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PU BL I CACI ÓN TRIMESTRAL No. 23

PORCINOS

Complejo Respiratorio Porcino (Crp)

INTRODUCCIÓN El Complejo Respiratorio Porcino (CRP) es una entidad patológica muy frecuente en las empresas porcinas industrializadas y no industrializadas, causa grandes pérdidas económicas a los productores por los daños que produce en tejidos y funcionamiento del sistema respiratorio del cerdo, generando alta morbilidad y mortalidad en varias etapas de la vida del cerdo, sobre todo en animales en desarrollo y engorda con mayor incidencia entre las 12 a 20 semanas de edad (Espinoza I y cols. 2008, I Bochev 2007), y con todo ello ineficiencia en la conversión alimenticia y mayor tiempo al mercado, afectando la rentabilidad de la empresa.

MVZ MC José Luis Velasco Villalvazo Asesor técnico en cerdos Laboratorios Virbac México S. A. de C. V.

jose-luis.velasco@virbac.com.mx


PORCINOS

Complejo Respiratorio Porcino (CRP) Es un problema multifactorial en donde participan: Medio ambiente, Instalaciones, Inmunidad, Alimentación y los patógenos que pueden ser bacterias y virus principalmente, y en ocasiones están presentes los parásitos. Los cambios bruscos de temperatura con rangos muy amplios durante el día, humedad relativa alta, sobrepoblación, diferencias mayores a 2 semanas de edad en cerdos de la misma nave son asociados frecuentemente con altos porcentajes de cerdos portadores de Streptococcus suis

Los agentes patógenos participantes se dividen en Primarios y Secundarios; Primarios son aquellos que inicialmente se instalan en el sistema respiratorio del cerdo provocando las primeras lesiones y generando infección como: Mycoplasma hyopneumoniae, Virus del Síndrome Respiratorio y Reproductivo Porcino (vPRRS), Circovirus Porcino (PCV2) o Virus de la Influenza Porcina (IP), quienes predisponen a una co-infección con patógenos secundarios que se encuentran en la flora bacteriana del epitelio respiratorio como saprofitos y que aprovechan el desequilibrio para generar mayor daño y complicar los signos de la enfermedad.

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PORCINOS


PORCINOS VIRUS Y BACTERIAS PRIMARIOS Y SECUNDARIOS FRECUENTES EN EL COMPLEJO RESPIRATORIO PORCINO Virus vPRRS Circovirus (PCV2) Virus de Aujezky Virus de la influenza porcina Virus de la fiebre porcina clásica Coronavirus respiratorio porcino

Bacterias 1° 1° 2° 1° 2° 2°

1° 2° 2° 2° 2° 2° 2°

Mycoplasma hyopneumoniae Actinobacillus pleuropneumoniae Bordetella bronchiseptica Streptococcus suis Pasteurella multocida Haemophilus parasuis Salmonella choleraesuis

Eileen L Thacker (2008) Proceedings, The 15th congress of FAVA, I. Bochev (2007).

Sin embargo existe otra clasificación en la que se considera en el primer modelo como agente inicial a mycoplasma o un virus que afectan las defensas del tracto respiratorio facilitando la agresión de las bacterias al epitelio respiratorio, un segundo modelo consiste en que la bacteria que produce daño no es un habitante del epitelio respiratorio y el modelo 3 es que el patógeno que causa daño no es una bacteria, Iglesias y Trujano, 2000. RELACIÓN DE INTERACCIONES ENTRE AGENTES INFECCIOSOS DEL COMPLEJO RESPIRATORIO PORCINO Patógeno que destruye defensas

Patógeno que causa daño evidente

Replicación Experimental

1

Mycoplasma hyopneumoniae

Pasteurella multocida

SI

1

Virus de Enf. de Aujeszky

Pasteurella multocida

SI

2

Virus del PRRS

Haemophilus parasuis

SI

2

Virus del PRRS

Salmonella choleraesuis

SI

3

Mycoplasma hyopneumoniae

Virus del PRRS

SI

3

Virus del PRRS

Virus de la Influenza porcina

NO

Modificado de Iglesias y Trujano 2000.

