GUIA ETV 2021

Secretaría de Salud

Guía para la prevención y control de Enfermedades Transmitidas por Vectores

OBJETIVOS

PRESENTACION La guía diseñada por la UES VALLE para la prevención y control de Enfermedades Transmitidas por Vectores- ETV fortalece el talento humano que realiza las actividades de promoción, prevención y control. En la guía se encuentran aspectos de conocimiento básicos de los vectores de importancia en Salud Pública cuyo propósito es mantener un aprendizaje permanente sobre el tema de las ETV en el Departamento del Valle del Cauca. Además, se cuenta con el acompañamiento del equipo de profesionales del proceso misional de ETV de la UES VALLE los cuales de manera activa realizan la retroalimentación de los lineamientos dados por el Ministerio de Salud y la protección social para las acciones en las ETV. La presente guía contiene temas como: importancia de los artrópodos en Salud pública, impacto de las ETV, biología de vectores de malaria, dengue, zika, chikungunya, fiebre amarilla, leishmaniasis y enfermedad de chagas, tipos de control, técnicas de muestreo para la vigilancia entomológica, factores que influyen en la captura de insectos, procedimiento para la captura y remisión de muestras, tamaño de muestra para encuesta de viviendas, reconocimiento geográfico, indicadores larvarios; con los cuales esta herramienta es de gran importancia para las visitas de campo o terreno que realiza el talento humano en las viviendas y diferentes entornos de los municipios del Valle del Cauca.

GENERAL Enseñar una herramienta para la promoción, prevención y control de las Enfermedades Transmitidas por Vectores- ETV, especialmente dengue, zika, chikungunya, fiebre amarilla, malaria, chagas y leishmaniasis.

ESPECÍFICOS Unificar conceptos y metodologías para la promoción, prevención y control de las Enfermedades Transmitidas por Vectores- ETV. Realizar la intervención y el seguimiento a sectores de mayor riesgo identificados con presencia de vectores.

Desarrollar estrategias de entrenamiento permanente al talento humano en la promoción, prevención y control de las Enfermedades Transmitidas por Vectores- ETV Implementar medidas de control vectorial acorde a las situaciones epidemiológicas presentadas.

ALCANCE Aplica a las actividades de la promoción, prevención y control de las Enfermedades Transmitidas por Vectores- ETV, a cargo de las Entidades Territoriales de Salud.

El presente manual está dirigido al talento humano responsable de la ejecución de las actividades de la promoción, prevención y control de las Enfermedades Transmitidas por Vectores - ETV.

1. ARTROPODOS DE IMPORTANCIA EN SALUD PUBLICA

2. LAS ENFERMEDADES TRANSMITIDAS POR VECTORES- ETV

Con frecuencia se piensa que los insectos son los más formidable competidores del hombre, por ser los que destruyen sus cultivos o cosechas almacenadas y también por participar en la transmisión de algunas enfermedades. Pero del otro lado se encuentra su gran aporte en área científica-genética, agricultura sostenible, apicultura, control biológico, polinización, producción industrial, etc.

Entre las enfermedades transmitidas por vectores más importantes en Colombia y que constituyen eventos cuya vigilancia, prevención y control revisten especial interés en salud pública están: Malaria, Dengue, Chikungunya, Zika, Fiebre Amarilla, Leishmania y Enfermedad de Chagas, reemergen al final del milenio como un problema de Salud Pública, asociado al deterioro de las condiciones de vida de grandes grupos poblacionales, que afecta el bienestar de los habitantes de muchos países de la región de las Américas, África y Asia.

Además producen una elevada carga social y económica en la población colombiana a riesgo.

Algunas de las enfermedades transmitidas por artrópodos aparecen en el siguiente cuadro: Cuadro 1. Enfermedades humanas transmitidas por artrópodos

El riesgo de transmisión se encuentra relacionado con determinantes dinámicos, que han aumentado en los últimos años, como la intensificación de la migración interna, conflicto armado, cultivos ilícitos, violencia, pobreza en zonas rurales, crecimiento desordenado de los núcleos urbanos, la explotación de los bosques y metales preciosos (uso del suelo), las secuelas ambientales de proyectos estatales y privados, una deficiente gestión del ambiente, además del pobre liderazgo de las entidades territoriales de salud, para identificar e intervenir oportunamente los brotes de cada enfermedad).

En Colombia durante la última época estas patologías presentan una tendencia creciente a pesar de los esfuerzos realizados para su prevención y control. En los diferentes departamentos del país existen focos de transmisión de las ETV, que producen un costoso impacto para la sociedad y para las Secretarías de Salud y por consiguiente al Ministerio de Salud y la protección social.

ENFERMEDADES TRANSMITIDAS POR VECTORES

Dengue - Chicunguña - Zika - Leismaniasis Malaria - Chagas - Fiebre amarilla

• Dengue. Enfermedad viral, que se transmite a través de la picadura de la hembra del mosquito Aedes aegypti y se caracteriza por un cuadro febril agudo, con intenso malestar general, (dolor retro ocular, dolor muscular y dolores articulares), acompañado de erupción cutánea.

• Chicunguña. Enfermedad viral que se propaga por la picadura de los mosquitos Aedes aegypti ó Aedes Albopictus infectados, que son los mismos vectores del Dengue.

• Zika. Enfermedad causada por el virus del mismo nombre, el cual se aisló por primera vez en los Bosques de Zika en Uganda, en el año 1947, en un mono Rhesus, durante un estudio de fiebre amarilla. El virus del Zika, pertenece a la familia Flaviviridae, muy cercano filogenéticamente al virus del Dengue, la Fiebre Amarilla, la Encefalitis Japonesa y el virus del Nilo Occidental.

• Leishmaniasis. Enfermedad infecciosa provocada por un parásito llamado leishmania cuya fuente de infección son los animales, las personas se pueden contagiar si reciben picaduras de una palomilla (lutzomyia) o mosca de la arena que haya picado anteriormente a un mamífero infectado.

• Malaria. Enfermedad parasitaria sistémica transmitida al humano por un mosquito hembra del género Anopheles el cual transmite un parásito del género Plasmodium. La malaria se presenta principalmente por fiebre alta asociado a calofríos intensos, decaimiento, compromiso del estado general, cefalea, náuseas y sudoración profusa.

• Chagas. La Enfermedad de Chagas es causada por un parásito, llamado Trypanosoma Cruzi, que se transmite a los seres humanos y los animales mamíferos a través de las Chinches que chupan la sangre de los hombres y de los animales y que puede ocasionar lesiones en corazón, aparato digestivo y sistema nervioso.

• Fiebre Amarilla. Es una infección transmitida por mosquitos del género Aedes aegypti portadores del virus de la familia Flaviviridae y es caracterizada por falla hepática, renal, miocárdica y hemorragias generalizadas con una alta tasa de letalidad. Son enfermedades causadas por una gran variedad de microorganismos que se transmite de los animales vertebrados al hombre o viceversa.

3. VIGILANCIA ENTOMOLÓGICA Es el conjunto de acciones orientadas hacia el vector de tal manera que nos permita registrar la presencia de este, detectar oportunamente la introducción de otra especie no nativa, delimitar la distribución espacial, conocer las infestaciones del vector antes y después de las acciones de control, identificar las áreas de mayor riesgo y determinar el peso porcentual de depósitos positivos por lugar definido.

La estrategia básica para el control de las ETV requiere las investigaciones entomológicas que permitan obtener la información necesaria para orientar las acciones de intervención desde un manejo integrado que involucre el ordenamiento del medio, control biológico, la aplicación de control químico, atención primaria y participación comunitaria, entre otros.

