Manual de cultivo de Hongos Ostra (Pleurotus ostreatus)

Hongos ostra (Pleurotus (Pleurotus ostreatus) ostreatus) Por Andrés Guerrero

ÍNDICE Introducción Cultivo de Pleurotus ostreatus Producción

o

compra

spawn Sustrato Preparación del sustrato Alternativas para el sustrato

Inoculación Incubación Fructificación Cosecha

del

Introudcción

Pleurotus

es

un

género

perteneciente

al

phylum

Basidiomycota, presenta un característico basidiocarpo o píleo (sombrero) en forma de ostra, tallos excéntricos y

la

capacidad

de

secretar

enzimas

lignocelulolíticas.

especies

y

variedades

una

gran

variedad

Aproximadamente

de

Pleurotus

se

de 20

cultivan

comercialmente en una amplia variedad de sustratos utilizando

tecnologías

(Buchanan,

1993).

comúnmente consumido

Pleurotus

como

sobre

ligeramente

hongo

todo

en

ostreatus

ostra,

el

diferentes

es

sudeste

conocido

cultivado

asiático,

y

India,

‐

África y Europa (Mandeel, Al Laith y Mohamed, 2005).

Este hongo posee características culinarias atractivas, como un alto contenido en fibra y bajo contenido en grasa. Sin embargo, el contenido de proteína es muy pequeño Además presenta

en del

comparación valor

nutricional,

propiedades

antimicrobianas,

con

la

proteína

este

hongo

antioxidantes,

antitumorales,

1

también

antivirales,

hepatoprotectoras,

entre otras (Patel, Naraian y Singh, 2012).

CULTIVO

animal.

HONGOS

Fig 1. Hongos Ostra (Pleurotus ostreatus)

Fig 2. Hongo ostra cosechado

CULTIVO

2

HONGOS

Cultivo de Pleurotus ostreatus

Las especies del género Pleurotus son las segundas más cultivadas del mundo, luego de Agaricus bisporus. A pesar de que su cultivo no se inició hasta finales del siglo XX, éste género representa aproximadamente el 27% de la producción mundial (Sánchez y Royse, 2001).

El cultivo de este hongo empezó crecer en los años 70 en América del Norte y en Europa central, donde se hizo

evidente

condiciones

que

los

hongos

podían

controladas

sobre

lignocelulósicos (Muez y Pardo, 2001).

Fig 3. Norte América y Europa central

Fig 4. Sustratos lignocelulósicos

CULTIVO

3

cultivarse

HONGOS

bajo

sustratos

Pleurotus

ostreatus

suele

considerarse

uno

de

los

hongos más fáciles y rentables de cultivar a diferentes escalas comerciales y experimentales. El cultivo de esta especie

comienza

con

la

producción

o

compra

de

semillas, continúa con la preparación del sustrato, la inoculación, la incubación, la formación de primordios, el

desarrollo

de

los

hongos

y

se

completa

recolección de los cuerpos fructíferos maduros.

Notas sobre el cultivo en interiores Preparación

del

medio:

Pasteurizar

el

sustrato

lignocelulósico elegido en agua caliente durante una a

cuatro

horas.

Escurrir

el

agua,

dejar

enfriar

e

cereales

o

inocular.

Tipo

preferido

aserrín

de

de

granos;

spawn: el

uso

Granos de

de

granos

como

spawn

permite una fructificación más rápida y con mayores rendimientos.

Tiempo de inoculación a fructificación: Entre tres y cinco semanas, dependiendo de la temperatura y el tipo de semilla utilizada.

Rendimientos

esperados:

Alto.

Entre

tres

y

cuatro

brotes rápidos con varias semanas de diferencia.

(Cotter, 2014).

CULTIVO

4

HONGOS

con

la

Producción o compra del spawn

En

todo

el

ostreatus.

mundo

Existen

se

cultivan

diferentes

varias

formas

cepas

de

de

P.

ponerlas

a

disposición de los cultivadores:

Aislamiento de tejidos Aislamiento de esporas Compra de cultivos a proveedores especializados Compra de semillas inoculadas

El término spawn es utilizado para describir al micelio que ha crecido en granos u otros sustratos que serán utilizados como inóculo en la producción de hongos.

Existen

diversos

spawns. Sin

protocolos

embargo,

para

comparten

la

preparación

dos

pasos

de

críticos:

Hidratación del grano y esterilización. El grano debe ser sumergido en agua durante 24 horas para asgurar una buena hidratación. En el caso de manejarse un volumen pequeño, el grano puede hervirse en agua durante 15 minutos

para

asegurar

la

hidratación.

