orgánicos en fósforo inorgánico, etc. Esta solubilización de nutrientes, permite a la planta utilizar parte de estos, aumentando su sanidad y resistencia al ataque de microorganismos patógenos. BIORREMEDIACIÓN DE SUELOS: Degrada compuestos órgano clorados, cloro fenoles, y otros insecticidas como el DDT, endosulfán, pentacloronitrobenceno, aldrin y dieldrin, además de herbicidas como trifluralin y glifosato. Posee enzimas que ayudan a la degradación inicial del material vegetal y por último enzimas de mayor especialización que contribuyen a la simplificación de moléculas complejas como los pesticidas.

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Compost – abono orgánico Trichoderma contribuye a mejorar la calidad del compost Disminuye el nivel de organismos patógenos a niveles permisibles Incrementa la presencia de microorganismos benéficos como las bacterias fijadoras de nitrógenos y las bacterias solubilizadoras de fosfatos Mejora la fertilidad del suelo Eleva a niveles adecuados algunos elementos nutritivos como P y Zn Mejora las concentraciones de Ca, Mg, Fe, Cu y M.O Aumenta la calidad y productividad de los cultivos al inducir mayor producción de raíces y hojas sanas

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Control de Botrytis cinerea en cultivo de cítricos con Trichoderma harzianum y Testigo (químico), en Huaral.

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Pochonia chlamydosporia Reino: Fungi. División: Ascomycota Subdivisión: Pezizomycotina Clase: Sordariomycetes Orden: Hypocreales Familia: Clavicipitaceae Género: Pochonia Especie: chlamydosporia Las colonias son de color blanco, con micelio sumergido. El micelio maduro completamente cubiertos de aleuriosporas, llegando a presentarse polvoso de color crema u ocre

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Presenta conidióforos erectos, con ramificación verticilada, presentando una protuberancia en forma de mazo en la punta del conidióforo que sostiene una sola espora; fialides cilíndricas en forma de espiral de 3 a 5. Fialosporas hialinas, ovoides ligeramente cilíndricas, de paredes lisas. Aleuriosporas muy comunes, que presentan de 4 a 9 celdas globulares de paredes gruesas, muriformes, ligeramente lobulados, con contenido granular, que nacen sobre ramificaciones laterales cortas, son muy persistentes. (Cook, R. J.; K. Bakes. 1989)

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El hongo nematófago Pochonia chlamydosporia, se ha utilizado como agente de control de poblaciones de nematodos formadores de quistes y agalladores. Alternativamente, P. chlamydosporia es capaz colonizar de forma endofítica las raíces de plantas monocotiledóneas y dicotiledóneas

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P. Chlamydosporia parasita huevos de nematodos formadores de agallas formando apresorios, desarrollados a partir de la hifa indiferenciada que permite la colonización de la superficie de los huevos de los nematodos (Morgan-Jones y col., 1983). Sin embargo, la penetración, es el resultado de una presión física y una actividad enzimática.

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Una enzima proteasa serina alcalina (subtilasa) designada como VCP1 ha sido parcialmente caracterizada y en pruebas in vitro demostró remover la membrana vitelina más externa de la cáscara del huevo y expuso la capa de quitina de nematodos formadores de agallas de raíces (López y Robertson, 1992; Segers y col., 1996).

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Mecanismos de acción de los entomopatógenos Germinación de la espora sobre el integumento del insecto hasta su muerte. Adhesión al tegumento Germinación del conidio Penetración por la cutícula Multiplicación en el hemocele Producción de toxinas Muerte del hospedero Colonización Reproducción Esporulación Diseminación

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Metarhizium anisopliae Ubicación taxonómica División: Eumycota Subdivisión: Deuteromycotina Clase: Hyphomycetes Orden: Moniliales Familia: Moniliaceae Género: Metarhizium Especie: M. anisopliae (Metch.) Sorokin Colonias de color verde que varían desde el oliváceo hasta amarillo-verde o verde oscuro. Desarrollan bien a 26 C en Papa –Dextrosa- Agar (PDA) a Sabouraud Dextrose Agar (SDA).