Los estudios orientados al control de los vectores deben apoyarse en el conocimiento inicial de las especies vectoras y demás factores relacionados con la biología, ecología y comportamiento en cada una de las regiones.

Cada uno de estos estudios tiene un carácter específico, epidemiológico, estacional e individual para los vectores y para las enfermedades transmitidas por estos en una localidad, que posteriormente permiten determinar asociaciones huésped-vector-ambiente y que llegan a establecer las medidas de control adecuadas en los sitios con transmisión.

Componentes de la vigilancia entomológica Información epidemiológica preliminar. (Estratificación de riesgo).

Ubicación de áreas con transmisión - Reconocimiento geográfico.

Búsqueda activa de las especies vectoras.

Determinación taxonómica del material entomológico colectado.

Conocimiento de sitios de cría, sitios de reposo, densidad relativa, distribución, comportamiento de picadura, preferencias alimenticias.

Realización de pruebas biológicas de pared y pruebas de susceptibilidad.

Implementación de intervenciones: ordenamiento del medio, control químico, biológico.

Evaluación de medidas de control.

Actualización de la información entomológica.

Participación comunitaria.

Coordinación intra e intersectorial

En el muestreo debe incluirse uno o varios de los siguientes establecimientos o instituciones: cementerio, hospital, colegio, escuela, templo, jardines, llanterías o talleres entre otros; cada uno de ellos se debe tomar como una vivienda.

A continuación, se dan las instrucciones de los temas relacionados con la encuesta Aedica, inspección de sumideros y las concentraciones humanas; actividades permanentes en la vigilancia de Aedes spp

Esta actividad hace referencia a la vigilancia que debe realizarse periódicamente en las áreas infestadas por mosquitos Aedes spp., con el propósito de conocer la distribución y el grado de infestación en una localidad. En sitios con transmisión de arbovirosis esta información es relevante, pues permite priorizar el control en áreas con mayor infestación y disminuir el riesgo de diseminación de la enfermedad.

Aspectos previos de la encuesta La información previa a la realización de la encuesta entomológica debe incluir un mapa o croquis actualizado de los municipios y el censo de viviendas de la cabecera, principales corregimientos y caseríos. Además, puede ser de gran utilidad la recopilación de información adicional, como: censo de habitantes; extensión del área; accidentes geográficos; vías de acceso; configuración de las manzanas; ubicación de las calles principales y secundarias; número de viviendas por manzana, ubicación de estas en el croquis y numeración; ubicación de lugares como: cementerios, instituciones educativas, basureros, lotes, entre otros.

EI tamaño de la localidad es de gran importancia para establecer los sectores o áreas que deben ser incluidas en el muestreo, por lo que es recomendable subdividir las localidades que tienen más de 500 viviendas en sectores o estratos, con base en factores de riesgo identificados por barrios o áreas con características similares. Estas pueden ser: existencia de servicios de agua intradomiciliaria y de recolección de basuras, nivel socioeconómico, áreas de invasión reciente, mayor densidad de viviendas y/o de población, entre otras.

Debe consultarse si el municipio tiene realizada esta estratificación y proceder de acuerdo a esta. En las áreas rurales la sectorización se realiza por vereda o caserío.

Encuesta entomológica

La encuesta entomológica se realiza mediante inspecciones en búsqueda de Aedes sp en el interior y peridomicilio de las viviendas visitadas. Puede realizarse encuesta de huevos, larvas, pupas y/o adultos. No obstante, para las actividades de vigilancia se utiliza como parámetro principal, las encuestas entomológicas de larvas y pupas dirigidas a obtener los índices de infestación por Aedes spp en una localidad.

Encuesta entomológica de larvas y pupas de Aedes spp en viviendas Deben realizarse mínima dos veces al año (durante el primero y segundo semestre) en las cabeceras municipales, principales corregimientos y caseríos de cada municipio, ubicados entre los 0 y 2200 metros sobre el nivel del mar: dando prioridad a los sitios con transmisión de arbovirosis. Según la situación epidemiológica y los lineamientos del Ministerio de Salud y Protección Social, la periodicidad de las encuestas se puede intensificar entre 3 a 4 encuestas.

La unidad básica de muestreo es la vivienda o inmueble, que se registra sistemáticamente para encontrar depósitos o recipientes que contengan agua, en busca de larvas y pupas de mosquitos. La confirmación de la especie se realiza mediante estudios de

laboratorio mediante la determinación taxonómica.

Para la realización de la encuesta entomológica se debe tener en cuenta el siguiente procedimiento: Selección del número de viviendas a inspeccionar. En la encuesta entomológica, el número de casas a inspeccionar debe ajustarse al censo de viviendas de la localidad o de los sectores establecidos en la localidad, según los parámetros recomendados por la Organización Panamericana de la Salud - OPS para detectar índices larvarios mayores al 5% con un nivel de confianza del 95%.

La siguiente tabla se indican las casas que se han de visitar según el censo de viviendas.

Tabla 1. Número de viviendas a inspeccionar en la Encuesta Aedica Número de viviendas en el municipio o localidad (N)

1 a 50 51-100 101-200 201-300 301-400 401-500 501-1000 1001-5000 5001-10000 Mayor 10001

Número mínimo de viviendas a muestrear (n)

Todas las casas 50 75 120 150 171 189 231 286 300

Intervalos Inferior

Superior

1

1

1 1 2 2 2 3 4 17 33

2 3 3 3 3 5 22 35 -

Fuente OPS. En un municipio de más de 500 viviendas, para el estudio entomológico, es conveniente dividir la localidad en conglomerados; definiendo estos como la agrupación de barrios y que en muchas localidades

son denominados como comunas, que comparten características similares (condiciones sociales, económicas y culturales), que las diferencian de otras agrupaciones.

Para facilitar el muestreo se emplea la fórmula: N/n = I Donde: N = Número total de casas de la localidad n = Numero de casa a inspeccionar (ver tabla1) I = Intervalo entre casas a inspeccionar Las casas a inspeccionar se distribuyen uniformemente en el conglomerado. Por ejemplo, si el número de casas a inspeccionar, según la tabla 1, es de 120 casa en un conglomerado de 240 casa, el intervalo es: 240/120 = 2, o sea que la inspección se realiza cada dos casas.

Si el intervalo calculado tiene un decimal, se quita la parte decimal, por ejemplo; en un conglomerado de 500 casas se inspeccionan 171 casa, según el cuadro. El intervalo es: 500/171 = 2.92. Quitándole la parte decimal el intervalo es 2. Si queda una parte del conglomerado sin trabajar, entonces se debe continuar inspeccionando cada dos viviendas hasta completarla.

Asignación de funcionarios para la realización de la encuesta EI funcionario encargado del Programa de Enfermedades Transmitidas por Vectores (ETV) en cada área operativa- ARO, conjuntamente con los supervisores, debe realizar la distribución del personal encargado de la realización de la encuesta en cada municipio.

Previamente se realiza una sectorización, teniendo en cuenta además el número de viviendas a muestrear y los intervalos inferiores y superiores según el censo de viviendas de cada localidad.

Inspección de la vivienda Conforme a la asignación de los sectores, cada funcionario debe verificar diariamente que cuenta con los equipos, insumos, formatos y herramienta tecnológica para registro de información necesarios para un adecuado desempeño de sus actividades.

Previamente a la inspección de una vivienda, el funcionario debe solicitar la autorización para el ingreso a esta al jefe del hogar o en su defecto a la persona adulta responsable de la vivienda que se encuentre en ese momento. Se debe portar el carne y demás distintivos institucionales que lo acreditan como funcionario de la UESVALLE y explicar en forma breve y concisa el motivo de la visita y la manera como se realizara la inspección de la vivienda. Así mismo, se debe solicitar la compañía de un adulto para la inspección respectiva, con el propósito de que este observe el trabajo a realizar y no se presenten posibles reclamaciones.