Streptococcus suis

y Pasteurella pasa desapercibida generalmente ya que los portadores se encuentran asintomáticos del tracto respiratorio superior, I Brochev ,2007. Aunque los lechones son colonizados inmediatamente al nacimiento, sus primeras manifestaciones ocurren de 2 a 3 semanas posteriores al destete, Lisebrois y Col. 1990, ya que inicialmente la madre les protege por medio de inmunoglobulinas contenidas en el calostro que consumen en las primeras horas del nacimiento La neumonía puede ser resultado de la inhalación y va disminuyendo dicha protección cuando la o de la bacteremia, bien sea por infección inmunidad materna baja y aún es inmadura la directa de los alvéolos pulmonares al inhalar aire inmunidad propia del lechón, adicionalmente a contaminado o por el transporte de la bacteria esto, el lechón se encuentra sometido a un proceso de estrés por el destete y el cambio de alimentación por monocitos a los alvéolos. así como por la competencia jerárquica que se da La trasmisión de la infección por Estreptococos al llegar al destete. Streptococcus suis es una bacteria común en las granjas de cerdos de todo el mundo y se asocia a problemas respiratorios frecuentemente y a otras enfermedades como meningitis y artritis en cerdos jóvenes. Es adquirido por el lechón al nacimiento de las secreciones vaginales de la madre infectada a la boca del lechón, colonizando las tonsilas poco después del nacimiento, Pallarés y col., 2003.

Apasionados por la salud animal

Modelo de Interacción

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PORCINOS

Es frecuente que existan cepas de baja patogenicidad que pueden ser activadas por la presencia del virus del PRRS, produciendo cuadros de meningitis, estas mismas cepas de baja patogenicidad generalmente no producen meningitis cuando se encuentra solo el Streptococcus suis y sí cuando se encuentra asociado al virus de PRRS. El virus de PRRS incrementa el impacto patogénico de S. suis, Halbur y col., 2000.

casos agudos hay zonas necróticas circunscritas oscuras y consolidadas, lesiones fibrinosas en los lóbulos apicales, cardíacos y diafragmáticos. Puede existir pleuritis fibrinosa en las mismas zonas afectadas.

Haemophilus parasuis

Es el microorganismo causante de la enfermedad de Glässer que está presente y ha sido diagnosticada en todo el mundo, Actinobacillus pleuropneumoniae Haemophilus parasuis es un habitante común de la La pleuroneumonía porcina es uno de los flora normal de las vías respiratorias del cerdo. problemas de salud más importantes en las Los lechones son colonizados inmediatamente grandes empresas productoras de cerdos. al nacimiento, sin embargo no se desarrolla la Al igual que los estreptococos, Actinobacillus enfermedad por la protección de los anticuerpos pleuropneumoniae se encuentra colonizando maternos recibidos en el calostro, Smart y col. las tonsilas y tracto respiratorio superior de 1989. los cerdos, existen muchos serotipos pero los más importantes por su patogenicidad son Haemophilus parasuis (Hps) se encuentra asociado los números; 1, 5, 7, 9, 11, y 12 además de los a una alta mortalidad con mucha frecuencia y con problemas de control en explotaciones de serotipos 3 y 6 de virulencia intermedia. alta sanidad, es una de las principales bacterias Los serotipos más frecuentemente aislados en involucradas en infecciones en explotaciones en Norteamérica son 1 y 5, en los últimos años EUA, pero también como la segunda respiratoria se han ido incrementando los aislamientos más importante en las salas de lactancia y se del serotipo 7, Gottschalck y col., 1997. En mantiene con elevada presencia en las áreas de México los serotipos más frecuentes son; 1, transición y engorda, Enric Marco, 2008. 5 y 7. Actinobacillus pleuropneumoniae produce 4 diferentes exotoxinas que pueden ser Al igual que otras bacterias respiratorias se hemolíticas o citotóxicas conocidas como ApxI, encuentra asociado en co-infecciones con virus II, III y IV, en México se han encontrado Apx I como los del PRRS, Influenza, Aujeszky, Fiebre y Apx II, Williams y col., 2000, Enríquez y col., Porcina Clásica, Circovirus (PCV2), y algunas bacterias, siendo una muy frecuente y mortal la 2003. asociación con el virus del PRRS, Enric Marco La trasmisión de la enfermedad ocurre por 2008. la diseminación de la bacteria por animales infectados asintomáticos o por la introducción Haemophilus parasuis es causa común de de animales portadores que diseminan el poliserositis y artritis en cerdos jóvenes, Actinobacillus pleuropneumoniae a través del aire, adicionalmente puede ser aislado de secreciones ya sea por aerosoles o por el contacto directo de mucosas nasales de cerdos aparentemente entre los mismos animales, Muñoz y col., 2010. sanos, cerdos con rinitis y en descargas de moco nasal, así como de pulmones con neumonía Las lesiones típicas de pleuroneumonía se y con mucha frecuencia asociado con virus o presentan en pulmones y capas serosas. En bacterias respiratorios, Vahle J. L. y Col., 1995.