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Presentan conidioforo ramificado, conidias cilíndricas a ovales que se forman en cadenas originadas en fialides. Las conidias son producidos en sucesión basipétala, estando la conidio más joven en la base de la cadena. Las conidias son blancos cuando son jóvenes, pero conforme maduran toman el color verde oscuro característico de esta especie. Este hongo se utiliza para el control de algunos insectos plaga como “gusanos blancos o “chacareros, “palomillas de la col (Plutella xylostella, Hellula undella) Los insectos infectados por este hongo son de color verde. Se encuentran mayormente en climas cálidos, con T° de 26 a 32 °C

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La evidencia del ataque de M. anisopliae sobre insectos, en condiciones naturales, ha sido descrita como "muscardina verde" en más de 200 especies de insectos (25), exhibiendo diferentes grados de especificidad, la cual está influenciada por las características del patógeno y de la cutícula del hospedante. M. anisopliae asimila muy bien las fuentes de carbono orgánico e inorgánico y no exige requerimientos especiales de carbohidratos

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M. anisopliae se caracteriza por ser mesófilo, con una temperatura óptima para germinación y crecimiento de 25 a 30°C, una máxima de 32 a 35°C y una mínima de 10 a 12°C

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Lecanicillium lecanii División: Eumycota Subdivisión: Deuteromycotina Clase: Hyphomycetes Orden: Moniliales Familia: Moniliaceae Género: Lecanicillium Especie: l. lecanii (Zimmermann) Viegas.

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Presenta micelio tabicado, conidióforos simples o verticilados, más anchos en la base y adelgazándose hacia los extremos, en donde se encuentran las conidias agrupadas en cabezuelas, rodeados de una sustancia mucilaginosa, unicelulares, hialinos, forma cilíndricos a ovoides. Se utiliza para controlar “moscas blancas,” Bemisia tabaci, Paraleyrodes citri, Trialeurodes vaporariorum, Aleurodicus cocois, pulgones, Trips y arañitas rojas. T° óptima de desarrollo entre 20-25ºC, HR de 85 a 90% Este hongo cubre con un micelio de color blanco a sus hospederos, rodeándolo como con un halo, de allí que se le conoce con el nombre de “hongo blanco de la corona”.

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Lecanicillium lecanii es un hongo utilizado como control biológico. Se usa para el control de insectos dañinos a las plantas. Es muy efectivo provocando en el insecto la pérdida de sensibilidad, incoordinación de movimientos, obstrucción mecánica de los conductos respiratorios, agotamiento de las reservas, interrupción de los órganos y muerte.

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Las Esporas Lecanicillium lecanii se adhieren firmemente a la cutícula de los Insectos, penetran la cutícula con ayuda de enzimas que produce el hongo (lipasas, quitinasas y proteasas) que descomponen el tejido y facilitan la penetración de la espora, provocando la infección y muerte del insecto plaga.

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Se evaluó el efecto de Lecanicillium lecanii (Zimm) sobre Panonychus citri, en condiciones de laboratorio, con L. lecanii el porcentaje de supervivencia fue de 29% y 20%

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Hirsutella thompsonii Reino: Fungi. División: Ascomycota Clase: Sordariomycetes Orden: Hypocreales Familia: Ophiocordycipitaceae Género: Hirsutella Especie: thompsonii

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Hirsutella thompsonii causa epizootia sobre P.oleivora, la cual provocaba que los eriófidos se tornaran lentos en sus movimientos y cambiaran de coloración (Muma, 1958).

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Beauveria bassiana Ubicación taxonómica División: Eumycota Sub división: Deuteromycotina Clase: Hyphomycetidae Orden: Moniliales Familia: Moniliaceae Género: Beauveria Especie: B. bassiana

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Colonias blancas que se vuelven crema, amarillo pálidas, incoloras al reverso, amarillas o rojizas, en medio Papa –Dextrosa – Agar (PDA) o Agar Extracto de Malta (MEA) presentan aspecto aterciopelado a polvoriento. La fructificación está constituida por células conidiógenas que forman conidias sucesivas en un raquis que se desarrolla en forma de zig zag. Esta fructificación ocurre como synmema o conjunto de células conidiógenas unidas. Los insectos muertos por este hongo presentan una cubierta blanca algodonosa sobre el cuerpo, la cual está formada por el micelio y esporas del hongo. Actúan a T° de 20°C y HR mayor del 92%.

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El hongo B. bassiana es conocido como entomopatógeno desde 1835 año en que se descubrió causando la muerte de gusanos de seda (Commonwealth Mycological Institute, 1979).

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Se encuentra de forma natural en suelos y sobre diversos órdenes de insectos (coleópteros, dípteros, heterópteros, homópteros, lepidópteros, tisanópteros) así como sobre ácaros tetraníquidos

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Los insectos muertos infectados por especies de Beauveria, presentan una cubierta blanca muy densa formada por el micelio y esporulación del hongo. Es por ello que el objetivo de este trabajo fue la caracterización morfológica de diez aislados de Beauveria spp.

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