A continuación se describe la manera más adecuada de presentar el programa al momento de visitar una vivienda: "Saludo y nombre del funcionario", "Soy funcionario de la Unidad Ejecutora de Saneamiento del Valle del Cauca, estamos en una campaña de prevención y control del dengue, zika, y chicunguña; para ello se requiere la inspección de depósitos o recipientes que contengan agua en su vivienda para el control del mosquito o zancudo transmisor del virus de estas enfermedades " EI trato a los moradores de las viviendas debe ser muy cortes y en caso de ser rechazado el ingreso a la vivienda, debe tratar de persuadirse a quien atiende la visita, explicándole los beneficios que representa para la comunidad el muestreo que se está realizando. Si persisten en la actitud de rechazo, no se registra la vivienda y se elige alguna de las viviendas contiguas para realizar la actividad.

La inspección debe comenzarse en la parte externa anterior de la vivienda o sea en el antejardín, si lo hubiere. Posteriormente se debe inspeccionar el interior de la vivienda comenzando por el solar o patios posteriores, inspeccionando todos los lugares como jardines, gallineros, establos, pocetas, lavaderos, cuartos de almacenamiento de materiales, entre otros. Una vez terminada la labor en estas se debe pasar al interior de la vivienda e inspeccionar en orden secuencial los demás lugares como cocina, alcobas, esta-

deros, comedor, salas, hasta terminar totalmente la inspección de la casa. Si la vivienda tiene más de un piso, la inspección se realiza inicialmente en la planta baja y posteriormente en las demás plantas, incluyendo las azoteas.

Durante la realización de esta encuesta se debe informar y motivar a la comunidad para que participe activamente en el control de los criaderos de Aedes sp ubicados en sus viviendas. EI propósito es, que las personas practiquen las medidas de control físico, como: tapado adecuado de los recipientes que contengan agua, cepillado y lavado por lo menos una vez a la semana del tanque del lavadero, entre otros: haciendo notar la importancia de su colaboración en la vigilancia y control, y con ello en la prevención de las arbovirosis dengue, zika y chicunguña en su familia.

Se debe inspeccionar y registrar todos los depósitos que contengan agua o que estén húmedos al momento de la visita. Para esta actividad, la información recolectada se registra utilizando la aplicación móvil ETVUES, lo correspondiente a la actividad de “Vigilancia y control de estados inmaduros de Aedes spp” anteriormente registrado en el formato físico FEV-01 que se encuentra en el Sistema de Gestión de Calidad. Una vez realice la visita debe guardar la información y terminando la jornada dar actualizar para envío de la misma.

Paralelamente a la inspección y registro de los depósitos o recipientes, se debe hacer control físico, eliminando el agua (en un lugar seco) de los depósitos que sean susceptibles de ser destruidos, con el acompañamiento y autorización de quien atiende la visita. En este momento, también se dan las recomendaciones para el control por parte de los mismos habitantes de la vivienda, realzando la importancia que estos hábitos tienen en la disminución del riesgo de enfermar o morir por dengue, zika, y chicunguña.

Los depósitos que contengan agua para el consumo humano o en forma permanente como tanques bajos y las tinas con capacidad de más de 250 litros o 65 galones que se encuentren positivas a

larvas de Aedes spp deben ser tratados con larvicidas. Para esto, se requiere su cubicación con el uso de un flexómetro, según su forma así: • Tanques cuadrados o rectangulares: se mide y multiplica el largo por ancho por profundidad (todas las medidas se toman en centímetros). Luego este resultado se divide por 1000, para obtener el volumen del depósito en litros.

• Tanques cilíndricos o tinas: se mide el diámetro y se eleva al cuadrado (o se multiplica diámetro por diámetro). Luego se mide la profundidad y se multiplica por el valor obtenido anteriormente.

Este nuevo valor se multiplica por 0,8 (una constante) y se divide por 1000, para obtener el volumen del depósito en litros.

Una vez obtenido el volumen en litros para estos depósitos se procede a medir y aplicar la cantidad de larvicida indicada según las tablas de dosificación de cada producto. Ver dosificación de productos. Se debe dar la explicación a quien atiende la visita acerca de qué tipo de producto ha sido aplicado y sus efectos para el control de larvas de mosquitos.

Toma de muestras de larvas y pupas: Como mecanismo de control de calidad de la encuesta entomológica de larvas y pupas, debe tomarse una muestra por cada diez (10) viviendas positivas, por parte de cada uno de los auxiliares o funcionarios encargados de la realización de esta actividad. La toma de las muestras debe hacerse de la siguiente forma: • Elija uno de los depósitos positivos encontrados en la vivienda, con larvas de 3° y 4° estadlo y/o pupas.

• Utilice un cucharón o gotero para colectar larvas y pupas según el tipo de depósito.

• Prepare un vial en el que se debe introducir un rótulo de papel bond de 2cm X 2,5cm (como máximo), que contenga los siguientes datos escritos con lápiz No. 2 o rapidógrafo.

Fecha: año/ mes/día Municipio: nombre del municipio Comuna/Sector: número de la comuna o del sector Barrio: nombre del barrio.

Dirección: especifique la dirección de la vivienda Depósito: especifique el tipo de criadero donde hizo la colecta del material Colector: nombre y código de la muestra tomada por el colector Nota: estos datos deben quedar hacia afuera, de tal manera que se puedan leer sin necesidad de abrir el vial.

• Con un gotero, Ilene de alcohol el vial hasta unas ¾ partes.

• Con un gotero seleccione larvas de 3° y 4° estadio y pupas (si las hay) • Elimine el agua en exceso contenida en el gotero, sin perder los ejemplares.

• Lave el contenido del gotero en la palma de la mano.

• Continúe eliminando el agua que quede alrededor de las larvas y pupas con la ayuda del gotero.

• Acerque el vial con alcohol a cada larva o pupa y júntela con la palma de su mana para hacer que estas queden al interior del vial, cuidando de no dañar los ejemplares.

• Se debe colectar mínimo una y máximo cinco larvas o pupas.

• Añada más alcohol al vial con un gotero, hasta que este esté totalmente lIeno.

• Cierre el vial. De ser necesario y para que los insectos no se sequen, coloque cinta de enmascarar o plástico parafinado alrededor de la tapa con el fin de evitar la pérdida o evaporación del alcohol.

Entregar las muestras al profesional del proceso ETV quien debe hacer la revisión de las muestras para su posterior envío y registro en el formato requerido por el Laboratorio de Salud Pública Departamental el RAN-EN-FOR-020. En este se deben relacionar todas las muestras tomadas por cada auxiliar o funcionario que realiza la encuesta.

Encuesta entomológica de larvas y pupas de Aedes spp en sumideros de aguas lluvias en vía pública: Los sumideros de aguas lluvias constituyen uno de los depósitos artificiales más propensos a presentar infestación por larvas y pupas de mosquitos, puesto que su diseño como trampas de sólidos del sistema colector de aguas lluvias para evitar la obstrucción del alcantarillado, también permite la presencia de aguas estancadas durante largos periodos de tiempo; situación que favorece la reproducción de estos insectos, principal mente de los géneros Culex spp y Aedes spp. Estos depósitos presentan en promedio una capacidad máxima para almacenar 250 litros de agua (1 m x 0,5 m x 0,5 m) y un diseño que permite las condiciones para el desarrollo de los estadios inmaduros de los mosquitos durante todo el año.

