Мир Ветеринарии №3 2015 by Taras Temchencko

СОДЕРЖАНИЕ 4

Пластическая хирургия ЛЕЧЕНИЕ ПАЦИЕНТОВ С ТЕРМИЧЕСКИМИ ОЖОГАМИ. ХИРУРГИЧЕСКИЙ ПОДХОД

Эпизоотология ПАРВОВИРОЗ СОБАК – НОВЫЙ-СТАРЫЙ ВРАГ

Эндокринология ТОПИЧЕСКАЯ ДИАГНОСТИКА ПРИ ГИПЕРАДРЕНОКОРТИЦИЗМЕ (СИНДРОМЕ КУШИНГА)

Онкология НОВООБРАЗОВАНИЯ ГОРТАНИ У КОШЕК: ОБЗОР 13 СЛУЧАЕВ

Визуальная диагностика ВЫВИХ КОЛЕННОЙ ЧАШЕЧКИ У СОБАК И КОШЕК: ОСОБЕННОСТИ ВИЗУАЛЬНОЙ ДИАГНОСТИКИ

Клинический случай SEVC ДИАГНОСТИКА ЛИСТОВИДНОЙ ПУЗЫРЧАТКИ

Хирургия / Клинический случай КЛИНИЧЕСКИЙ СЛУЧАЙ УДАЛЕНИЯ НОВООБРАЗОВАНИЯ В НОСОВОЙ ПАЗУХЕ У КОШКИ С САХАРНЫМ ДИАБЕТОМ

Лабораторная диагностика ОБЕСПЕЧЕНИЕ КАЧЕСТВА ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Знаменательная дата 15 ЛЕТ «АЛДЕН-ВЕТ»

Офтальмология КОРНЕАЛЬНЫЙ СЕКВЕСТР

Паразитология ТОКСОПЛАЗМОЗ. РЕАЛЬНОСТЬ И ПРЕДУБЕЖДЕНИЯ

ОПЫТ ЛЕЧЕНИЯ И ПРОФИЛАКТИКИ ДИРОФИЛЯРИОЗА

Болезни диких и экзотических животных ПОРАЖЕНИЯ КОЖИ У РЕПТИЛИЙ РАЗЛИЧНОЙ ЭТИОЛОГИИ

Вертебрология / Неврология ОСНОВНЫЕ МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ МЕЖПОЗВОНКОВЫХ ГРЫЖ У СОБАК

61 Ветеринарное образование СПИКЕР-ТУР С НАТАЛЬЕЙ ИГНАТЕНКО

ПОСТ-РЕЛИЗ ВТОРОЙ ВЕТЕРИНАРНОЙ КОНФЕРЕНЦИИ ПОД ЭГИДОЙ ЦВП «ЭЛИТВЕТ»

№3 май-июнь 2015

www.veterinars.com

Науково-практичний журнал для фахівців ветеринарної медицини «Мир ветеринарии» №3 (24), 2015 р. Редакція: ГОЛОВНИЙ РЕДАКТОР Титаренко Андрій, кандидат ветеринарних наук editor@mirvet.com.ua тел.: 098 477 03 33 ЛIТРЕДАКТОР Щербакова Наталя ДИЗАЙН ТА ВЕРСТКА Темченко Тарас ВIДДIЛ РЕКЛАМИ Тюха Олександра aldenvet.pr@gmail.com тел.: (044) 236 68 43 ВIДДIЛ РОЗПОВСЮДЖЕННЯ Адамюк Олександр podpiska@mirvet.com.ua ПЕРIОДИЧНIСТЬ ВИХОДУ 6 номерів на рік ПЕРЕДПЛАТНИЙ IНДЕКС ДП «Преса» 89045 Журнал надруковано в типографії «Виасат» 01103, Україна, м. Київ, вул. Кіквідзе, 12а Тираж 5000 екз.

Мета видання Поширення сучасної інформації з актуальних питань і досягнень ветеринарної науки та практики. Це стосується всіх без виключення сфер ветеринарної медицини: профілактики та діагностики хвороб різної етіології; надання лікувальної допомоги домашнім, диким та екзотичним тваринам; уведення в клінічну ветеринарну практику нових технологій, обладнання, методів і результатів досліджень; організації та управління ветеринарним бізнесом тощо.

Редакційна колегія журналу: • доктор біологічних наук, професор, академік НААН України М. І. Цвіліховський • доктор ветеринарних наук, професор, академік АН ВО України Н. М. Сорока • доктор ветеринарних наук, професор М. П. Прус • доктор ветеринарних наук, професор В. Б. Духницький • доктор ветеринарних наук, професор, заслужений працівник ветеринарної медицини України О. Ф. Петренко • доктор біологічних наук, професор В. В. Фролов • доктор сільськогосподарських наук, професор В. І. Шеремета • доктор сільськогосподарських наук, професор І. А. Іонов • кандидат ветеринарних наук, доцент В. М. Лакатош • кандидат ветеринарних наук, доцент Д. В. Бережний • кандидат ветеринарних наук, доцент А. А. Марунчин • кандидат ветеринарних наук, асистент Н. І. Шестяєва • кандидат біологічних наук Є. О. Корнюшенков • доктор біологічних наук М. М. Якуніна

Підписано до друку: 05.06.2015 р. Журнал «Мир ветеринарии» зареєстровано в Міністерстві юстиції України. Свідоцтво про державну реєстрацію друкованого засобу масової інформації серія КВ №17427-6177Р від 04.02.2011 р.

Шановні колеги, запрошуємо всіх бажаючих та зацікавлених осіб до співпраці з журналом, пропонуємо ділитися на його сторінках досвідом, знаннями, ідеями, досягненнями, висловлювати думки та ставити запитання. Тільки спільними зусиллями «Мир ветеринарии» стане надійним джерелом актуальних знань, сприятиме подоланню фахового інформаційного дефіциту та зробить вагомий внесок у підвищення рівня вітчизняної ветеринарної медицини.

Засновник та видавець:

Передрук, повне або часткове відтворення або розмноження у будь-який спосіб матеріалів та ілюстрацій, опублікованих у журналі «Мир ветеринарии», можливе тільки за умови письмового погодження з редакцією та посиланням на журнал. Редакція не завжди поділяє позицію авторів публікацій. За достовірність викладених фактів відповідає автор. Відповідальність за зміст та достовірність інформації, опублікованої у рекламі та рекламних матеріалах, повністю несе рекламодавець. Рукописи не рецензуються і не повертаються.

ТОВ «АЛДЕН ПРЕС» Адреса: 03113, м. Київ, вул. Олександрівська, 21, а/с 92 тел.: (044) 537-15-95

www.mirvet.com.ua Юридичне забезпечення журналу Компанія «Український Правовий Дім» м. Київ, вул. Сирецька, 28/2

На обкладинці: Кульчицька Вікторія Ігорівна, головний лікар, хірург, зоопсихолог, клініка ВЦ «Алден-Вет», вул. Естонська, 51. Фотограф – Євген Бєляєв.