El

objetivo

es

asegurar que el contenido de humedad del grano sea aproximadamente el 55% (Guzmán et al., 1983). Para no tener

contaminaciones

microbianas

evitar aplastar el grano.

CULTIVO

5

HONGOS

es

importante

Fig 5. Hidratación del grano

Fig

6.

Esterilización

del

grano

autoclave

Fig 7. Inoculación del grano

Fig 8. Incubación del grano en oscuridad

CULTIVO

6

HONGOS

en

Después

de

la

etapa

de

hidratación

el

grano

debe

esterilizarse en un autoclave a 121°C, 1.5 ATM durante 45

minutos.

temperatura agar

Luego

el

ambiente

colonizado

con

grano e

el

debe

inocularse micelio

ser con

de

P.

enfriado

a

pedazos

de

ostreatus.

La

incubación del grano debe realizarse en la oscuridad entre

20-30°C

después

de

la

(Guzmán

et

inoculación

al.,

es

1983).

Una

importante

semana

sacudir

el

frasco con el grano inoculado con el fin de redistribuir el

grano

colonizado

a

otros

puntos

para

que

se

colonicen los granos restantes. La inoculación total del grano

tardará

aproximadamente

dos

semanas

más.

Luego de este tiempo el grano está listo para inocular el sustrato para la producción de Pleurotus ostreatus o para la producción en masa de spawn.

Fig 9. Spawn

CULTIVO

7

HONGOS

Sustrato

Para

seleccionar

el

sustrato

es

importante

tener

en

cuenta la disponibilidad y la abundancia del mismo.

Asimismo, es importante tener en cuenta el precio de la materia prima escogida.

Existe

una

gran

variedad

de

sustratos

que

pueden

utilizarse para el cultivo de hongos, algunos de estos son las pajas de cebada, trigo, centeno, avena, entre otros.

Preparación del sustrato En el caso de utilizar pajas, estas deben ser cortadas en

trozos

de

5

cm,

esto

permite

la

retención

de

humedad y que las bolsas no se rompan en la etapa de inoculación. Para utilizar el sustrato en el cultivo de hongos

ostra

es

necesario

aplicar

un

proceso

de

Pasteurización para disminuir la microbiota presente en el

medio

y

evitar

que

exista

una

competencia

por

nutrientes y espacio. De esta manera se logra preparar al sustrato para un eficaz desarrollo de Pleurotus. Se pueden aplicar dos distintos métodos: 1. Pasteurización a vapor 2. Pasteurización por inmersión de agua El segundo método es el más accesible. Consiste en sumergir

el

sustrato

previamente

introducido

en

malla en agua caliente (80-90°C) durante 4 horas.

CULTIVO

8

HONGOS

una

Una

vez

acabado

el

proceso

de

Pasteurización

es

importante dejar enfriar el sustrato para que se puede realizar

la

siembra

con

la

semilla

(spawn).

Para

asegurar un buen cultivo se puede adicionar yeso y cal al sustrato y mezclarlo, esto regulará el pH del medio.

Alternativas para el sustrato En las regiones tropicales o subtropicales

se puede

hacer uso de sustratos fermentados para la producción de P. ostreatus en operaciones a pequeña escala y de bajo

costo

(Zied

y

Pardo,

2017).

La

fermentación

aeróbica de las materia primas es necesaria cuando se utilizan

sustratos

frescos

ricos

en

azúcares,

como

la

pulpa de café, bagazo de caña de azúcar o tallos de plátano,

entre

desventajas

de

probabilidad motivo,

se

otros.

de

utilizar

embargo,

estos

contaminación

deben

fisicoquímicas

Sin

tomar

que

en

podrían

sustratos

cuenta evitar

las

la

Fig 10. Pulpa de café

9

es

bacteriana.

(Zied y Pardo, 2017).

CULTIVO

una

HONGOS

de

las

la

alta

Por

este

propiedades

contaminación

Fig 11. Pajas

Fig 12. Pasteurización por inmersión

Fig 13. Sustrato mezclado con cal y yeso

CULTIVO

10

HONGOS

Inoculación

Realizar el aseo del área de trabajo con alcohol al 70%.

Asegurarse de que el sustrato esté hidratado (70-90% de humedad) y mezclado muy bien con el yeso y la cal.