Teniendo en cuenta que con frecuencia los sumideros pueden presentar infestación mixta por larvas y pupas de mosquitos de Culex y Aedes, se requiere un adecuado entrenamiento al personal que debe Ilevar a cabo las actividades de inspección para el levantamiento de la encuesta entomológica en cuanto a la diferenciación macroscópica de las larvas y pupas de estos géneros; por lo cual a continuación se presenta la información sobre dichas características: La vigilancia entomológica de Aedes spp en sumideros de aguas lluvias en vía pública, se requiere la determinación de la cantidad existente de estos depósitos en cada municipio y su ubicación por comunas o sectores según corresponda, con el objeto de determinar la cantidad de funcionarios a asignar en la realización de esta actividad.

La periodicidad de la inspección de los sumideros debe realizarse mensualmente y debe cubrir la totalidad de los sumideros identificados en cada municipio, comuna u sector. Posteriormente se debe hacer solo tratamiento de los sumideros con larvicidas como mínima cada diez (10) días en caso de usarse Bacillus thuringiensis, o de quince (15) días si el producto utilizado es temefos; es decir,

típicamente en un mes debe hacerse una (1) inspección y tratamiento, y uno (1) o dos (2) tratamientos sin inspección, según el caso. Para el uso de otros productos es necesario consultar las fichas técnicas.

Inspección, tratamiento y registro de sumideros Se debe tener en cuenta que se garantice una cobertura total de las diferentes comunas o sectores en que se encuentran divididos los municipios. La inspección se realiza mediante la utilización de un cucharon de vidrio o acrílico transparente fijado a un mango de PVC o aluminio y adaptado a los orificios de las tapas de los sumideros, que general mente son de forma rectangular, con excepción de aquellos que presentan orificios de forma redondeada y las rejillas (estos dos últimos tipos de orificios por lo general no permiten la inspección con este cucharon rectangular).

Para una correcta inspección y evitar la perturbación de las larvas y pupas que pueda contener el sumidero, el funcionario encargado de la actividad debe ubicarse la primera vez en una de las esquinas del sumidero evitando que su sombra se proyecte sobre este, verificar la existencia de agua, aun cuando se observen capas de hojas u otros elementos (los sumideros que contengan capas gruesas de aceite no se inspeccionan), e introducir el cucharon en forma oblicua para extraer agua.

Una vez se extrae el agua con el cucharon, se observa su contenido y se identifican los géneros tanto de larvas como de pupas si los hay. Este mismo procedimiento se repite para las otras tres esquinas del sumidero, dejando un intervalo de tiempo de entre uno o dos minutos para que las larvas y/o pupas regresen a la superficie.

Terminada la inspección, se realiza el tratamiento del sumidero con larvicida, según el tipo de producto disponible y las indicaciones del supervisor o profesional encargado del programa en área operativa.

EI registro correspondiente a la inspección y tratamiento de sumideros debe hacerse utilizando la aplicación móvil ETVUES, lo corres-

pondiente a la actividad “Vigilancia y control de estados inmaduros de mosquitos en sumideros de vía pública - registro diario" anteriormente registrado en el formato físico FEV-02 que se encuentra en el Sistema de Gestión de Calidad. Los registros en la aplicación deben realizarse uno a uno guardando la información en el campo correspondiente con su dirección de la vivienda más cercana a cada sumidero. En el evento de no existir una vivienda próxima al sumidero, este se registra con datos del lugar que permitan su ubicación

legal del establecimiento y en el evento de presentarse infestación por larvas y/o pupas de Aedes, se debe establecer un plazo para cumplir con las recomendaciones para eliminar los criaderos detectados en la visita. El funcionario que práctica la visita, debe verificarlo en el plazo establecido, el cumplimiento de las recomendaciones impartidas. También, hacer énfasis en la normatividad vigente en el acta el decreto 0294 del 2016 dado por la gobernación del Valle del Cauca y la ley 1801 del 2016 Código de Policía

Una vez realice la inspección y tratamiento visita debe guardar la información y terminando la jornada dar actualizar para envío de la misma.

Control Focal de Aedes spp.

Encuesta entomológica de larvas y pupas de Aedes spp en concentraciones humanas:

A partir de los lineamientos del Ministerio de Salud y Protección Social, el Instituto Nacional de Salud y la Organización Panamericana de la Salud - OPS, con el apoyo de los equipos de ETV en cada ARO, se debe llevar a cabo el proceso de focalización, caracterización y estratificación del riesgo de transmisión de dengue para el Departamento y cada uno de los municipios de su jurisdicción, teniendo como base la información epidemiológica del SIVIGILA, al igual que las variables definidas en la guía y los resultados e índice obtenidos con relación a la vigilancia entomológica.

Los lugares de concentración humana tales como: puertos marítimos, fluviales y aéreos instituciones de salud y educativas (escuelas, colegios, hogares ICBF, jardines infantiles, institutos y universidades), guarderías y ancianatos, centros recreacionales, hoteles y moteles, edificios públicos, estadios y coliseos, centros comerciales, iglesias, organismos de socorro, fabricas, cementerios, talleres (incluye vulcanizadoras), chatarrerías, entre otros; son considerados de importancia para la vigilancia entomológica, por revestir mayores riesgos en la transmisión de las arbovirosis como dengue, zika, y chicunguña.

Para la vigilancia en estos lugares se debe realizar una visita cada tres meses en la cual se inspeccionan sistemáticamente todos los depósitos de agua existentes conforme a las instrucciones antes descritas para la encuesta entomológica en viviendas y en sumideros de aguas lluvias, que son aplicables a esta actividad. EI registro de la inspección se debe realizar utilizando la aplicación móvil ETVUES, lo correspondiente a la actividad Registro Diario de Control de Aedes spp en Concentraciones Humanas" en el “Acta de Visita de Vigilancia y Control de Artrópodos Vectores y de Interés En Salud Publica” anteriormente registrado en el formato físico FEV-03 y F-EV-04. Dicho documento debe ser notificado al representante

Focalización, Caracterización y estratificación del riesgo:

Control focal de formas inmaduras de Aedes spp en viviendas.

EI control focal en viviendas se debe realizar de acuerdo a los resultados obtenidos de la focalización, caracterización y estratificación del riesgo de la transmisión de dengue y los resultados de la vigilancia entomológica por conglomerados y en situación de brotes de dengue.

Control por priorización de conglomerados: Para la realización de esta actividad se debe tener en cuenta lo establecido en la Encuesta entomológica de larvas y pupas de Aedes spp en viviendas y su registro en la app ETVUES" y conforme con las siguientes observaciones:

• La periodicidad del control de formas inmaduras en viviendas en los conglomerados priorizados es bimestral según el programa operativo anual de la institución.

• La inspección de viviendas se debe hacer en forma consecutiva, cubriendo la totalidad de las manzanas seleccionadas en cada sector o conglomerado priorizado para control focal. Esta actividad se diferencia de la encuesta entomológica, la cual se hace por intervalos de viviendas.

• Se debe registrar todas las viviendas, incluyendo las cerradas y renuentes; pues esta información es importante para el análisis estadístico y la definición de estrategias para el control en lugares que presenten estas características. Estas viviendas no se tienen en cuenta en la meta diaria por funcionario.

• No se requiere la toma de muestras de larvas y pupas.

• En forma excepcional, puede hacerse la aplicación de larvicidas de acción residual prolongada (Temephos o Abate), aun cuando no se registre la presencia de larvas en depósitos permanentes de agua, con el fin de crear un efecto barrera en todo un sector, localidad o municipio, cuando los índices de infestación sean considerablemente altos o se presenten epidemias de dengue, zika o chicunguña.

Control en situación de brotes: dengue, zika y chicunguña Para garantizar un control oportuno de los probables casos de dengue reportados por las UPGD y/o secretarias de salud de los diferentes municipios del área de influencia de la UESVALLE, se debe realizar la coordinación interinstitucional para garantizar que el reporte de las fichas de notificación individual diligenciadas en cada institución prestadora de servicios de salud - IPS sea realizado en forma oportuna.