ПЛАСТИЧЕСКАЯ ХИРУРГИЯ К. А. Лаврова ветеринарный врач пластической хирургии, Ветеринарная клиника неврологии, травматологии и интенсивной терапии, г. Санкт-Петербург

ЛЕЧЕНИЕ ПАЦИЕНТОВ С ТЕРМИЧЕСКИМИ ОЖОГАМИ. ХИРУРГИЧЕСКИЙ ПОДХОД Классификация Ожоги классифицируются по степени поражения глубины тканей и делятся на первую, вторую и третью степени. В большинстве случаев ветеринарные врачи могут сталкиваться с сочетанием степеней термических ожогов у одного пациента. Основываясь на оценке площади и степени повреждения, можно более точно составить прогноз для каждого пациента (1). Тяжесть ожога зависит от его степени, т.е. глубины повреждения. Глубокие ожоги (на всю толщину кожи) обычно имеют три концентрические зоны тканевых повреждений: центральная зона коагуляционного некроза, средняя зона сосудистого стаза с нарушенным тканевым кровообращением и наружная зона гиперемии. В результате прогрессирующего нарушения циркуляции крови некроз может распространиться на среднюю зону и далее (2). Поверхностные ожоги (первая степень) – это ожоги, повреждающие поверхностный слой эпидермиса. На коже появляется эритема и гиперестезия при прикосновении. При правильном лечении через неделю наступает быстрое и полное выздоровление. Ожоги второй степени повреждают дерму на частичную глубину (рис. 2). Ожоги с повреждением поверхностных слоев кожи при правильном лечении имеют благоприятный прогноз,

заживление занимает около трех недель. Лечить глубокие ожоги кожи более проблематично, особенно если повреждена большая площадь поверхности тела. При таких повреждениях возникают системные изменения в организме. Лечение может быть весьма продолжительным; большинство волосяных фолликулов, расположенных в дерме, разрушаются. Ожоги, повреждающие кожу на всю глубину (третья степень), вызывают полное разрушение эпидермиса, дермы, также могут быть вовлечены подлежащие ткани. Классификация ожогов в зависимости от глубины повреждения: 1. Поверхностные (ожоги первой степени). Повреждается только эпидермис. 2. Ожоги с частичным повреждением глубины кожи (вторая степень). Повреждаются эпидермис и различные слои дермы. 3. Ожоги с повреждением кожи на всю глубину (третья степень). Полное повреждение всей толщи кожи. 4. К ожогам четвертой степени относятся те, при которых повреждаются подлежащие ткани, включая мышцы и кости. Эту классификацию в целом можно принять за основу, а вот учет площади пораженной поверхности, являющийся

Рис. 1. Мальтийская болонка, 9 месяцев, электротравма

www.mirvet.com.ua

важным фактором, остается весьма субъективным. Много информации было неправильно экстраполировано из медицины, несмотря на то что между человеком и животным, имеющими ожоги, есть несколько очень важных отличий. В частности, становится очевидным, что мелкие домашние животные могут выживать при ожогах относительно больших поверхностей (более 50 %), не испытывая при этом серьезных системных и метаболических осложнений, которые встречаются у людей. Тем не менее такие осложнения, как обезвоживание, гипер- и гипонатриемия, гипер- и гипокалиемия, ацидоз, азотемия и анемия, а также отек легких в результате вдыхания дыма, присущи и мелким домашним животным (3). При повреждении больших площадей поверхности тела могут наблюдаться системные изменения. В случае возникновения больших ожоговых ран может потребоваться их закрытие с помощью пластической хирургии. Глубокие ожоги с повреждением более 20 % от общей поверхности тела способны вызывать целый ряд патофизиологических изменений и требуют соответствующего медикаментозного лечения, помимо хирургических манипуляций и закрытия ран (2). Степень повреждения зависит от температуры повреждающего агента

Рис. 2. Овчарка, 5 лет, ожоги 1–2-й степени на левой тазовой конечности

МИР ВЕТЕРИНАРИИ

ПЛАСТИЧЕСКАЯ ХИРУРГИЯ

и времени контакта. Возможно, что некоторые пациенты более восприимчивы к ожогам (1). Факторы, предрасполагающие к термическим повреждениям: • неспособность отойти от источника тепла; • неспособность чувствовать источник тепла (неврологический дефицит); • обезвоживание; • плохая периферическая перфузия; • меньший, чем обычно, волосяной покров; • сопутствующие заболевания (например, синдром Кушинга). Как ни грустно это признать, но большинство термических повреждений, с которыми приходится сталкиваться, были нанесены животным

ветеринарными врачами, использовавшими различные источники тепла для согревания пациентов. Электрические грелки, как правило, могут очень сильно нагреваться: продолжительный контакт локальных участков кожи с таким источником тепла может привести к возникновению глубоких и распространенных ожогов (рис. 3). Менее часто можно наблюдать контактные ожоги, полученные от неправильно заземленных пластин электрокаутеров (рис. 4).

Основные подсчеты площади ожога могут быть сделаны с помощью «правила девяток», т.е. формулы, которая обычно используется в медицине (рис. 5.). А вот точная оценка глубины ожога может быть весьма проблематичной в первые несколько дней после получения термической травмы.

Подсчет площади ожоговой поверхности Подсчет площади ожоговой поверхности у животных весьма субъективен, так как тело животных, в отличие от людей, покрыто значительно большим количеством свободной эластичной кожи.

Рис. 3. Кот с ожогом после электрогрелки

Рис. 4. Ожог после неправильного заземления электрокаутера

№3 май-июнь 2015

www.veterinars.com

Рис. 5. «Правило девяток»: подсчет площади поверхности, основанный на том, какие участки тела поражены: каждая передняя конечность – 9 %; каждая задняя конечность – 18 %; голова и шея – 9 %; дорсальная половина туловища – 18 %; вентральная половина туловища – 18 %

ПЛАСТИЧЕСКАЯ ХИРУРГИЯ

Несмотря на существование различных формул для подсчета площади поверхности тела, в рабочем порядке мы можем использовать «правило девяток». Лечение пациента должно быть в первую очередь направлено на поддержание жизненных функций организма и улучшение общего состояния во время курса терапии. Такой подсчет может служить отправной точкой при проведении инфузионной терапии у пациентов с тяжелыми глубокими ожогами, охватывающими более 20 % поверхности тела. Разговор с клиентом После того как вы оценили состояние пациента с обширными ожогами, крайне важно обсудить с владельцем вопросы последующей терапии и ухода за питомцем, а также их стоимость, которая может составлять значительную сумму (2).

поверхности являются важной информацией для составления правильного плана лечения. Слаборазвитая капиллярная сеть поверхностного сплетения объясняет отсутствие образования пузырей у пациентов (собак и кошек) с термическими ожогами (1). Массивные ожоги могут привести к травме тканей, находящихся под кожей (мышцы, кости). Тщательный осмотр требуется для оценки других регионарных структур, в том числе глаз, ушей, полости рта, органов дыхания, желудочно-кишечного тракта, мочеполовых органов, ануса и подушечек лап (рис. 6). Помимо этого пациенты могут одновременно подвергаться различным формам травм (повреждения нервной системы, переломы и другие повреждения внутренних органов), которые не следует упускать из виду.

Патофизиология ожогов

Как определить глубину поражения?

Патофизиология основных термических повреждений обусловлена серьезными метаболическими нарушениями в тканях ожоговой раны. При обширных ожогах (более 20 % поверхности) второй и третьей степени могут возникнуть серьезные нарушения, требующие интенсивной терапии (2).

Оценка термической травмы Основная цель после первоначальной стабилизации пациента – максимально быстрое закрытие полученных дефектов, поэтому оценка степени ожога и площади поврежденной

При наличии струпа, который образуется в результате термической травмы, невозможно сразу определить глубину повреждения. В процессе консервативного лечения некротизированные поверхности могут расслаиваться в течение нескольких дней, что позволяет оценить жизнеспособность подлежащих тканей. Во время первичной хирургической обработки ожоговой раны можно скальпелем немного углубиться в толщу струпа, чтобы определить, какие слои кожи повреждены. В случае частичного поражения кожи, жизнеспособные ткани наблюдаются в нижнем кожном сегменте. Толстая кожа в области спины и шеи дает большую возможность для ранней визуализации глубины поражения (2).