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PORCINOS

Es un microorganismo muy importante en el CRP, Pasteurella multocida es el agente que con mayor frecuencia es aislado e identificado en pulmones de cerdos neumónicos en los últimos 100 años y frecuentemente combinado con agentes virales y continúa actualmente sin evidencias de disminución, Richard F Ross, 2007. Pasteurella multocida desarrolla cepas toxigénicas como la A y la D, es un patógeno que normalmente no causa lesiones importantes de forma individual, sin embargo asociado a otros patógenos como Bordetella bronchiseptica es el organismo más importante en la rinitis atrófica. También se ha comprobado por muchos autores que la cepa toxigénica A causa lesiones importantes asociada a otros patógenos como Virus de la Influenza Porcina, Virus de la Enfermedad de Aujeszky, Virus del cólera porcino, generando pleuritis y abscesos pulmonares, Richard F Ross, 2007.

patógeno sólo produce rinitis no progresiva que generalmente no produce afectaciones severas, sin embargo cuando genera grandes estragos en los cornetes nasales del cerdo es cuando se encuentra asociada a Pasteurella multocida produciendo la Rinitis Atrófica Progresiva, y aún más cuando se encuentran asociados a otros virus o bacterias, sin embargo esta sola asociación entre Bordetella bronchiseptica y Pasteurella multocida pueden generar grandes pérdidas económicas por la mortalidad y bajo rendimiento en los cerdos afectados, Espinoza I. y col.,2008, De Jong M.F. 2006

Mycoplasma hyopneumoniae

Se une a los cilios y a la superficie epitelial por adhesión a las proteínas, resultando en aglutinación, daño y pérdida de los cilios que permite la co-infección con bacterias secundarias, muerte de células epiteliales y reducción de la función del aparato mucociliar. Entre las bacterias que producen infecciones respiratorias en EUA, Mycoplasma hyopneumoniae Bordetella bronchiseptica es el segundo más importante después de Es otra bacteria involucrada con frecuencia en Pasteurella multocida, Opriessnig et al., 2011. el CRP, sin embargo su presencia como único

Apasionados por la salud animal

Pasteurella multocida:

Zonas de Afectación pulmonar en el Complejo Respiratorio Porcino

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PORCINOS

TRANSMISIÓN DEL COMPLEJO RESPIRATORIO PORCINO En las enfermedades respiratorias la transmisión vía aerosoles es muy frecuente, el contacto directo entre animales por medio de gotas de saliva o secreciones nasales que suelen ser muy efectivas sobre todo, por las costumbres de investigación que tienen los cerdos y que todo lo tocan con sus trompas y la alta densidad de población que con frecuencia se tiene en las granjas.

La sobrepoblación es un factor predisponente muy importante, los factores medioambientales como; los cambios en el rango de temperatura, el polvo, la contaminación del aire, acumulación de amoniaco, y algunos otros factores como la insuficiencia de agua o alimento contribuyen a que se desencadenen problemas respiratorios.

FACTORES PREDISPONENTES A INFECCIONES RESPIRATORIAS Hatos muy grandes con variaciones importantes de edad en los mismos corrales o jaulas Frecuente movimiento y ajuste de cerdos entre corrales Introducción de animales de reemplazo infectados Cambios climáticos bruscos con mal manejo de la ventilación Fases de alimentación inadecuadas para cada etapa de desarrollo o producción Falta de agua o flujos inadecuados de la misma Modificado de I Bochev, 2007

PATOGENIA DEL CRP Afectación del aparato muco-ciliar IP, PCV2, PRCV, PRV, M hyop, B.b