Con base en la información registrada en las fichas de notificación individual se deben seleccionar los casos que por sus características ameriten la realización del respectiva estudio de caso, el cual consiste en la revisión de los datos relacionados con el paciente, las variables reportadas en la ficha, el análisis de los lugares probables en donde pudo ser infectado (estos pueden ser su vivienda, lugar

de trabajo, estudio, etc.) entre otros y los suministrados por el paciente o sus familiares al momento de la visita para la realización de las actividades de control, de lo cual se debe dejar registro conforme al F-EV-05 "Estudio de caso epidemiológico de ETV".

EI control correspondiente a casos probables de dengue consiste en la cobertura total de los lugares identificados como probables focos a través de actividades de control de formas inmaduras y de adultos en un radio de aproximadamente 100 metros alrededor del lugar identificado; por ejemplo se deben inspeccionar y controlar todas las viviendas de la manzana donde se ubica el probable foco y las de las manzanas contiguas a esta (en total nueve manzanas).

Control focal de formas adultas de Aedes spp: EI control focal de formas adultas en viviendas debe realizarse teniendo en cuenta las instrucciones y recomendaciones dadas la Guía de Vigilancia Entomológica y Control de Dengue del Ministerio de Salud y Protección Social, el INS y la OPS. EI registro de las actividades de control de adultos desde la vía pública con equipo pesado debe hacerse en el F-EV-07 "Registro diario de aplicación de insecticidas UL V - equipo pesado" y en el F-EV-08 "Registro diario de aplicación de insecticidas UL V - mochila" para el caso del control de adultos con equipo de espalda al interior de las viviendas.

Dosificación de Larvicidas Utilizados: Bacillus thuringiensis (Vectobac WDG) (PARA RECIPIENTES CON AGUA PARA USO DOMESTICO) CAPACIDAD DEL DEPOSITOSGRAMOS LITROS 50-100

0,5

101-250

1,0

251-500

2,0

501-750 751-1000

3,0 4,0

4. BIOLOGÍA DE VECTORES DE: (MALARIA, DENGUE, CHIKUNGUNYA, ZIKA, FIEBRE AMARILLA, LEISHMANIASIS Y ENFERMEDAD DE CHAGAS)

TABLAS DE DOSIFICACION DE LARVICIDAS TEMEPHOS (ABATE AL 1%) PARA RECIPEINTES CON AGUA PARA USO DOMESTICO CAPACIDAD DEL DEPOSITO- LITROS

CUCHARADAS

GRAMOS

1/4 1/2 3/4 1 1 1/4 1 1/2 1 3/4 2 2 1/4 2 1/2 2 3/4 3

5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60

26 A 50 51 A 100 101 A 150 151 A 200 201 A 250 251 A 300 301 A 350 351 A 400 401 A 450 451 A 500 501 A 550 551 A 600

CAPACIDAD DEL DEPOSITO- LITROS

CUCHARADAS

GRAMOS

3 1/4 3 1/2 3 3/4 4 4 1/4 4 1/2 4 3/4 5 7 1/2 10 25 50

65 70 75 80 85 90 95 100 150 200 500 1000

601 A 650 651 A 700 701 A 750 751 A800 801 A 850 851 A 900 901 A950 951 A 1000 1500 2000 5000 10000

Nota: en sumideros se aplican 20 gr (1 cucharada)

Bacillus sphaericus (Vectolex 7,5 % CG) TIPO DE DEPOSITO

GRAMOS /APLICACIÓN

SUMIDEROS DE AGUA LLUVIA (Vi a públ i ca )

2-10 gr /sumidero

CRIADEROS NATURALES

2-10 gr / cada 5 pasos

Diflubenzuron Tabletas 0,5 gr (Dimilin)

Bacillus thuringiensis (Vectobac G) TIPO DE DEPOSITO

GRAMOS /APLICACIÓN

SUMIDEROS DE AGUA 2-10 gr /sumidero LLUVIA (Vía Pública)

CRIADEROS NATURALES

2-10 gr / cada 5 pasos

Pyriproxyfen (Sumilarv) Juvenoide

TIPO DE DEPOSITO

GRAMOS /APLICACIÓN

TIPO DE DEPOSITO

GRAMOS /APLICACIÓN

SUMIDEROS DE AGUA LLUVIA (Vía Públ i ca )

1

SUMIDEROS DE AGUA LLUVIA (Vía Públ i ca )

10 gr /sumidero

CRIADEROS NATURALES

10 gr / cada 5 pasos

Depós i tos de a gua 0,5 gr por cada pa ra cons umo 200 litros de agua huma no

4.1 Biología de Culicidaes.

Comúnmente denominados mosquitos o zancudos. Reconocidos por sus patas largas, alas con escamas, machos con antenas plumosas y las hembras son muy fastidiosas por su voraz picadura.

Algunas especies de los Culicidaes están involucrados en la transmisión de: Malaria, Dengue, Zika, Chikungunya y Fiebre Amarilla.

Su ciclo de vida pasa por varios estados para alcanzar su forma adulta. Las hembras al llegar al estado adulto necesitan de la sangre de los vertebrados para madurar sus huevos, por lo que salen a picar a diferentes horas del día dependiendo de la especie.

Estados de los Mosquitos o zancudos: • Huevos: las hembras depositan sus huevos en superficies acuáticas. Son elípticos y presentan forma variadas, así por ejemplo los huevos de Anopheles tienen una forma de bote por que presentan flotadores, mientras que los de Aedes no los tiene.

Las hembras de los zancudos pueden poner entre 70 y 100 huevos y dependiendo de las condiciones de temperatura su eclosión varía entre 2 y 3 días.

• Larvas: Son semejantes a gusanos acuáticos, dependiendo de la región reciben diferentes nombres, se alimentan de material orgánico. Tienen claramente diferenciada la cabeza, tórax y abdomen, presentan numerosas cerdas o pelos que son importantes para su identificación. Dependiendo e las condiciones ambientales duran entre 10 a 15 días.

Pasan por 4 estados larvales, en cada uno de ellos cambian de piel y aumenta su tamaño. El último estado, es decir el 4 pasa al estado de pupa.

• Pupas: tienen forma de coma o de número 9. No se alimentan y se mueven activamente al ser perturbadas. Duran entre 2 a 3 días.

• Adultos: son formas voladoras y se diferencian las especies por sus aspectos morfológicos como en: alas, patas y escamas toráxicas.

También por su forma de reposar en la superficie, algunos lo hacen con posición oblicua (Anopheles) y otros en perpendicular (Culex y Aedes).

Su tiempo de vida varía por las condiciones ambientales, pero pueden durar entre 20 a 60 días. Los machos viven un poco menos que las hembras y se alimentan de sustancias azucaradas como néctar de flores o fluidos vegetales. Las hembras también pueden vivir de una dieta de sustancias azucaradas pero necesitan de sangre para que se maduren sus huevos.

Dependiendo de la especie los hábitos de picadura varían. Por ejemplo: Aedes sp pica en el día, mientras que Anopheles sp su actividad de picadura es en la noche. Después de picar buscan un sitio de reposo ya sea en el interior de la vivienda o fuera de esta.

Taxonomía Orden: Díptera Suborden: Nematocera Superfamilia: Culicoidea Familia: Culicidae Subfamilia: Culicinae- Anophelinae

Género: Anopheles Especies: neivai, albimanus, etc Género: Aedes Especies: aegypti, albopictus .