Раневая инфекция

Рис. 6. Овчарка, 5 лет, ожог подушечки лапы после пожара

Сепсис представляет наибольшую угрозу для пациентов с тяжелыми ожогами. Для предотвращения развития сепсиса следует сдерживать бактериальный рост на ожоговой поверхности, не допускать скопления гнойных выделений на ожоговой ране и вторичного обсеменения, избегать дополнительного травмирования тканей, обеспечить благоприятные условия для заживления и как можно раньше удалить все нежизнеспособные ткани. В случае наличия больших участков некротизированной кожи, рекомендуется на ранних стадиях отделять некротический струп

www.mirvet.com.ua

хирургическим путем. Раннее удаление струпа позволяет предотвратить инфицирование ожоговой раны и подготовить ее к закрытию за счет улучшения кровоснабжения подлежащих тканей. Такой метод подходит только в том случае, если некроз обширный и затрагивает всю толщу кожи. Поверхностные ожоги и ожоги с частичным повреждением толщи кожи не требуют подобного хирургического вмешательства. Уход за такими ранами заключается в предотвращении их инфицирования, удалении нежизнеспособных тканей и стимулировании эпителизации поврежденных участков. Лечение обширных ожогов предполагает большие материальные затраты, которые складываются из стоимости материалов, ухода за пациентом, медикаментов, работы хирургов и стационарного лечения. Поэтому владельцы должны быть готовы к тому, что им придется столкнуться не только с эмоциональными проблемами, но и с внушительными материальными затратами на лечение своих питомцев, получивших обширные ожоги (2).

Первичная обработка раны Шерсть тщательно удаляется с области повреждения для возможности оценки глубины и площади поражения. Кожа имеет низкую теплопроводность, поэтому может долго сохранять тепло и тем самым приводить к повреждению низлежащих тканей даже после прекращения действия повышенных температур. Поврежденную поверхность необходимо охлаждать с помощью компрессов или путем ее погружения в холодную воду, если после повреждения прошло не более двух часов. Эти процедуры могут уменьшить глубину поражения. Оптимальная температура охлаждающей жидкости составляет от 3 до 17 °С, время охлаждения – не менее 30 минут. К сожалению, большинство пациентов не попадают в клинику в такие ранние сроки. Если приложить лед к месту ожога на продолжительное время, то повреждения тканей усугубятся. Следует осторожно применять охлаждающие жидкости при обширных ожогах, чтобы не вызвать гипотермию у пациентов в состоянии шока. Распыление очень холодной воды через пульверизатор будет весьма полезным, так как позволяет смыть едкие вещества с поверхности кожи (2).

МИР ВЕТЕРИНАРИИ

ПЛАСТИЧЕСКАЯ ХИРУРГИЯ

Местнодействующие средства Для местного применения может быть использован целый ряд нераздражающих антимикробных средств, которые имеются в продаже. Не имеет значения, какие вещества вы выберете для лечения незначительных термических повреждений. При обширных ожоговых ранах желательно применять мази с широким спектром антимикробного действия, которые легко наносятся и смываются. Более того, мази должны быть нетоксичными, всасываться в кровь в минимальных количествах и не вызывать болезненности, раздражения. Из всех препаратов, которые обычно применяются в таких случаях, только сульфадиазин серебра (дермазин) наиболее полно отвечает всем требованиям (рис. 7). Эта водорастворимая мазь продается в аэрозольных баллонах или небольших тюбиках.

Консервативная обработка Консервативные методы обработки в ветеринарной медицине включают в себя применение ферментных препаратов, увлажнение поврежденной поверхности с помощью ее погружения в воду или использования изотонических растворов и влажных повязок. Все три метода направлены на то, чтобы размягчить и отделить некротические ткани от окружающих и подлежащих живых тканей. Для гидротерапии кошек и мелких собак можно использовать простерилизованные хирургические ведра из нержавеющей стали или небольшие контейнеры, выстланные стерильной пленкой. Пациента погружают в стерильный солевой раствор 1–2 раза в день. Затем отмоченные некротические ткани удаляют с помощью хирургического пинцета и ножниц. Погружение поврежденной области в раствор облегчает визуализацию некротических

Рис. 7. Обработка поврежденной поверхности сульфадиазином серебра

Хирургическая обработка Хирургическая обработка, заключающаяся в удалении отмирающих тканей, является основным компонентом лечения ожогов второй и третьей степени. Для удаления некротизированных тканей используются консервативные методы: влажно-высыхающие повязки, радикальная хирургическая обработка и применение ферментных препаратов. Удаление мертвых тканей необходимо для того, чтобы избежать сепсиса и подготовить дно раны к дальнейшему хирургическому вмешательству (2).

тяжей, которые следует удалить. Проводить гидротерапию сложнее, а временами и вообще невозможно, если собака большого размера. После гидротерапии пациента следует высушить, нанести на поврежденные поверхности сульфадиазин серебра и посадить его в бокс с подогревом. Бокс следует периодически очищать с помощью антисептиков, чтобы рана не загрязнялась мочой и фекалиями. Влажные повязки являются альтернативой погружной гидротерапии. Их удобно использовать, если поражены конечности или ограниченные участки

www.mirvet.com.ua

туловища. Чтобы повязка не высыхала, ее периодически смачивают из шприца стерильным физиологическим раствором или раствором Рингера с лактозой.

Радикальная хирургическая обработка Радикальная хирургическая обработка, или иссечение раны, подразумевает удаление всего ожога целиком. Большие площади некроза кожи с поражением всех слоев препятствуют формированию грануляций и значительно увеличивают риск инфицирования. При консервативной терапии могут пройти несколько дней или даже недель, прежде чем произойдет спонтанное отделение некротических тканей, поэтому предпочтительнее дать животному наркоз и удалить некротические ткани одномоментно. Трансплантационные ножи облегчают тангенциальное иссечение нежизнеспособных тканей на уровне гиподермы. В течение 5–7 дней формируется здоровая грануляционная подложка, пригодная для закрытия с помощью лоскутов или трансплантатов. Гемостаз достигается с помощью прижигания, наложения скобок или лигатур на сосуды. Шрамы и контрактуры Формирование рубца происходит только при ожогах с глубокими поражениями дермы. Ожоги на всю толщину дермы, которые могут быть легко удалены с возможностью последующей реконструкции раны, позволяют избежать большинства осложнений. Однако ожоги, требующие длительного медикаментозного лечения, могут приводить к формированию струпа и/или контрактуры. В большинстве случаев для возвращения нормальной функции таким поврежденным участкам необходимо хирургическое вмешательство. В некоторых случаях образовавшийся струп может приводить к нарушению дыхания, если он охватывает грудную клетку полностью, либо к значительному нарушению кровотока, если окаймляет дистальные отделы конечностей или хвост, в этом случае потребуется экстренная некротомия или некрэктомия (1).

Выводы Суммируя вышеизложенное, можно сделать вывод о том, что лечение ожоговых ран с повреждением всей толщи кожи является весьма затруднительным, особенно если поражена

МИР ВЕТЕРИНАРИИ

ПЛАСТИЧЕСКАЯ ХИРУРГИЯ

значительная часть поверхности тела. Следующий вывод заключается в том, что большие ожоговые струпья лучше полностью иссекать; здоровая грануляционная ткань образуется на их месте через 5–7 дней после осторожного и тщательного удаления омертвевших участков кожи. Наружно следует применять щадящие повязки с сульфадиазином серебра, что позволяет предотвратить обсеменение раны микрофлорой до тех пор, пока не будет проведена пластическая операция по закрытию дефекта (2).

Рис. 8. Через 2 дня после травмы. В некоторых местах можно наблюдать четкую демаркационную линию, хотя точную площадь и глубину повреждений оценить сложно

Фотообзор клинического случая (рис. 8–25) Собака породы немецкая овчарка, кличка Зет, возраст 5 лет. Получил ожоги во время пожара, владельцы от собаки отказались. На момент поступления в нашу клинику после травмы прошло 7 дней. Общее состояние животного оценивалось как стабильное. При осмотре выявлены ожоги 1-й, 2-й, 3-й и 4-й степени в области шеи, спины, боков, тазовых конечностей, хвоста, ануса, подушечек лап. Площадь ожоговой поверхности составила 45 %.