Inducen Supresión inmunitaria PCV2, PRRS, PRV

Incremento de la replicación viral o crecimiento bacteriano

Infección inicial por virus o bacterias del TR

Alteran la respuesta de Citocinas IP, PCV2, PRCV, PRRS Mhyop

Co-infección

Alteran la función de los macrófagos PCV2, PRRS Mhyop

Enfermedad Respiratoria Severa TOS, FIEBRE, LETARGIA, ANOREXIA

Enfermedad Respiratoria Transitoria Eliminación de la infección

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Subclínica

Morbilidad 30-70% Mortalidad 4-6%

CRP Clínico


PORCINOS

FISIOPATOLOGÍA DEL SISTEMA RESPIRATORIO El efecto potenciador de Mycoplasma para otras bacterias había sido establecido primeramente para Pasteurella multocida (Ciprián y cols., 1988), sin embargo el sinergismo entre Mycoplasma y vPRRS ahora es más importante.

Cambios anatómicos

La forma más común del Circovirus (PCV2) es el síndrome de desmedro (emaciación) multi-sistémico porcino y se asocia con frecuencia con el virus del PRRS replicándose principalmente en los histiocitos y en los macrófagos generado inmunosupresión, la sintomatología que genera el Circovirus es parecida a la que se presenta en el CRP, sin embargo la diferencia es que se presenta en animales jóvenes (8-16 semanas de edad), y no se acompaña de tos ni de fiebre.

Cerdo afectado por Complejo Respiratorio Porcino

Apasionados por la salud animal

Destrucción del epitelio respiratorio por Mycoplasma produciendo ciliostasis, El virus del PRRS destruye a los macrófagos alveolares y genera neumonía intersticial aguda, inicialmente muchos de los daños suceden a nivel microscópico como infiltrados peribronquiales y perivasculares de monocitos. La interacción entre Mycoplasma y el virus de la Influenza Porcina dañan el epitelio ciliar y abren la puerta para la afectación por otras bacterias, Thacker , 2001.

Las alteraciones encontradas en pulmones a la necropsia son: Cuando está presente mycoplasma existe; engrosamiento cráneo- ventral de los lóbulos pulmonares principalmente en lóbulo cardiaco y apical que adquieren una estructura densa de rojo purpura a rojo marrón o grisáceo de consistencia metálica, áreas con atelectasias parecidos a los presentados cuando está presente el virus de la influenza porcina sólo. Cuando está presente el virus de PRRS se puede ver moteado el tejido pulmonar con áreas café claro a obscuro, los nódulos linfáticos están agrandados especialmente los cervicales, mediastínicos e inguinales, acumulación de exudado necrótico en los alvéolos. Cuando Pasteurella multocida está presente se pueden observar el lóbulo apical y las áreas anteriores diafragmáticas de rojo oscuro a gris y en otras partes rojo rosado con coloración casi normal de los pulmones y puede existir pleuritis en ocasiones. Sí está involucrado S. suis puede haber presencia de abscesos. App causa

Pulmones afectados de cerdos muertos por Complejo Respiratorio Porcino

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PORCINOS

neumonía fibrinosa hemorrágica necrotizante con áreas de afectación más extensas y severas con importante deposición de fibrina en la pleura visceral resultando en su adhesión con la parietal, Schwartz ,2002; Taylor, 2006.

SIGNOS CLÍNICOS Debido al origen múltiple etiológico del Complejo Respiratorio Porcino, se presentan diversas manifestaciones clínicas y no existe un periodo específico de incubación, el signo más notable es la tos y su intensidad es muy importante para el diagnóstico que es como se describe a continuación: 0 Cerdos en movimiento sin presencia de tos 1 Menos del 10% de cerdos exhibe tos esporádica 2 Del 10 al 15% de cerdos presentan tos y se mantiene durante el movimiento 3 Más del 50% de cerdos presentan tos Modificado de I Bochev, 2007

El grado de inmunidad de las hembras es muy importante para el desarrollo de la enfermedad sobre todo el de las primíparas, generalmente la enfermedad inicia repentinamente en forma aguda entre las semanas 16-20 de edad y los signos clínicos son: Fuerte depresión, fiebre, falta de apetito, tasa respiratoria acelerada, esfuerzos espiratorios, emaciación rápida, la tos seca esporádica es signo de que está presente mycoplasma, la tos húmeda y productiva paroxística “de perro” es más frecuente cuando está presente el virus de la influenza porcina, y aún es peor el panorama cuando se encuentra presente Actinobacillus pleuropneumoniae.