Género: Culex Especie: quinquefasciatus Diferencias entre Culicinae y Anophelinae Estado • Huevos • Larvas • Posición • Adultos • Posición

Culicinae Puesto en grupo No tienen flotadores Tienen sifón respiratorio Oblicua a las superficie del agua Palpos de las hembras cortos.

Horizontal o paralela a la superficie donde reposa

Anophelinae Puestos de manera separada.

Tienen flotadores No tienen sifón respiratorio Paralela a la superficie del agua Palpos de la hembra largos.

Oblicua o perpendicular a la superficie donde reposa.

Ciclo del mosquito. Aedes aegypti.

4.2 Biología de flebotominos El género Lutzomyia es el único de importancia médica dentro del grupo de Flebotominos, siendo el involucrado en la transmisión de Leishmaniasis.

Son conocidos como jejenes, sus estados preimagales o larvarios son fundamentalmente terrestres de ambientes húmedos, aunque algunos suelen encontrarse en ambientes acuáticos.

El ciclo de vida dura aproximadamente 45 días dependiendo de las condiciones ambientales. Las hembras necesitan tomar sangre para madurar sus huevos, además de sustancias azucaradas como fuente de energía. Los machos solamente se alimentan de sustancias azucaradas.

Huevo: son puestos en materia orgánica. Ponen hasta 70 huevos, son de color negruzco y elongados. La hembra al momento de la

oviposición segrega una sustancia que los adhiere al sustrato. El tiempo de eclosión varía entre 4 a 20 dias.

Larvas: son de color blancuzco, pasan por 4 estados larvales. La del 4 estadío posee una esclerita en forma de silla de montar en el dorso del octavo segmento abdominal. Duran entre 3 a 6 semanas, es decir de 15 a 35 días.

Pupa: dura 8 días.

Adultos: los machos emergen un día antes que las hembras y se alimentan de sustancias azucaradas. Son malos voladores y de poca longevidad. Las Lutzomyias suelen encontrarse cerca de sus criaderos, en cuevas, grietas, bases de los árboles, etc. Las hembras después de emerger de la pupa esta lista para tomar sangre de 1 a 4 días.

Taxonomía Orden: Suborden: Superfamilia: Familia: Subfamilia: Genero:

Díptera Nematocera Psychodoidea Psychodidae Phlebotominae Lutzomyia

4.3 Biología de Triatominos Las poblaciones de Triatominos dependen de los huéspedes. Se encuentran con mayor frecuencia en todas las casas de construcción precaria o incompleta favoreciendo su reproducción y el refugio ideal para subsistir.

Los Triatominos son insectos grandes que necesitan de comidas de sangre considerables. Tanto el macho como la hembra se alimentan de sangre al igual que sus estados ninfales.

Huevos: la ovoposición empieza a los 10 o 20 días después de la primera copula. Cada hembra puede poner entre 100 a 600 huevos durante su vida adulta y puede durar entre 3 a 12 meses según la especie y la cantidad de sangre ingerida. La eclosión de los huevos dura entre 10 a 40 días según la especie y las condiciones de temperatura.

Ninfas: son recién emergidas de color rosado y blandas, pero a medida del tiempo van oscureciendo y endureciendo. Son parecidas al adulto, pero no tienen alas, característica de los insectos que no tienen una metamorfosis completa. Chupan sangre después de 2 o 3 días de la eclosión. Pasan por 5 estadíos ninfales y duran alrededor de 7 meses.

Adulto: tienen un tamaño de 2.5 a 3 cm de largo. Los machos son más pequeños que las hembras. Se alimentan durante la noche, tardan entre 10 a 20 minutos chupando sangre y suelen tomar 2 a 4 veces su propio peso. La ingesta de la sangre provoca la diuresis y los triatominos comienzan a evacuar los restos de su comida de sangre anterior y excretar el exceso de agua de la sangre recién ingerida.

Duran hasta 15 meses.

Taxonomía Orden: Familia: Subfamilia: Géneros:

Hemiptera Reduvidae Triatominae Rhodnius Panstrongylus Triatoma

5. DETERMINACIÓN TAXONÓMICA DE LAS ESPECIES

6. FACTORES DE RIESGO QUE CONDICIONAN LA TRANSMISIÓN

El material entomológico colectado se observa bajo el estereoscopio y microscopio parasitológico. La labor de determinación se hará a nivel de la sección de Entomología, apoyada en las claves, material de referencia y bibliografía especializada. Si existen dudas en su clasificación, se puede remitir al laboratorio de entomología del instituto Nacional de Salud INS para su confirmación.

MALARIA. a) Condiciones Ambientales y Geográficas * Temperatura de 17-24 °C * Humedad relativa mayor del 50% * Pluviosidad hasta de 200 mm/año * Altitud hasta 1.600 m.s.n.m. * Tipo de vegetación como selvas, bosques densos, vertientes y galería b) Condiciones Sociales, Económicas y Culturales

* Migración de susceptibles a zonas endémicas * Desprotección personal * Criaderos cercanos a viviendas o sitios de trabajo * Minería * Conflictos sociales * Inaccesibilidad geográfica, económica y cultural * Creencias y prácticas de la población * Poca participación comunitaria c) Tipos de parásitos y vectores predominantes Plasmodium predominantes: P. falciparum, P. vivax y P. malarie Vectores principales: A. darlingi, A. núñeztovari, A. albimanus y A. punctimacula. d) Desarrollo de Servicios de Salud * Infraestructura ineficiente e inaccesible. * Cambios de políticas de intervención * Bajo desarrollo y gestión técnico-administrativa. e) Problemas Técnicos * Resistencia a los antimaláricos. * Resistencia vectorial a los insecticidas DENGUE- ZIKA- CHIKUNGUNYA a) Factores Ambientales * Latitud: 35° N a 35 °S * Altitud: menor de 1.800 m.s.n.m. * Temperatura Ambiente: 15-40 °C * Humedad Relativa: de moderada a alta. b) Factores Individuales * Sexo y Edad * Grado de inmunidad * Condiciones de salud específicas * Ocupación

c) Factores del agente * Virus circulantes. * Nivel de viremia. d) Factores de los vectores * Abundancia de focos de proliferación de mosquitos * Densidad de hembras adultas * Frecuencia de la alimentación * Preferencia de huéspedes * Susceptibilidad innata a la infección * Periodos inactivos durante el día. e) Factores Sociales * Densidad de la población: de moderada a alta * Factores de asentamiento: urbanización no planificada y densidad de asentamientos altos. * Viviendas desprotegidas. * Almacenamiento de agua mayor de siete días. Ausencia de abastecimiento de agua corriente, disponibilidad intermitente y uso de tambores o tanques destapados. * Recolección inadecuada e inexistente de desechos sólidos, almacenamiento inadecuado de envases, neumáticos desechados y automóviles abandonados. * Estado socioeconómico.

FIEBRE AMARILLA * Ingresar a cualquier región enzoótica sin haber sido inmunizado previamente. Quienes se desplazan en operaciones propias de la fuerza a zonas selváticas tienen mayor riesgo, debido a la exposición cuando pernoctan o permanecen en dichas áreas, ya que los mosquitos se hallan a nivel del suelo. * Los factores que actualmente condicionan la urbanización de la fiebre amarilla, se relacionan con la expansión geográfica y el alto grado de infestación de las zonas urbanas por Aedes aegypti. Un individuo que sale de la selva con viremia puede ser picado por el vector urbano e iniciar la cadena de transmisión al hombre Ae. aegypti - hombre.

* Las migraciones de la población determinan la aparición de asentamientos transitorios de poblaciones no vacunadas en áreas selváticas. * Poblaciones en alto riesgo con niveles bajos de inmunización 7. MEDIDAS DE PREVENCIÓN Un programa de prevención sostenido debe estar enfocado al control rutinario de factores de riesgo del entorno ambiental peridomiciliario, mediante acciones de manejo del medio, con el concurso activo de la comunidad y las instituciones intra e intersectoriales responsables del problema.