Рис. 9, 10, 11. Через 7 дней после травмы. Четко выраженная зона демаркации по всему периметру поражения

№3 май-июнь 2015

www.veterinars.com

ПЛАСТИЧЕСКАЯ ХИРУРГИЯ

Рис. 12. Некрэктомия большей части струпа на 10-й день после травмы. Краниальная часть струпа не удалена ввиду большой травматизации и длительности операции. Остальная часть струпа удалена через несколько дней. На рану нанесен сульфадиазин серебра

Рис. 15. 21-й день после травмы. Признаки здоровой грануляции практически по всей площади дефекта

Рис. 16. Наложение специальных «растяжителей» с противоположных сторон от предполагаемого места оперативного вмешательства Рис. 13, 14. 12-й день после травмы. После некрэктомии у пациента наблюдалось кровотечение из незалигированного сосуда, кровопотеря составила около 200 мл, что спровоцировало развитие анемии. Проводилась гемотрансфузия

Рис. 17. Создание достаточного избытка кожи

www.mirvet.com.ua

МИР ВЕТЕРИНАРИИ

ПЛАСТИЧЕСКАЯ ХИРУРГИЯ

Рис. 19. Марочный способ для закрытия дефекта в области крупа

Ежегодная конференция для друзей! Рис. 18. Вид животного на момент окончания операции 19 ИЮНЯ - ЛЕКЦИОННЫЙ ДЕНЬ 1. «Неврология для врача общей практики.» и «Интенсивная терапия при парвовирусном энтерите». Каратаев П, КВМ «Зоолюкс», г. Киев. 2. «Современные технологии ультразвуковой диагностики. Эластография». Закревский А, к.м.н., доцент ХМАПО. Мечтали о датчике УЗИ для ноутбука? Мечты сбываются! 3. “Неотложные состояния грызунов и экзотических животных”. Степаненко А, КВМ “Пёс+Кот”, г. Харьков. 20 ИЮНЯ Мастер-класс по неврологии Каратаев П, КВМ «Зоолюкс», г. Киев. Бизнес-семинар Кирилюка А. “Изменения в налоговом законодательстве. Адаптация учёта в ветеринарной клинике”. Количество мест на мастер-классы ограничено! Предварительная регистрация и оплата обязательны. Следите за нашими анонсами http://www.dogcatvetkharkiv.com/ Розыгрыши призов и подарков от спонсоров! Вечером фуршет и развлекательная программа. Во время кофепауз и обеденного перерыва все желающие могут принять участие в блиц-турнире по настольному теннису. Победителю турнира – призы от спонсоров!

Рис. 20. Вид животного через 2 недели после операции

№3 май-июнь 2015

www.veterinars.com

ПЛАСТИЧЕСКАЯ ХИРУРГИЯ

Рис. 21–23. Вид животного через 2 месяца после операции. В области правого и левого бедра с латеральной стороны сохранены значительные дефекты кожи

Литература: 1. Manual of Canine and Feline Wound Management and Reconstruction, 2nd Edition, John Williams and Alison Moores, 2009. 2. Atlas of Small Animal Wound Management and Reconstructive Surgery, 3rd Edition, Michael M. Pavletic DVM, 2010. 3. Manual of Canine and Feline Wound Management and Reconstruction, David Fowler, John M. Williams, 1999. 4. Manual of Small Animal Soft Tissue Surgery, Karen M. Tobias DVM, Wiley-Blackwell, 2010. 5. Textbook of Small Animal Surgery, D. Slatter / chapter 22: Principles of Plastic and Reconstructive Surgery, Nicholas J. Trout.

Рис. 24, 25. Закрытие кожных дефектов в области бедер с помощью лоскута, сформированного из кожи коленной складки

www.mirvet.com.ua

Статья предоставлена редакцией журнала «Ветеринарный Петербург» с любезного согласия автора. Редакция журнала «Мир ветеринарии» выражает благодарность российским коллегам за этот материал, а также за статью С. А. Лужецкого «Новообразования мейбомиевых желез у собак», опубликованную в предыдущем номере журнала.

МИР ВЕТЕРИНАРИИ

ЭПИЗООТОЛОГИЯ Ольга Полатайко, врач ветеринарной медицины, менеджер по препаратам для домашних животных компании «Зоэтис Украина»

ПАРВОВИРОЗ СОБАК – НОВЫЙ-СТАРЫЙ ВРАГ Почти у каждого млекопитающего, включая человека, есть свой собственный парвовирус. Собаки не являются исключением из этого правила. Парвовирус собак (CPV) впервые был идентифицирован в Европе в середине 1970-х, и его появление быстро переросло в широкомасштабную эпидемию с симптомами миокардита и гастроэнтерита. Предположительно CPV возник в результате незначительной мутации вируса панлейкопении кошек (FPV). Как правило, заболевание вызывается CPV-2b или CPV-2c штаммами, протекает тяжело и нередко заканчивается гибелью собаки. Спустя несколько десятилетий после своего появления, парвовироз собак отмечается гораздо реже, благодаря внедрению в практику эффективных вакцин. Однако вспышки этого заболевания наблюдаются до сих пор, чему способствует ряд факторов: 1) Безоболочечная структура парвовируса обеспечивает высокую резистентность к влиянию внешней среды, а также к средствам дезинфекции (выживание в помещении при комнатной температуре до 2 месяцев; во внешней среде – в течение многих месяцев и даже лет). 2) Вирус выделятся больными животными уже через 4–5 дней после контакта с ним (часто до развития клинических симптомов), в течение всего периода заболевания и еще приблизительно 10 дней после наступления клинического выздоровления. 3) Низкая доля вакцинированных животных в популяции. Для успешной борьбы с инфекционными заболеваниями популяционный иммунитет должен быть на уровне 70% и более. Даже в развитых странах, вакцинированы около 30-50% собак, в Украине их число значительно меньше, кроме того, велико число бездомных собак, большинство из которых никогда не прививались. Учитывая все это, а также тот факт, что выработке иммунитета у конкретного щенка может препятствовать высокий уровень материнских антител, важно использовать эффективные вакцины, соблюдая установленные рекомендации по проведению вакцинации.

№3 май-июнь 2015

Одним из мировых лидеров рынка вакцин является компания «Зоэтис», в Украине зарегистрированы вакцины для собак линейки «Вангард Плюс» и «Дурамун» – комбирированные вакцины против чумы, парвовироза, аденовироза, парагриппа и лептоспироза (в линейке также есть вакцины, содержащие коронавирусный компонент). К отличительным свойствам «Вангарда», которые подтверждены исследованиями, относятся: • Высокий титр (>107TCID50) и малое количеством пассажей штамма парвовируса (37). • Способность преодолевать высокие титры материнских АТ[1]. • Высокая иммуногенность: быстрая сероконверсия и начало

иммунитета в пределах 7 дней после вакцинации [2]. • Защита от парвовирусного энтерита у 96.5% щенков, вакцинированных в возрасте12 недель [3]. • Наличие перекрёстного иммунитета для парвовируса 2b и 2c [4,5]. • Сохранение иммунитета против вирусных антигенов до 48 месяцев после ревакцинации (серологические исследования) [6]. Таким образом, использование высокотитровой, с низким количеством пассажей вакцины «Вангард» дает уверенность в надежной защите против парвовироза, а также других распространенных инфекционных заболеваний собак.