SINTOMAS DEL CRP Anorexia

Disminución en el consumo de alimento

Fiebre

Disminución en la ganancia de peso

Tos

Disminución en la tasa de crecimiento

Disnea

Morbilidad del 30 al 70%

Letargia

Mortalidad > 6% Modificado de I Bochev, 2007

Control y Tratamiento

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El control se conforma por medidas higiénicas extremas como la desinfección y limpieza a profundidad de todas las áreas de la granja, utilización del sistema Todo dentro/Todo fuera, alojamiento de animales de edades similares, disminución en el movimiento de cerdos de un corral a otro (ajustes), Poblaciones de cerdos de acuerdo a la capacidad


de las instalaciones respetando los espacios por animal, manejo de temperatura adecuada a cada etapa de producción, alimentación de acuerdo a cada etapa y flujo constante de agua limpia. Vacunación contra las enfermedades prevalentes involucradas en el CRP, como son; Mycoplasma, PRRS con un programa adecuado a cada granja, PCV2, Influenza Porcina, Aujeszky en la zonas donde se aplique aún, Actinobacillus pleuropneumoniae, etc.

bebida principalmente, o en casos agudos vía inyectable, con resultados favorables. Por su fragilidad e inestabilidad a la humedad, cambios de temperatura la Amoxicilina necesita de ser protegida para su administración en el alimento o en el agua de bebida, y para ello se conocen procesos hidrofóbicos e hidrofílicos siendo estos últimos los más efectivos para conservar la integridad y efectividad del antibiótico

SOLUCIONES ANTIMICROBIANAS PARA LAS NEUMONÍAS PORCINAS

PROCESO STAVIBAC®

Se pueden implementar programas preventivos de medicación en el alimento con antibióticos que ayuden a disminuir la manifestación de bacterias oportunistas que complican el curso de la enfermedad entre los que podemos incluir Amoxicilinas (no en el caso de Mycoplasma), Florfenicol, Enrofloxacina, Doxiciclina o algunas otras tetraciclinas o antibióticos que tienen una cobertura amplia y que ayudan a disminuir el impacto de bacterias como Pasteurella multocida, Actinobacillus pleuroneumoniae, Bordetella bronchiseptica, Mycoplasma hyopneumoniae, Streptococcus suis, Salmonella choleraesuis, Haemophilus parasuis principalmente.

Es un proceso exclusivo de Laboratorios Virbac con patente mundial en el que se produce una amoxicilina de granulometría especial y estabilizada que ha sido tratada para eliminar la posible humedad, cada gránulo con el proceso Stavibac® tiene una matriz polimérica cubierta con una capa protectora, estos gránulos son hidrofílicos y no se altera la liberación de la amoxicilina ni su biodisponibilidad, poseen un diámetros de 380 µm, todo ello permite conservar las características de la Amoxicilina durante la fabricación de alimento en harina o en pellets, durante el transporte, así como durante el almacenamiento.

Ante un brote y manifestaciones del Complejo Respiratorio Porcino se debe poner especial atención en la sintomatología y en su caso utilizar antibióticos inyectables de manera táctica como pueden ser; Florfenicol, Enrofloxacina, Amoxicilina u otros que nos pueden ayudar a disminuir las pérdidas por mortalidad, es también muy recomendable la aplicación de Antiinflamatorios no esteroideos para disminuir las molestias de dolor y fiebre e incrementar el consumo de alimento y agua en casos graves.

AMOXICILINA Es un antibiótico ß-lactámico de amplio espectro que por su alta eficacia contra los principales patógenos que afectan al cerdo, es ampliamente utilizada en la producción porcina a través del alimento o en el agua de

Tamaño similar

Amoxicilina con proceso STAVIBAC® Medida: 300 a 500 µm

Apasionados por la salud animal

PORCINOS

Partícula de harina Medida: 200 a 800 µm Amoxicilina estandar Medida: menor a 50 µm