Las actividades en las cuales hay que hacer énfasis son: * Acciones de movilización y comunicación social. * Educación sanitaria individual, familiar, comunitaria e institucional para el cambio de conductas de riesgo relacionadas con la limpieza y tapado de los tanques de almacenamiento. * Saneamiento peridomiciliario de la vivienda. * Limpieza de terrenos baldíos. * Reducción y eliminación de criaderos en sitios públicos y establecimientos especiales (escuelas, hospitales, cementerios, parques, cárceles, fuentes de aguas públicas, etc). * Control biológico.

Con las mencionadas se minimiza los diferentes criaderos de vectores.

Por nematodos como Romanomermix culicivorax Por hongos parásitos Enemigos naturales como: hormigas y ácaros que son depredadores de huevos y también por planarias o hidras que son predadoras de larvas.

Por crustáceos como los copépodos.

Por peces dependiendo de las condiciones del agua Este método es comúnmente empleado en algunos lugares del país, involucra el uso de modelos ecológicos depredador-presa, que reducen las poblaciones de larvas, tal es el caso de los peces larvífagos que se introducen en los contenedores de agua.

Por bacterias como Bacilus thurigiensis var. Israeliensis., el cual tiene acción sobre las células del intestino de los insectos, ya que sus toxinas se unen a receptores específicos dentro del intestino de la larva y forman poros que conducen a la destrucción de estas células y a la muerte de los insectos.

Ambiental- Físico

8. TIPOS DE CONTROL Biológico.

Detección e identificación oportuna del vector a través de la inspección de los depósitos de agua.

Destrucción de su hábitat a través del drenaje de aguas estancadas, o el relleno de estas.

Recolección de inservibles o elementos que sirvan de depósito de

aguas, que son los criaderos de estos mosquitos.

Vigilancia permanente en la vivienda realizando un manejo adecuado de los depósitos de agua.

Se refiere a evitar la existencia de criaderos en el entorno donde vivimos o donde desarrollamos alguna actividad, necesitamos reforzar la higiene y realizar acciones como lavar, tapar, voltear, tirar, eliminar, cubrir, proteger bajo techo y evitar el almacenamiento de agua en todos los recipientes que sean capaces de criar larvas de mosquitos.

Químico

trabajar y el tipo de muestreo que se debe emplear para la captura de ejemplares.

En el programa de ETV, las muestras del material entomológico permiten obtener información sobre los diferentes aspectos relacionados con la transmisión de enfermedades en una región o localidad.

Por tal razón las técnicas de muestreo entomológico se utilizan para: determinar las especies de insectos existentes en una localidad, densidad poblacional, variaciones y abundancias estacionales, habitats, grados de endofílias y exofília, endofagías y exofagías(o sea que tanto reposan y se alimentan dentro o fuera de la vivienda), sus preferencias de alimentación según hospedados humano o animal, infección de los vectores con microorganismos que causan la enfermedad y su capacidad de transmisión, eficacia de métodos de control, nivel de resistencia o susceptibilidad a insecticidas y otros.

• Técnica para recolección de huevos de mosquitos: se utiliza una red fina, bandejas esmaltadas, cucharones esmaltados, raspadores y el método de lavado o el de extracción.

Si la infestación del vector es muy alta y los otros métodos no han sido efectivos se procede al control químico. La aplicación se efectúa en recipientes con larvas como una medida preventiva básica de manera periódica controlada y en situaciones de emergencia o brotes.

A nivel Larvario: aplicación de larvicida como: Abate, Vectobac, Griselef. Dimilin.

A nivel de adultos: se utilizan cuando se presentan epidemias o casos positivos. Entre ellos: Malathion, K-otrina, Sumithion, Pirilan, etc.

9. TÉCNICAS DE MUESTREO ENTOMOLOGICA DE VECTORES

PARA

LA

VIGILANCIA

Cuando se quiere estudiar la ecología y biología de un determinado grupo de insectos o especie se debe conocer su ciclo biológico para determinar el o los estados del ciclo de vida con los que se requiere

• Técnica para recolección de larvas de mosquitos: con este método de muestreo se identifica las especies, densidad larvaria, estudios de susceptibilidad de insecticidas. Los equipos utilizados para esta técnica son: cucharón, redes acuáticas, pipetas de succión, goteros o pipetas de boca estrecha, bandejas esmaltadas.

• Técnicas de recolección de adultos: se realizan por diferentes métodos

Captura manual

Aspirador manual Aspirador eléctrico Jama o mariposero o red para mosquitos Captura con Se utilizan el hombre y animales, la desventaja cebos de este método es que solo captura hembras por que son las únicas que necesitan sangre para madurar su huevos.

Productos químicos como atrayentes para los insectos, permiten capturar tanto hembras como machos.

Captura en Se debe realizar dentro o alrededor de la reposo vivienda por un periodo de tiempo y se debe registrar el número de ejemplares capturados por sitio.

Trampas de luz Son atrayentes para los insectos. Las más utilizadas son las tipo CDC y la Shannon Trampas adhesivas

Se utilizan para determinar hábitos de reposo con respecto al domicilio (intra, peri y extra domicilio)

• Velocidad del viento: cuando la velocidad del viento sobrepasa los 9 Km/h los insectos tienden a permanecer en sus refugios.

• Localización de las trampas: la adecuada localización incide en el éxito de las capturas. Las trampas de luz deben ser colocadas en lugares donde la fuente luminosa sea visible y no quede oculta por la vegetación o compitiendo con otras fuentes luminosas. Y las trampas adhesivas deben ser colocadas en lugares poco iluminados y sin corrientes de aire que son los preferidos por los insectos como sitios de refugio o de reposo.

11. PROCEDIMIENTO PARA CAPTURA, EMPAQUE Y REMISION DE MATERIAL ENTOMOLOGICO La manipulación inadecuada de los insectos en sus estados inmaduros y adultos en el proceso de captura, muerte y empaque, trae como consecuencia la perdida de estructuras indispensables para la correcta taxonomía de una especie. Así mismo si durante el proceso de rotulación del material, se omiten datos biológicos, cronológicos y de métodos usados para la obtención del material, se disminuye la posibilidad de tener un acercamiento mayor a los hábitos y aquellas características ecológicas, geográficas y temporales que se relacionan con una especie determinada.

10. FACTORES QUE INFLUYEN EN LA CAPTURA DE LOS INSECTOS • Temperatura: afecta entre < 20ºC y > 28ºC la densidad de insectos capturados.

• Humedad Relativa (HR): LA HR promedia de 70-80 presenta una buena diversidad de especies. A diferencia de las localidades con HR por debajo 50% donde la diversidad es baja.

• La Luna: tanto la Luna Llena como la Nueva puede disminuir el número de insectos atraídos por las trampas de luz.

CAPTURA, EMPAQUE Y REMISION DE MOSQUITOS VECTORES • Recolección, empaque y envió de larvas de Mosquitos.

Las larvas se recolectan de los criaderos, utilizando cucharones esmaltados blancos y luego goteros de plástico con punta roma para

extraerlos y empacarlas. Se deben recolectar larvas de tercer estadío puesto que las de primer y segundo estadío son difíciles de identificar. Para su empaque se utilizan cárpulas que son tubos de plástico que guardan la anestesia en odontología y se empacan un máximo de 5 larvas en alcohol.