Литература: 1. The use of a modified-live vaccine in 6 week-old puppies with maternally derived antibodies to canine parvovirus prevents clinical disease. Kanellos T, Thevasagayam S, Chipanga P, Robinson A, WSAVA Congress, 2006. 2. A MLV vaccine elicits a protective serological response to CPV earlier than three other vaccines, T. Kanellos, P. Chipanga, A. Robinson, S. Thevassagayam, WSAVA Congress, 2006. 3. Immunogenicity of a low-passage, hightiter modified live canine parvovirus vaccine in pups with maternally derived antibodies. Hoare CM, DeBouck P and Wiseman A. Vaccine 15, 273-5. 1997 4. Single Vaccination with Vanguard® 7 protects against virulent canine

www.veterinars.com

Parvovirus (antigenic type 2b) challenge 7 days after vaccination. Siedek EM, Schmidt H, Sture GH, Robinson A, Raue R. Presentation at 2009 BSAVA Congress in Birmingham. Gastroenterology II abstract no. 11. Scientific Proceedings: Veterinary programme p. 386. 5. Vanguard® 7 protects against challenge with virulent canine Parvovirus antigenic type 2c (CPV-2c). Siedek EM, Schmidt H, Munyira P, Raue R. Poster P06at International Parvovirus Meeting 2007, Monopoli, Bari, Italy, 27.09.-28.09.2007, abstract published in the proceedings. 6. Duration of serologic response to five viral antigens in dogs. Douglas E. Mouzin, MS, MBA; Marianne J. Lorenzen, DVM; John D. Haworth, DVM, PhD; Vickie L. King PhD. J Am Vet Med Assoc 2004; 224:55-60

ЭНДОКРИНОЛОГИЯ М. М. Беленсон ветеринарная клиника «Белый клык», г. Москва

ТОПИЧЕСКАЯ ДИАГНОСТИКА ПРИ ГИПЕРАДРЕНОКОРТИЦИЗМЕ (СИНДРОМЕ КУШИНГА) Гиперадренокортицизм (ГАК) – состояние, обусловленное хронической гиперкортизолемией. Это одно из наиболее распространенных эндокринных нарушений у собак. ГАК может быть ятрогенным и спонтанным. В рамках этой статьи для нас не будет представлять интереса ятрогенный вариант. Мы обратим внимание на спонтанные формы этого состояния. Спонтанный ГАК можно разделить на три группы: • Центральный ГАК или гипофизарная форма ГАК • Надпочечниковый ГАК • Синдром эктопической секреции АКТГ Таблица 1. Наиболее частые жалобы, которые озвучивают владельцы собак, страдающих ГАК Полиурия/полидипсия Усиление аппетита Отсутствие течек Ухудшение качества шерсти/алопеции/ незаживающие раны Увеличение объема живота Мышечная слабость/сниженная толерантность к физическим нагрузкам Тахипноэ/одышка

Таблица 2. Клинические признаки, характерные для ГАК Изменение телосложения «Кушингоид» (рис. 1): - Уменьшение мышечной массы - Увеличение объема живота - Провисание позвоночника Поражения кожи: - Симметричные алопеции - Истончение кожи - Снижение эластичности кожи - Кальциноз кожи (рис. 2)

На долю гипофизарной формы приходится около 80–85 % всех случаев ГАК. Порядка 15 % занимает надпочечниковая форма. Синдром эктопической секреции АКТГ является крайне редким состоянием у собак и кошек. Диагностика ГАК при развернутой картине заболевания не представляет большого труда. Наличие соответствующего анамнеза (табл. 1), клинических признаков (табл. 2, рис. 1, 2) и данных, полученных при выполнении рутинных анализов (табл. 3), позволяют сделать предположение о степени вероятности ГАК. Для верификации требуется выполнить

один из рекомендованных тестов: малую дексаметазоновую пробу (МДП) или тест с АКТГ. Методика выполнения МДП и теста с АКТГ подробно описаны во множестве руководств по ветеринарной эндокринологии, и останавливаться подробнее на этом моменте нет смысла. Стоит лишь сравнить плюсы и минусы этих методов (табл. 4). Каждый врач сам выбирает для себя наиболее оптимальный с его точки зрения тест. Я в своей практике чаще использую МДП. Чтобы понять ее принцип, нужно вспомнить механизм регуляции секреции кортизола (см. рис. 2). Известно, что за синтез и секрецию кортизола ответственны пучковая и сетчатая зоны коры надпочечников. Эта структура находится под контролем гипофиза, который стимулирует работу коры надпочечников посредством выделения в кровь АКТГ. Взаимодействуя с соответствующими рецепторами клеток коры надпочечников, АКТГ усиливает синтез и секрецию кортизола. В результате концентрация кортизола в крови повышается. Повышение концентрации кортизола фиксируется рецепторами гипофиза и гипоталамуса. По достижении определенного уровня глюкокортикоидов в крови гипофиз

Рис. 1. Внешний вид собак, страдающих ГАК: увеличение объема живота, уменьшение мышечной массы, провисание позвоночника, тусклый шерстный покров, отсутствие роста шерсти в местах, ранее подвергнутых бритью

www.mirvet.com.ua

МИР ВЕТЕРИНАРИИ

ЭНДОКРИНОЛОГИЯ

Таблица 3. Результаты рутинных анализов, характерные для ГАК Общий анализ крови: - Эритроцитоз - Тромбоцитоз - Эозинопения - Лимфопения Биохимический анализ крови: - Гипергликемия (+/-)

Рис. 2. Кальциноз кожи – характерное для ГАК поражение. Локализуется преимущественно в области дорсальной поверхности шеи, у основания ушных раковин перестает секретировать АКТГ, и надпочечники, в отсутствие стимуляции, снижают темп секреции кортизола. Таким образом, гипоталамус и гипофиз поддерживают нужный уровень кортизола в крови, то стимулируя работу коры надпочечников, то переставая это делать. Суть МДП заключается в том, что повышение концентрации глюкокортикоидов в крови после введения дексаметазона фиксируется

соответствующими рецепторами гипоталамуса и гипофиза, и последние перестают стимулировать надпочечники. Следовательно, концентрация кортизола в крови снижается в случае нормы и остается низкой в течение суток. При центральном (гипофизарном) ГАК аденома гипофиза выделяет в кровь избыточные количества АКТГ, и введенный в ходе проведения МДП дексаметазон может не оказать никакого воздействия на работу гипофиза,

- Повышение активности щелочной фосфатазы - Повышение активности АЛТ - Гиперхолестеринемия, гипертриглицеридемия Общий анализ мочи: - Снижение плотности мочи (ниже 1,012) - Лейкоцитурия, эритроцитурия, бактериурия (+/-)

или его тормозящее действие будет временным. То есть концентрация кортизола в пробах крови, взятых через 4 и 8 часов после введения

ЭНДОКРИНОЛОГИЯ

препарата, существенно не изменится или временно понизится в четырехчасовой пробе и станет близкой к исходным значениям через 8 часов. При надпочечниковой форме ГАК наблюдается иная картина. Пораженный опухолью надпочечник секретирует в кровь избыточное количество кортизола. Нормально функционирующий гипофиз реагирует на это повышение стандартно – перестает секретировать АКТГ. Но это мало влияет на концентрацию кортизола в силу автономной работы пораженного опухолью надпочечника. Что же произойдет, если в сложившихся условиях ввести дексаметазон? Дексаметазон никак не повлияет на уровень АКТГ, потому что он и без того низок, а, следовательно, концентрация кортизола не станет меняться от первой пробы крови к третьей в МДП. Таким образом, уже на этапе МДП можно сделать первые предположения о том, к какой форме относится ГАК: гипофизарной или надпочечниковой. Временное снижение концентрации кортизола в пробе крови, взятой через 4 часа после введения дексаметазона, и подъем в восьмичасовой пробе характерны для гипофизарной формы ГАК. Отсутствие выраженной супрессии может свидетельствовать о надпочечниковой форме ГАК. Но это только ориентировочные данные. Когда ГАК подтвержден, возникает вопрос о причине, вызвавшей его. На каком уровне имеется нарушение – на уровне надпочечника или гипофиза? От этого будет зависеть выбор способа лечения. Как говорилось выше, первые ориентировочные данные можно получить уже из результатов МДП. Обнаружив супрессию кортизола в четырехчасовой пробе и подъем в восьмичасовой, можно предположить гипофизарный ГАК. Статистические данные по болезни (около 80–85 % ГАК приходятся на гипофизарную форму) только упрочат сделанное предположение. Но чтобы убедиться в наличии аденомы гипофиза, потребуется включить визуальные методы диагностики. Магнитно-резонансная томография (МРТ) головного мозга в этом случае будет очень ценным исследованием. Она позволяет визуализировать новообразование, определить

