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Shotapen Bovinos

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Otras indicaciones de Shotapen® L.A. Uso de Shotapen® L.A. en mastitis • El tratamiento sistémico está recomendado en la mastitis clínica, especialmente la causada por Staphylococcus aureus, y en diversos casos de mastitis ocasionada por coliformes, preferentemente en combinación con un tratamiento intramamario. 12

La eficacia de Shotapen® L.A. se debe a: El efecto bactericida concentración – dependiente de la dihidrostreptomicina, la cual reduce el riesgo de una diseminación de infección por Escherichia coli. El pKa de la penicilina (2,8), el cual incrementa su difusión en la leche de animales con mastitis. Gracias a esta propiedad química, las concentraciones terapéuticas pueden llegar a la leche (13,14,15). La eficacia del tratamiento sistémico con penicilina ha sido comprobado en pruebas clínicas (16,17,18).

Uso de Shotapen® L.A. en gabarro •Fusobacterium necrophorum es altamente sensible a la penicilina (CMI<0,06 UI)19. •La dihidroestreptomicina aumenta el espectro de actividad hacia otros patógenos frecuentemente asociados (Actinomyces pyogenes, E. coli, Staphylococcus aureus). La sinergia entre los dos antibióticos, permite la reducción de las CMI, consecuentemente, un efecto bactericida mayor, en comparación con el uso de ambas penicilinas por separado. •El efecto de “larga acción” de Shotapen® L.A. evita que haya inyecciones repetitivas.

Uso post-quirúrgico de Shotapen L.A. Shotapen L.A. proporciona una excelente protección contra complicaciones sépticas gracias a: La combinación entre penicilina y dihidroestreptomicina (espectro prolongado y decremento en las CMI, debido a la sinergia entre estos activos). Su larga acción: 1 inyección para 3 días de acción. ®

Otras indicaciones de Shotapen® L.A. Aunque de forma menos frecuente, estas son algunas enfermedades que pueden ser tratadas con Shotapen® L.A. de forma exitosa: Leptospirosis Actinomycosis (“tumor maxilar” causado por Actinomyces bovis) Onfaloflebitis en becerros Efecto del pH de la leche sobre la distribución de la penicilina. 20% 80%

60%

28% 72%

40%

50% 50%

Leche

20% 0

6,4

6,6

6,8

7

7,2

(4) PERSON J.M. Aspects microbiologiques des associations d’antibiotiques. Recueil de Médecine Vétérinaire 1983 159 (6) 543-548. (5) GANIERE J.P. Cinétique de bactéricidie in vitro de l’association pénicilline-dihydrostreptomycine vis-à-vis de bactéries responsables d’infections respiratoires bovines : seconde partie. Rapport du 16 septembre 1995. (6) STÖHR K. et al. Animal use of antimicrobials : impact on resistance. Drug Resistance Updates (2000) 3, 207-209. (7) HENRY H. et al. Intérêt d’une spécialité injectable associant benzylpénicilline et dihydrostreptomycine dans le traitement en 1ère intention des BPIE des jeunes bovins. Journées Nationales des Groupements Techniques Vétérinaires. 21-23 Mai 1997 - Vichy.

(9) MONTES A.J. et al. Clinical approach to postpartum metritis. Comp Contin Educ Pract Vet 1993;15:1131-1137. (10) SMITH B.I. et al. Therapeutic and management options for postpartum metritis in dairy cattle. Comp Contin Educ Pract Vet 2002;24:S92-S100. (11) PETERS A.R. et al. Retained membranes and uterine infections of cows: a review. Theriogenology 1986;25:353-381. (12) BARKEMA H. et al. Invited review: the role of cow, pathogen, and treatment regimen in the therapeutic success of bovine Staphylococcus aureus mastitis. J Dairy Sci 89, 1877-1895. (13) FRANKLIN A. et al. Effect of procaine benzylpenicillin alone or in combination with dihydrostreptomycin on udder pathogens in vitro and in experimentally infected bovine udders. Am J Vet Res 45, 1398-1402. (14) FRANKLIN A. et al. Concentrations of penicillin, streptomycin, and spiramycin in bovine udder tissue liquids. Am J Vet Res 47, 804-807. (15) ZIV G. et al. Intramuscular treatment of subclinical staphylococcal mastitis in lactating cows with penicillin G, methicillin and their esters. J vet Pharmacol Therap 8, 276-283. (16) JARP J. et al. Clinical trial of three therapeutic regimens for bovine mastitis. Vet Rec 124, 630-634. (17) WAAGE S. Comparison of two regimens for the treatment of clinical bovine mastitis caused by bacteria sensitive to penicillin. Vet Rec 141, 616-620.

Sangre 39% 61%

(2) DAVIS B.D. Bactericidal synergism between -lactams and aminoglycosides: mechanism and possible therapeutic implications. Reviews of infectious diseases. Vol. 4, n° 2. MarchApril 1982.

(8) OVERTON M. et al. Economics of Postpartum Uterine Health. Dairy Cattle Reproduction Council Convention. November 7-8, 2008, Omaha, Nebraska.

®

14% 86%

(1) FONTAINE M. et al. Vade-mecum du Vétérinaire, 16ème Edition. Vigot.

(3) KECK G. Anti-infectieux broncho-pulmonaires. Le Point Vétérinaire, Vol. 7, n° 34. Juillet-Août 1978.

(necrobacilosis interdigital y pododermatitis necrótica)

Concentración de penicilina 100% 9% 91% 80%

Bibliografía

7,4

pH de la leche

(18) PYÖRÄLÄ et al. Efficacy of parenteral administration of three antimicrobial agents in treatment of clinical mastitis in lactating cows: 487 cases (1989-1995). J Am Vet Med Assoc 212, 407-412. (19) BERG J.N. et al. Studies of Fusobacterium necrophorum from bovine hepatic abscesses: biotypes, quantitation, virulence, and antibiotic susceptibility. Am J Vet Res. 1982 Sep;43(9):1580-6.


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