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PORCINOS

FLORFENICOL

le permite penetrar en altas concentraciones Es un antibiótico de la familia de los fenicoles a las células del tejido infectado y eliminar exclusivamente de uso veterinario, con una eficazmente las bacterias Gram + o Gram -, estructura similar al tianfenicol, pero con así como rickettsias, espiroquetas, clamidias y un espectro antimicrobiano más amplio, Mycoplasmas, entre otros. mayor actividad y potencia, que no produce anemia aplásica en humanos. Su inclusión en NAC (N-Acetil-Cisteína) el alimento tiene una acción muy rápida, se La N- Acetilcisteína es un mucolítico potente distribuye ampliamente en suero, pulmones y que actúa rompiendo los puentes disulfuro tracto gastrointestinal de los cerdos. del moco, disminuyendo la viscosidad, haciéndolo más fluido y fácil de expulsar por DOXICICLINA los cilios respiratorios, es efectivo aun en Es un antimicrobiano semisintético de muy presencia de pus, además de que reduce la amplio espectro, bacteriostático, del grupo adhesividad bacteriana al epitelio respiratorio de las tetraciclinas de segunda generación con y la colonización, disminuye la lesión hepática vida media mayor que el de otras tetraciclinas causada por algunas micotóxinas, y ayuda a la (19.5 horas), es de alta liposolubilidad lo que mejoría clínica en infecciones virales.

ACCIÓN ANTIMICROBIANA CONTRA PATÓGENOS INVOLUCRADOS EN EL COMPLEJO RESPIRATORIO PORCINO Amoxicilina

Florfenicol

Doxiciclina

Enrofloxacina

Actinobacillus pleuropneumoniae Mycoplasma hyopneumoniae Pasteurella multocida Bordetella bronchiseptica Haemophilus parasuis Streptococcus suis Salmonella choleraesuis Escherichia coli

Mayor grado de sensibilidad

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Menor grado de sensibilidad


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Bibliografía:

De Jong M.F. 2006. Progressive and Nonprogressive Atrophic Rhinitis in: Disease of Swine, 9th Edition, 577-602. Enríquez V.I., Godínez V.D., Martínez Z.R., Serrano L.J.J., De la Garza M., Hamer B.R. y Guerrero B. A.L. 2003. Adhesión de Actinobacillus pleuropneumoniae a componentes de matriz extracelular de cerdo. Ciencia Veterinaria, Vol. 9-4: 269-293. ESPINOSA, Ivette y  MARTINEZ, Siomara. Pasteurella multocida, Bordetella bronchiseptica y Streptococcus suis EN EL COMPLEJO RESPIRATORIO PORCINO. Rev Salud Anim. [online]. 2008, vol.30, n.3 [citado  2012-06-11], pp. 137-145. Disponible en: <http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_ arttext&pid=S0253-570X2008000300001&lng=es&nrm=i so>. ISSN 0253-570X. Gottschalk M., Altman E., Lacouture S., De la Salle F., and Dubreuil J.D. 1997. Serodiagnosis of Swine pleuropneumoniae due Actinobacillus pleuropneumoniae Serotypes 7 and 4 Using Long-Chain Lipopolysaccharides. Canadian Journal of Veterinary Research, 61:62-65 Gottschalk M. and Taylor D. J.2006. Actinobacillus pleuropneumoniae. In : Diseases of Swine 9th Edition. Ed by Barbara E. Straw, Jeffery L. Zimmerman, Sylvie D’ Allaire, David J Taylor. Blackwell publishing. Pág: 563-576. Halbur, P.G., Tanawongnuwech, G. Brown, J. Kinyon, J. Roth, E. Thacker & B. Thacker, 2000. Efficacy of antimicrobial treatments and vaccinations regimens for control of porcine reproductive and respiratory syndrome virus and Streptococcus suis coinfection of nursery pigs. Journal of Clinical Microbiology Vol. 38, No. 3, 1156-1160.