Рис. 3. Схема регуляции секреции кортизола (механизм отрицательной обратной связи) его размеры и документировать результаты. Кроме того, при помощи МРТ можно оценивать состояние не только гипофиза, но и надпочечников, если подозревается опухолевое поражение одного из них. Однако у этого исследования есть некоторые минусы. Планируя МРТ, следует помнить о них: • МРТ, являясь дорогостоящим исследованием, в значительной степени повышает стоимость диагностики ГАК • Процедура МРТ требует применения общей анестезии. Для некоторых пациентов, страдающих ГАК, существует повышенный анестезиологический риск, что может накладывать ограничения на исследование • Отрицательный результат исследования не исключает наличия аденомы гипофиза. Аденома может иметь размеры, недостаточные для обнаружения на МРТ, и в то же время обладать выраженной гормональной активностью. Еще один метод визуального исследования, позволяющий провести топическую диагностику – ультразвуковое исследование (УЗИ) надпочечников. С его помощью можно оценить размеры, структуру надпочечников, сравнить надпочечники между собой, то есть выявить УЗ-признаки опухолевого поражения.

Очевидным плюсом УЗИ можно считать относительно небольшую стоимость исследования и большую, чем МРТ доступность. Кроме того, УЗИ в большинстве случаев не требует проведения общей анестезии. Достоверность УЗИ надпочечников во многом зависит от опыта оператора. Несмотря на то что последний момент лимитирует ценность метода, он все же остается наиболее популярным в нашей клинике и, насколько мне известно, в большинстве других клиник, которые занимаются диагностикой и лечением ГАК. В нашей клинике принят следующий подход к диагностике ГАК (см. схему). На основании анамнеза и результатов осмотра возникает подозрение ГАК. В зависимости от выраженности клинической картины происходит движение в одном из следующих направлений. Если клинические признаки явны и подозрение ГАК велико, выполняется МДП. При получении положительного результата пациенту проводят УЗИ надпочечников. Если УЗИ не обнаруживает признаков опухолевого поражения одного из надпочечников, возникает предположение о гипофизарной форме ГАК. В качестве дополнительного, но пока не обязательного метода обследования, предлагается выполнение МРТ области гипофиза с целью определения размеров аденомы и вероятности компрессии ею смежных структур головного мозга. В случае если клиническая картина ГАК не очевидна, выполняется определение соотношения кортизол/ креатинин в моче. Этот нетрудоемкий анализ позволяет с высокой долей вероятности исключить ГАК и не проводить дальнейшую диагностику этого состояния. В случае превышения нормы соотношения кортизол/ креатинин в моче, ГАК исключить не удалось. В этом случае проводится

Таблица № 4. Достоинства и недостатки МДП и теста с АКТГ МДП Плюсы Доступна для большинства клиник Позволяет дифференцировать гипофизарную форму ГАК от надпочечниковой

www.mirvet.com.ua

Проба с АКТГ Минусы

Трудоемка Занимает 8 часов Результаты иногда трудно интерпретировать

Плюсы Занимает немного времени Простота интерпретации

Минусы Недоступна для многих клиник Не позволяет дифференцировать гипофизарную форму ГАК от надпочечниковой

МИР ВЕТЕРИНАРИИ

ЭНДОКРИНОЛОГИЯ

Схема диагностики ГАК Признаки ГАК очевидны

Да

МДП

Нет

Соотношение Кортизол/ креатинин в моче

Больше нормы

УЗИ: признаки опухолевого поражения надпочечника выявлены

Меньше нормы

Нет

ГАК исключен

Консервативная терапия

Да Есть вероятность, что ГАК гипофизарный

Отрицательная БДП Положительная

полный путь диагностики, как это описано выше. При отсутствии УЗ-признаков опухолевого поражения надпочечников и положительной МДП (особенно, если она обнаружила характерную для гипофизарной формы ГАК кривую) можно говорить о том, что имеет место гипофизарный ГАК. В этом случае в нашей клинике избирается консервативный способ лечения с помощью препаратов, подавляющих функцию коры надпочечников. Когда же обнаружены УЗ- или МРТпризнаки опухолевого поражения одного из надпочечников, следует выбрать хирургический способ лечения, который заключается в удалении пораженного надпочечника. Стоит ли в этом случае спешить с хирургией? Внешние признаки опухолевого поражения надпочечника (УЗИ, МРТ, лапароскопия, диагностическая лапаротомия) на фоне соответствующих клинических признаков ГАК и результатов МДП с большой долей вероятности говорят о надпочечниковой форме ГАК. Но есть моменты, которые не позволяют смело рекомендовать унилатеральную адреналэктомию. Во-первых, в некоторых случаях гипофизарного ГАК может наблюдаться выраженная гиперплазия надпочечников. Иногда она может быть односторонней. Это

№3 май-июнь 2015

Адреналэктомия

может напоминать опухолевое поражение надпочечника. Во-вторых, всегда существует небольшая вероятность того, что обнаруженная на фоне ГАК опухоль надпочечника негормоноактивна. То есть имеет место гипофизарный ГАК, а негормоноактивная опухоль надпочечника – параллельное, не связанное с основным состоянием явление. В этих случаях дорогостоящее и сопряженное с рядом рисков хирургическое вмешательство в конце концов окажется предприятием ненужным. Возникает необходимость определить на дооперационном этапе, является ли обнаруженное новообразование надпочечника гормоноактивным, то есть причиной ГАК. Сделать это можно при помощи одной из двух функциональных проб: большой дексаметазоновой пробы (БДП) и теста с десмопрессином. Протокол проведения БДП подробно описан во многих руководствах по эндокринологии мелких домашних животных. В сущности, от МДП она отличается только дозой дексаметазона. При надпочечниковом ГАК большая дексаметазоновая проба будет демонстрировать отсутствие выраженной супрессии концентрации кортизола в пробах крови, взятых через 4 и 8 часов после применения дексаметазона. БДП доступна, хотя и

www.veterinars.com

трудоемка, и может быть с успехом использована для подтверждения гормональной активности опухоли надпочечника в случаях, когда подозревается надпочечниковая форма ГАК. При положительной БДП показания к адреналэктомии будут более весомыми. В качестве дополнительного теста, позволяющего дифференцировать гипофизарный и надпочечниковый ГАК, может быть использован тест с десмопрессином. Он основан на следующем явлении. После введения десмопрессина собакам, страдающим гипофизарным ГАК, концентрация кортизола в крови повышается по сравнению с исходной. Повышения концентрации кортизола у собак с надпочечниковым ГАК в схожих условиях не происходит. У меня не возникало необходимости применять этот тест в своей практике, и я рассматриваю его как вспомогательный тест, который можно проводить в случае получения сомнительных результатов БДП. Резюмируя написанное выше, хочется отметить, что для проведения топической диагностики требуется сочетание методов визуальной диагностики и функциональных проб. Ограниченное применение только одного из этих методов может привести к диагностической ошибке.