La inoculación del sustrato puede hacerse simplemente mezclando el spawn con el sustrato en una proporción del 2 al 5% (peso húmedo) a medida que se llena la bolsa (Zied y Pardo, 2017). Otro método de inoculación consiste

en

llenar

la

bolsa

con

capas

de

sustrato

y

capas alternas de semillas hasta que la bolsa esté casi llena

(Zied

y

Pardo,

2017).

Las

bolsas

se

cierra

simplemente haciendo un nudo o colocando una liga.

La bolsa debe atarse o sellarse lo más cerca posible del sustrato para minimizar el espacio por encima, evitando la formación de hongos en la parte superior del sustrato y la pérdida de humedad.

Fig 14. Inoculación por capas

CULTIVO

11

HONGOS

Fig 15. Sustrato inoculado por capas

Fig 16. Sutrato parcialmente colonizado por P. ostreatus

CULTIVO

12

HONGOS

Incubación

Esta fase se realiza de 20-30°C en completa oscuridad (Zied y Pardo, 2017). La bolsa inoculada pasa un área totalmente oscura y abrigada. Se puede utilizar una caja

para

proveer

colonización. inoculación,

las

Cuatro se

o

condiciones cinco

realizan

días

varios

óptimas

después

cortes

de

de la

pequeños

uniformemente con un bisturí esterilizado, una aguja de jeringa o una navaja para permitir el intercambio de gases. El tiempo de incubación puede variar, entre 1520 días, dependiendo de la cepa de P. ostreatus.

La

colonización

micelio

ha

completa

crecido

y

ha

se

consigue

cubierto

cuando

completamente

el el

sustrato y una capa compacta de micelio blanco es visible

a

través

de

la

bolsa.

Durante

la

etapa

de

incubación, la bolsa debe ser vigilada de cerca para detectar

la

contaminación

por

moho.

Los

signos

de

contaminación por moho o bacterias podrían indicar que la pasteurización fue inadecuada o que el spawn utilizado estaba contaminado(Guzmán et al., 1983).

CULTIVO

13

HONGOS

Fig 17.Sustrato completamente colonizado

Fig 18. Brote de primordio (día 1)

Fig 19. Desarrollo de basidiomatas (día 2)

CULTIVO

14

HONGOS

Fructificación

Cuando

el

micelio

completamente

el

haya

sustrato

crecido

y

se

y

observe

cubierto una

capa

compacta de micelio blanco se deben llevar las fundas a un lugar que ofrezca una ventilación moderada e iluminación

difusa.

Es

importante

realizar

cortes

de

unos 2 cm en la funda evitando cortar el micelio. Se deberá rociar agua a la funda entre 4-5 veces al día para

inducir

la

formación

de

primordios.

Las

concentraciones de CO2 superiores a 700 ppm dan lugar a estipes alargados, píleo pequeños o la ausencia total de hongos (Sánchez y Royse, 2001).

Los

primordios

son

las

estructuras

que

conducen

desarrollo de los cuerpos fructíferos (basidiomatas).

al La

inducción de los primordios se realiza cambiando las condiciones ambientales. La temperatura de la sala se reduce a 12-22°C, la humedad relativa se aumenta al 85-90% y se aplica un ciclo de luz (Guzmán et al., 1983).

CULTIVO

15

HONGOS

Fig 19. Cuerpos fructíferos en desarrollo (día 3)

Fig

20.

(día 4)

Fig 21. Cuerpos fructíferos en desarrollo (día 5)

CULTIVO

16

HONGOS

Cuerpos

fructíferos

en

desarrollo

Cosecha

Los cuerpos fructíferos (basidiomatas) se desarrollarán en

aproximadamente

cinco

días

luego

del

brote

de

primordios. Los racimos de cuerpos fructíferos se retiran con

un

cuchillo

o

eliminar

cuidadosa

(Cotter,

2014).

Si

girando y se

el

racimo,

completamente dejan

trozos

es

importante

todo

de

el

estipe

estípite

aún

adheridos al sustrato, aumentan las posibilidades de que se desarrollen mohos o bacterias.

Se

pueden

obtener

múltiples

brotes

por

bolsa

de

sustrato, siendo el primer brote el más productivo. A nivel comercial, se suelen cosechar tres brotes antes de desechar el sustrato (Zied y Pardo, 2017).

CULTIVO

17

HONGOS

Fig

22.

Cuerpos

fructíferos

en

desarrollo

Fig

(día 6)

Fig

24.

23.

Cuerpos

fructíferos

en

desarrollo

(día 7)

Cuerpos

fructíferos

listos

para

Fig 25. Racimo de basidiomatas cosechado

cosechar

CULTIVO

18

HONGOS

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