cerdos inoculados con un aislado de campo y el serotipo 5 ATCC de Actinobacillus pleuropneumoniae. Arch Med Vet, 42: 57-65. Opriessnig T., Giménez- Lirola L. G., and Halbur P.G. 2011, Polymicrobial respiratory disease in pigs. Animal Health Research Reviews 12 (2); 133-148. Cambridge University Press. Pallarés, F.J., Halbur, P.G., Schmitt, C.S., Roth, J.A., Opriessnig, T., Thomas, P.J., Kinyon, J.M., Dee Murphy, Frank, D.E., Hoffman, L.J. 2003. Comparison of experimental models for Streptococcus suis infection of conventional pigs. The Canadian Journal of Veterinary Research; 67: 225-228. Ross R.F., 2007. Pasteurella multocida and its role in porcine pneumonia, Animal Health Research Reviews 7 (1/2); 13-29. Cambridge University Press. Smart N.L., Miniats O.P., Rosendal S. and Friendship R.M. 1989. Glasser´s disease and prevalence of subclinical infection with Haemophilus parasuis in swine in southern Ontario. Canadian Veterinary Journal, vol. 30. 339-343. Schwartz K. 2002. Pathological Diagnosis of mycoplasmosis in swine. In: Swine mycoplasmal pneumonia technical workshop. Kansas City, MO, FDA/CVM. www.fda.gov/ohrms/dockets/ dailys/02/Mar02/031902/02N-0027_ts00006_02_vol2. ppt (04 Jul 2012 date last accessed). Taylor D.j., 2006. Actinobacillus pleuropneumoniae. In : Diseases of Swine 9th Edition. Ed by Barbara E. Straw, Jeffery L. Zimmerman, Sylvie D’ Allaire, David J Taylor. Blackwell publishing. Pág.: 563-576. Thacker Eileen L. 2008. Porcine Respiratory Disease Complex. Proceedings, The 15th congress of FAVA, FAVA-OIE Joint Symposium on Emerging Diseases, P S77-S78. 27-30 October, Bangkok, Thailand.

I Bochev. 2007. Porcine Respiratory Disease Complex (PRDC): A REVIEW.I: ETIOLOGY, EPIDEMIOLOGY, CLINICAL FORMS AND PATHOANATOMICAL FEATURES. Bulgarian Journal of Veterinary Medicine, 10, No 3, 131-146.

Thacker E. L., Thacker B.J. & Janke B.H. 2001. Interaction between Mycoplasma hyopneumoniae and Swine influenza virus. Journal of Clinical Microbiology, 39, No.7, 2525-2530.

Iglesias S G., y Trujano C M. 2000. Diversos Modelos que existen en el Complejo Respiratorio Porcino, Veterinaria México, 31 (1): 59-65.

Vahle J.L., Haynes J.S. and Andrews J.J., 1995. Experimental Reproduction of Haemophilus parasuis infection in swine: Clinical, Bacteriologic and morphologic findings. J Vet diagn Invest 7: 476- 480

Lisebrois L.M., Charlebois R., Higgins R. & Nadeau M. 1990. Prevalence of Streptococcus suis in Four to Eight week old clinically Healthy piglets. Canadian Journal Veterinary Research. 54: 174-177. Marco Enric. 2008. Haemophilus parasuis y su papel en el CRP. Jornadas Satélite: Primer Congreso de la Asociación Nacional de Veterinarios de Porcino, Zaragoza, España, Del 5 al 6 Noviembre de 2008. Muñoz D., Ruiz A., González M., Islas A., Díaz N. y Quezada M. 2010. Estudios hematológicos y patológicos comparativos de

Williams J.J., Torres-León M.A., Echeverría-Coello P., Matos-Medina M.C. 2000. Aislamiento e identificación de Actinobacillus pleuropneumoniae en pulmones de cerdos con pleuroneumonía crónica sacrificados en el rastro municipal de Mérida, Yucatán, México. Revista Biomédica; 11, No 3: 175181.

Apasionados por la salud animal

Ciprián, A., C. Pijoan, T., Cruz, J., Camacho, J., Tórtora, G., Colmenares, R. López-Revilla & M. de la Garza. 1988. Mycoplasma hyopneumoniae increase the susceptibility of pigs to experimental Pasteurella multocida pneumonia. Canadian Journal of Veterinary Research, 52, No. 4, 434-438.

Yeske P., 2003. Vaccination against EP. Pig progress, special (respiratory diseases), October 2003, 10-11.