ОНКОЛОГИЯ Д. Е. Митрушкин (89035718861@mail.ru), А. Л. Кузнецова, А. А. Шимширт, Л. В. Голуб, М. В. Родионов, Е. А. Корнюшенков Клиника экспериментальной терапии НИИ Клинической онкологии ФГБНУ «РОНЦ им. Н. Н. Блохина»; Ветеринарная клиника «Биоконтроль» (Москва)

НОВООБРАЗОВАНИЯ ГОРТАНИ У КОШЕК: ОБЗОР 13-ти СЛУЧАЕВ В статье описана редкая патология у кошек – опухоли гортани на примере 13 клинических случаев (6 случаев плоскоклеточного рака, 4 случая лимфомы, 2 случая папилломы, один случай низкодифференцированного рака). Наиболее распространенными клиническими признаками явились стридор и инспираторная одышка. Выживаемость (время от постановки диагноза до гибели или эвтаназии) пациентов, которым не проводили лечение, колебалась в диапазоне от 0 до 65 дней. Выживаемость пациента с плоскоклеточным раком гортани, которому выполнили трахеостомию, провели курсы ЛТ (СОД 30 Грей) и ФДТ, составила 76 дней. Ремиссия пациента с лимфомой гортани, которому выполнили трахеостомию и провели 3 курса ХТ (по протоколу СОР), составила более 334 дней (на момент сдачи номера в печать общее состояние животного удовлетворительное). Ремиссия пациента с лимфомой гортани, которому выполнили трахеостомию и провели 3 курса ХТ (по протоколу СОР), составила более 334 дней (на момент сдачи номера в печать общее состояние животного удовлетворительное). Ремиссия пациента с эндоскопически резецированной папилломой гортани с последующими трахеостомией и курсом ЛТ (СОД 11 Грей) составила более 179 дней (на момент сдачи номера в печать общее состояние животного удовлетворительное).

Ключевые слова: гортань, кошка, лимфома, новообразование, опухоль, рак. Сокращения: КТ – компьютерная томография, ЛТ – лучевая терапия, ОГ – опухоль/опухоли гортани, РЛУ – регионарный лимфатический узел/регионарные лимфатические узлы, РОД – разовая очаговая доза, РЩЖ – рак щитовидной железы, СОД – суммарная очаговая доза, УЗИ – ультразвуковое исследование, ФДТ – фотодинамическая терапия, ХТ – химиотерапия, COP – cytoxan, oncovin, prednisolone (химиотерапевтическое лечение при комбинации препаратов циклофосфамид, винкристин и преднизолон), WM – Wisconsin-Madison (химиотерапевтическое лечение при комбинации препаратов винкристин, L-аспарагиназа, циклофосфамид, преднизолон, доксорубицин и метотрексат; разработано в Висконсинском университете города Мадисон, США).

Инцидентность, клинические признаки, диагностика и лечение опухолей гортани у кошек У кошек ОГ встречаются редко. Наиболее распространены плоскоклеточный рак и лимфома; гораздо реже отмечают аденокарциному, папиллому и другие новообразования. Клинически заболевание проявляется признаками обструкции верхних дыхательных путей, такими как дисфония (переходящая со временем в афонию), стридор (шипящее либо свистящее дыхание) и инспираторная одышка, что обусловлено сужением просвета

органа, приводящим к механической асфиксии; в редких случаях наблюдают рвоту или кашель. Болеют животные среднего и старшего возраста. На поздних стадиях болезни у пациентов происходит изъязвление ОГ, прорастание хрящей гортани и окружающих мягких тканей, а также присоединение воспаления [1, 3, 8–11, 18]. По данным медицины, возникновению рака гортани у человека обычно предшествуют длительно текущий хронический ларингит, кератоз, дисплазия (кератоз с атипией) и папилломатоз гортани [1, 5]. Samantha Taylor и соавт. изучали опухоли гортани у 10 кошек в городе Бристоль в 1996‒2006 гг. Отмечены 4 случая лимфомы, 4 случая плоскоклеточного рака, 1 случай аденокарциномы и 1 случай недифференцированной круглоклеточной опухоли. Двум кошкам с лимфомой гортани назначили ХТ по протоколу СОР, при которой выживаемость (время от дня постановки диагноза до дня гибели либо эвтаназии) у 8-летней кошки составила 60 дней, у 13-летней кошки (с введением L-аспарагиназы в начале курса ХТ) – 1440 дней. На ларингоскопии во втором случае уже через 7 дней пос ле начала ХТ гортань выглядела макроскопически нормальной, а поводом для эвтаназии послужила почечная недостаточность. Кошку с плоскоклеточным раком гортани лечили преднизолоном в течение 180 дней, после чего была проведена эвтаназия вследствие прогрессирования диспноэ. Кошке с недифференцированной круглоклеточной ОГ лечение не назначали;

www.mirvet.com.ua

выживаемость составила 14 дней. Остальных шесть кошек не лечили, их выживаемость составила 0 дней (по нашему мнению, эвтаназия выполнена при первичном приеме). Еще у одной кошки в данном исследовании отмечено полиповидное образование голосовой складки, которое было резецировано; на 60-й день после операции рецидива клинических признаков не наблюдали [16]. В другом исследовании Samantha Taylor и соавт. описывают ответ на ХТ и выживаемость 110 кошек с экстранодальной лимфомой в 7 ветеринарных центрах Англии за период 1995–2008 гг. Лимфома гортани диагностирована у 11 кошек (средний возраст – 9,4 года). Средняя продолжительность клинических проявлений заболевания (диспноэ у семи кошек, дисфония у шести, стридор у пяти, позывы на рвоту/рвота у двух пациентов) на момент первичного приема составила 30 дней (диапазон от 2 до 150). Восьми животным назначена ХТ – пяти кошкам по протоколу COP (с некоторыми вариациями), двум – по протоколу WM (с небольшими изменениями стандартной схемы, например, исключением L-аспарагиназы), одной кошке – по протоколу со значительными изменениями стандартного варианта. Полная ремиссия заболевания отмечена у семи кошек, частичная – у одной (это наилучшие показатели, в сравнении с кошками с лимфомой носовой полости, почек, центральной нервной системы и других локализаций, которым также проводили ХТ по различным схемам). Тем не менее, медиана

МИР ВЕТЕРИНАРИИ

ОНКОЛОГИЯ

выживаемости у кошек с лимфомой гортани оказалась самой низкой в сравнении с другими группами животных – 173 дня (диапазон 16–330 дней) у кошек с полной ремиссией и 22 дня прожила кошка с частичной ремиссией. Не было значительных различий в выживаемости или достижении полной ремиссии при лечении ХТ по различным протоколам (COP, WM и другим); не отмечено возрастной, половой и породной предрасположенностей к ответу на лечение [15]. Amy Lam и другие ветеринарные специалисты изучали ОГ у 24 кошек австралийского штата Новый Южный Уэльс в 2001‒2010 гг. Отмечены 12 случаев лимфомы (средний возраст животных 13 лет 4 месяца), 9 – плоскоклеточного рака (средний возраст животных 11 лет 10 месяцев), 1 – ларинго-трахеальной карциномы и 2 – инвазии РЩЖ в гортань. Время от появления клинических признаков до первичного поступления в клинику: при лимфоме – 7 случаев от 1 суток до 7 дней, 5 случаев – более 7 дней; при других ОГ – 2 случая до 24 ч, 4 случая – от 1 суток до 7 дней, 6 случаев – более 7 дней. Восемь кошек с ОГ были эвтаназированы при постановке диагноза (7 – с плоскоклеточным раком, 4 – с лимфомой). Лечение назначали после морфологического исследования биоптатов, полученных посредством биопсии ОГ. Семи кошкам с лимфомой гортани проведена ХТ; выживаемость при ХТ по протоколу СОР (n=3) составила от 103 до 300 дней, при лечении гранулоцитарным колониестимулирующим фактором молекулярной массой 25 кДа (n=4) – от 30 до 175 дней, при лечении депо-медролом (n=1) – 90 дней. Двух кошек с плоскоклеточным раком гортани лечили преднизолоном (по 0,5 мг/кг перорально 1 раз в день); выживаемость составила 40 дней и 52 дня. Первой кошке с инвазией РЩЖ в гортань было назначено паллиативное лечение в виде хирургической операции (выживаемость составила 28 дней). Вторую кошку с инвазией РЩЖ в гортань лечили радиойодом; ремиссия составила 240 дней после постановки диагноза (животное эвтаназировано вследствие прогрессирования хронической почечной недостаточности). Кошке с ларинготрахеальной карциномой вводили пироксикам (по 1 мг перорально 1 раз в день в течение 7 дней); ответ на лечение не получен и животное было эвтаназировано [9]. Laura Marconato и другие ветеринарные специалисты анализируют случаи лечения плоскоклеточного рака гортани у двух кошек. Обеим кошкам назначены 2 курса неоадъювантной ХТ препаратами блеомицин (подкожно), тиладомид (перорально) и пироксикам (перорально) с интервалом в неделю. Через 2 недели после начала неоадъювантной ХТ уменьшились размеры новообразований (на основании результатов ларингоскопии и УЗИ) и стало возможно их резецировать. Выполнены резекции новообразований; при гистологическом исследовании границ хирургического иссечения обеих опухолей выявлена их опухолевая инфильтрация. Через 10 и 11 дней после операций, чтобы уничтожить оставшиеся опухолевые клетки, обеим кошкам проведена по курсу ЛТ (в обоих случаях РОД составила 4,8 Грей; СОД – 48 Грей) в течение 5 дней (дважды в день). Одному животному после курса ЛТ назначили 8 курсов адъювантной ХТ теми же препаратами, что и при неоадъювантной ХТ; отмечена полная ремиссия; на 144-й день после начала неоадъювантной ХТ по просьбе владельцев животное (с признаками рецидива плоскоклеточного рака