Posteriormente se procede a rotular o marcar la crápula con un pequeño papel de 2x3 escrito en lápiz con la siguiente información: nombre del municipio, corregimiento o vereda, tipo de depósito o criadero, sitio de recolección o dirección, fecha y nombre del recolector y cargo. Los datos deben quedar hacia fuera, de tal manera que se puedan leer sin necesidad de abrir la cárpula.

• Captura, empaque y envió de Mosquitos adultos.

La captura: para esta se necesita un equipo como los capturadores o aspiradores manuales, mallas, redes, tubos, frascos para matar los mosquitos, linternas, cajas plásticas, papel higiénico o papel toalla, cloroformo o humo de cigarrillo o congelación para matar los mosquitos.

El recipiente donde se encuentran los mosquitos debe ir rotulado con los siguientes datos: lugar de recolección, fecha de recolección, método de captura, (picando al hombre, cebo animal, reposo, etc), sitio donde se recolecto (intra o peridomicilio, bosque, caverna, etc), hora de recolección, nombre del recolector y cargo.

Empaque y envió: esta actividad debe realizarse al final del trabajo, ya sea en la casa de captura, en el laboratorio, oficina o en otro lugar, se pueden empacar con calma y sin corrientes de aire. Se deben empacar en cajas plásticas o metálicas de la siguiente manera: se coloca dentro de la caja una capa delgada de algodón, luego sobre el algodón dos capas de papel higiénico o papel toalla recortados del mismo tamaño de la caja, luego sacar los mosquitos muertos del recipiente con unas pinzas delgadas y se colocan encima del papel en forma de camada, dejando espacio suficientes entre ellos, para que no hagan contacto. Luego se procede a colocar sobre los mosquitos 2 capas de papel higiénico o papel toalla recortada de la misma forma, por último una capa delgada de algodón, se tapa la

caja y se rotula con los datos necesarios.

• Captura, empaque y remisión de Lutzomyias Captura: el sistema de captura es de manera manual similar al de los mosquitos y se pueden acumular hasta 20 ejemplares en el capturador tapándolos cada vez que se recolecte una Lutzomyia.

Empaque y envió: una vez capturados se pasan a un vaso o recipientes con malla y se coloca un algodón impregnado con éter o cloroformo, luego se depositan sobre una superficie blanca y con la ayuda de un pincel humedecido con alcohol se pasan a un tubo o carpula que contenga alcohol al 70%. Cada tubo debe ir rotulado con la información necesaria, antes mencionada.

• Captura, empaque y remisión de triatominos En caso que los insectos se recojan muertos, se debe aplicar la misma metodología de empaque, envió y rotulación de la muestra. Los insectos capturados vivos deben manipularse con pinzas y empacarlos en frascos de boca ancha, los cuales en el fondo deben llevar un trozo de papel absorbente y en el interior un trozo de papel cartulina doblado en forma de acordeón que llegue hasta la parte superior del frasco y al cual previamente se han hecho algunos orificios para que los insectos puedan circular dentro del recipiente y adherirse fácilmente a la superficie, luego se tapan con tull muy fino y una banda plástica o la tapa del tarro agujereada. Cada recipiente debe ir rotulado 12. REGISTROS PARA LA RECOLECCIÓN DE LA INFORMACIÓN ENTOMOLÓGICA Los instrumentos básicos que se deben utilizar para la recolección de la información para el análisis y la toma de decisiones son los siguientes que se encuentran en el Sistema de Gestión de calidad de la UESVALLE de manera digital a través de la App ETVUES o físicos: * Registro de vigilancia y control de estados inmaduros de Aedes spp.

En viviendas

* Estados inmaduros mosquitos sumideros vía pública. * Registro diario Aedes spp concentraciones humanas * Vigilancia y control de artrópodos vectores y de interés en salud publica en sitios de concentración humana * Estudio de caso epidemiológico de ETV * Supervisión del personal auxiliar del programa de ETV * Registro diario de aplicación de insecticidas ULV equipo pesado. * Registro diario de aplicación de insecticidas ulv equipo mochila. * Registro de vigilancia y control de estados inmaduros de Aedes spp. * Registro de caracterización de criaderos de Anopheles. * Censo e instalación de toldillos * Encuesta de monitoreo y evaluación uso toldillos insecticidas Tild en áreas transmisión ETV Los instrumentos anteriores se diseñaron a partir del equipo del proceso misional de ETV con base a lineamientos por el Instituto Nacional de Salud- INS. Y en la página de la www.uesvalle.gov.co en el proceso misional ETV están los formatos, instructivos y guías de los mismos.

13. RECONOCIMIENTO GEOGRAFICO Es una herramienta importante para levantar y/o actualizar los mapas o croquis de una localidad en búsqueda de uno de los vectores. La numeración y códigos de las viviendas. Actualmente se está utilizando la App ETV UES que registra la ubicación GPS de las visitas realizadas en los municipios dando sus coordenadas

14. INDICADORES LARVARIOS • Índice de Larvas Vivienda: se calcula por el porcentaje de casas examinadas q tengan larvas de Aedes aegypti.

I.I.V = N° Viviendas positivas / N° viviendas inspeccionadas x 100 • Índice de depósito: es el porcentaje de depósitos con agua con presencia de larvas o pupas I.I.D = N° Depósitos positivos / N° depósitos inspeccionados x 100 • Índice de Breteau: se calcula partiendo del número total de depósitos con larvas de Aedes aegypti por cada 100 casas es un número absoluto, no es el porcentaje I.I.B = N° Depósitos positivos / N° viviendas inspeccionadas x 100 15. EDUCACIÓN SANITARIA El conocimiento de las especies vectoras, así como el peligro para la salud que aquellas representan, tienen papel muy importante en cualquier forma de control. * Crear un conocimiento público de la enfermedad o enfermedades reportadas para la región y sobre el rol de los vectores. * Alentar la cooperación comunitaria y su apropiada participación en las medidas de control dirigidas contra los vectores. * Promover la protección y mejoramiento de las viviendas por parte de los mismos moradores con la intención de disminuir las probabilidades de ingreso de las especies a las viviendas. * Alentar a los miembros de la comunidad para que eliminen las fuentes domésticas o peridomésticas y otras potenciales donde pudieran surgir infestaciones.

* Promover en la comunidad el cambio de actitud de exposición a los vectores sin ningún tipo de protección. * Realizar la transformación de criaderos con la participación comunitaria beneficiando los territorios

BIBLIOGRAFIA • Davies, R, G. Introducción a la Entomología. 1991. Ediciones mundo prensa • Harwood R F Y James M T. Entomología Medica y Veterinaria. 1987.

Editorial Limusa.

• Botero. David Y Restrepo Marcos. Parasitosis Humanas. 2005. CIB. Centro para Investigaciones Biológicas. Fondo editorial CIB. • CIDEIM. Manual de Entomología Médica para Investigadores de América Latina. 1994.

• Ministerio de Salud. Control de Insectos Vectores de Importancia en Salud Pública. Directrices Nacionales. 2000.

• Estrategia de Gestión Integrada para la promoción de la salud, prevención y control de las Enfermedades Transmitidas por Vectores en Colombia. 2012-2021. Ministerio de Salud y Protección Social.

Marzo 2013.

• Larsen, 2004. Organización Panamericana de la Salud.

• Guía de acciones municipales para la prevención y control de las enfermedades transmitidas por vectores. 2014. Secretaria de Salud Veracruz. México.

• Manual de prevención y control de las ETV.2007. Sanidad Militar.

Fuerzas militares de Colombia.

• Ley 1801 de 2016. Código Nacional de Policía y Convivencia.

• 2020. Lineamiento para la asignación y ejecución de transferencias nacionales de funcionamiento 2019 y otras consideraciones para la operación del programa de enfermedades transmitidas por vectores - ETV y zoonosis.

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