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Suramox® 50% Premix

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INDICACIONES Para la prevención y tratamiento de enfermedades provocadas por gérmenes sensibles a la Amoxicilina. Aves: Infecciones respiratorias, artritis, colibacilosis, salmonelosis y estafilococosis. Cerdos: Estreptococosis, nefritis

bacterias involucradas en enfermedades del aparato respiratorio INDICACIONES Prevención y tratamiento de problemas respiratorios en cerdos ocasionados por gérmenes sensibles al Florfenicol y alivio sintomático de las afecciones que cursan con producción excesiva de moco. Control de transtornos digestivos infecciosos provocados por Salmonella spp y E. coli.

pleuroneumonía contagiosa, cistitis poliserositis infecciosa e infecciones del tracto reproductivo. DOSIS Lechones y engorda: Mezclar 800 g de Suramox® 50% Premix por tonelada de alimento durante 7 días. Cerdas: Mezclar 800 g a 2.4 kg de Suramox® 50% Premix, por tonelada de alimento durante 7 días. Aves: Mezclar 400 a 800 g de Suramox® 50% Premix por tonelada de alimento durante 7 días. Presentación: Saco de 10 kg

florfenicol y 25 ppm de NAC). Se recomienda por lo general durante un periodo de 7 días. La dosificación y el tiempo de tratamiento dependen del grado de riesgo en particular de cada etapa o de las condiciones particulares de cada granja. Vía de administración: Oral mezclado en el alimento. Presentación: Saco de 10 kg

DOSIS Mezclar 1 kg de Aflorac® MAXX por tonelada de alimento (equivalente a 40 ppm de

respiratorias, infecciones gastrointestinales, infecciones genitourinarias y algunos casos de mastitis. Para el tratamiento de heridas y procesos piógenos, además de otras infecciones causadas por microorganismos sensibles a la Enrofloxacina. (Pasteurella multocida, Actinobacillus pleuropneumoniae, Escherichia coli, Salmonella spp y micoplasmas).

Vía de administración: Intramuscular o subcutánea. No se administre más de 15 ml por sitio de aplicación. Presentaciones: Frasco de 100 ml y 250 ml.

INDICACIONES Antimicrobiano de amplio espectro para ser usado en bovinos, ovinos, caprinos y porcinos. Para el tratamiento de infecciones

DOSIS Administrar 3 ml/40 kg de peso (equivalente a 7.5 mg/kg) dosis única o repetir si es necesario a las 72 horas.

FÓRMULA Cada 1000 g contienen: Doxiciclina (hiclato)............... 500 g NAC ....................................... 50 g Excipiente c.b.p. ...................1000 g

H. paragallinarum, O. rhinotracheale y E. coli. Cerdos: Tratamiento y control de exacerbación de signos clínicos, de las enfermedades provocadas por Pasteurella multocida, Mycoplasma hyopneumoniae, Bordetella bronchiseptica, Actinobacillus pleuropneumoniae, y enfermedades entéricas causadas por Lawsonia intracellularis (Ileítis).

DOSIS En aves administrar de 300 a 400 g de Premedox® 50% MAXX por tonelada de alimento. En cerdos administrar de 400 a 500 g de Premedox® 50% MAXX por tonelada de alimento. La duración del tratamiento será de 8 días.

DESCRIPCIÓN Premezcla antibiótica de amplio espectro a base de hiclato de Doxiciclina con la inclusión N-acetilcisteina con efecto de potente mucolítico.

Vía de administración: Oral mezclado uniformemente alimento.

INDICACIONES Para el tratamiento de los procesos patológicos y alivio sintomático de las afecciones del tracto respiratorio, provocados por micoplasmas y bacterias. Control de afecciones digestivas y prevención de la Enteropatía Proliferativa en porcinos. Aves: Control de enfermedades respiratorias causadas por M. gallisepticum, M. synoviae,

Si requiere de información adicional Consulte al departamento técnico o al Médico Veterinario. Llame sin costo a la Línea Virbac 01 800 024 75 75 PORCINOS

homogeneidad del alimento medicado que se consigue dada la similitud de esta (300 a 500 micras) con la del alimento en harina. El proceso de protección de la Amoxicilina reduce considerablemente los riesgos de diseminación de la sustancia activa, (contaminaciones cruzadas). •Efecto antiadhesivo.

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Presentación: Saco de 10 kg

Virbac México S.A. de C.V. Lote 30 manzana 1, Parque Industrial Guadalajara, El Salto Jalisco. C.P. 45690. Teléfono: 01 (33) 5000 2550, Fax: 01 (33) 5000 2555. E-mail: clientes@virbac.com.mx

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Virbac al día Porcinos Num 23  

Complejo Respiratorio Porcino CRP

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