№3 май-июнь 2015

гортани и с увеличенным поднижнечелюстным лимфоузлом) было эвтаназировано; при некропсии подтвердился метастаз плоскоклеточного рака гортани в поднижнечелюстном лимфоузле. Другое животное не получало адъювантную ХТ и было эвтаназировано на 51-й день после начала неоадъювантной ХТ в связи с почечной лимфомой; аутопсия подтвердила лимфому почек и полную ремиссию плоскоклеточного рака гортани. Авторы подчеркивают, что каких-либо гематологических либо негематологических побочных эффектов вследствие неоадъювантной ХТ и адъювантной ХТ не зафиксировано [12]. Carlisle C.H. и соавт. описывают случаи новообразований гортани и трахеи у собак и кошек в американских штатах Пенсильвания и Северная Каролина. У кошек зафиксирован 21 случай ОГ, из которых наиболее распространенной явилась лимфосаркома. ОГ макроскопически выглядели как генерализованное утолщение гортани, а не как четко ограниченный узел [3]. Wheeldon E.B & Amis T.C. описывают случай плоскоклеточного рака гортани у 5-летней домашней короткошерстной кошки, клинически проявлявшийся эпизодами кашля и рвоты [17]. Неинвазивные диагностические процедуры, такие как рентгенография, КТ и УЗИ, могут оказаться малоинформативными в диагностике ОГ из-за наложения нормальных мягкотканных структур шеи. Для подтверждения новообразования органа требуется использовать основной метод диагностики заболевания – ларингоскопию (под общей анестезией) с биопсией и гистологическое исследование биоптата. Все

ОНКОЛОГИЯ

Рис. 1. Макропрепарат. Плоскоклеточный рак гортани (на разрезе). Экзоэндофитная опухоль (в области щитовидного и перстневидного хрящей), протяженность около 15 мм (обведена кругом). Трахеостома показана стрелкой вышеуказанные инструментальные методы диагностики помогают также исключить метастатическое поражение ОГ органов грудной и брюшной полостей [3, 9, 16, 18]. Ларингэктомия с постоянной трахеостомой при ОГ кошек и собак не получила распространения [18]. Guenther-Yenke C.L. & Rozanski E.A. выполнили трахеостомию 23 кошкам с обструкциями верхних дыхательных путей (вследствие опухолей, отеков или травм) и заключили, что, хотя данная операция у кошек технически более сложна, чем у других животных, временная трахеостома может быть эффективна при излечимых патологиях, постоянная трахеостома может оказать поддержку при неизлечимых болезнях верхних дыхательных путей [6]. Stepnik M.W и соавт. выбрали постоянную трахеостому в качестве лечения 21 кошки с обструкцией верхних дыхательных путей (из них восьми кошкам с ОГ: 6 случаев плоскоклеточного рака и 2 случая лимфомы). Среднее время выживания (у 20 кошек) составило лишь 20,5 дней, в первую очередь, из-за образования слизистых пробок в искусственно созданном отверстии или в других отделах дыхательного тракта, а также вследствие прогрессирования опухолевого роста [14]. В других исследованиях [9, 15, 16] трахеостомию при ОГ провели лишь единожды – при лимфоме органа (в работе Lam A.L. и соавт.). Дифференцировать ОГ необходимо от воспаления гортани (в том числе

Рис. 2. Ларингоскопия. Новообразование черпаловидных хрящей (белое, бугристое, без четких границ), смещающее их влево; спаяно с окружающими мягкими тканями; субтотально обтурирует просвет голосовой щели. Правый черпаловидный хрящ показан желтой стрелкой, левый черпаловидный хрящ – зеленой, суженная голосовая щель показана белой стрелкой. Надгортанник не визуализируется (смещён эндоскопом вентрально)

Рис. 3. Макропрепарат. Плоскоклеточный рак гортани (на разрезе). Экзоэндофитный, поражает все хрящи органа и прилежащие мягкие ткани; протяженность около 2,7 см, толщина до 0,7 см от ларингеальной лимфоидной гиперплазии и полипоидного ларингита), паралича, а также от патологий носовой полости, носоглотки и трахеи, также обусловливающих клинические признаки обструкции верхних дыхательных путей [4, 8, 9, 11, 16]. Данных по ЛТ папиллом гортани у кошек в зарубежной литературе нами не обнаружено. При аналогичном заболевании у детей и подростков облучение может приводить к малигнизации в отдаленном периоде; однако существуют сообщения, описывающие эффективность этого метода в лечении взрослых, как и при других локализациях папиллом [2, 7, 13].

www.mirvet.com.ua

Рис. 4. Рентгенограмма головы и шеи в боковой проекции. Рентгеноконтрастная тень в просвете гортани и вентральной поверхности шеи (показана стрелкой)

МИР ВЕТЕРИНАРИИ

№3 май-июнь 2015

www.veterinars.com

14, самец

9, самка

10, самка

Сибирская

Европейская короткошерстная

Персидская

Европейская короткошерстная

Ларингоскопия, аутопсия (рис. 1)

Ларингоскопия с биопсией

Аутопсия

То же (рис. 10 )

Плоскоклеточная папиллома

Низкодифференцированный рак

» (рис. 8)

Ларингоскопия (рис. 7) с биопсией Рентген, ларингоскопия, аутопсия (рис. 9)

Ларингоскопия, аутопсия (рис. 6)

То же

Лимфома

Рентгенография, ларингоскопия, аутопсия Рентгенография (рис. 4), ларингоскопия, аутопсия (рис. 5)

Рентгенография, ларингоскопия с биопсией, аутопсия

УЗИ

То же

Рентгенография, ларингоскопия с биопсией

Рентгенография, ларингоскопия (рис. 2), аутопсия (рис. 3)

Плоскоклеточный рак

Ларингоскопия, аутопсия

Эвтаназия Гибель

Ремиссия

Преднизолон, синулокс Эндоскопическая резекция, трахеостомия, 3 сеанса ЛТ (СОД 11 Грей)

Ремиссия

Преднизолон, канефрон, трахеостомия, СОР (3 курса) Не проводили

» Не проводили

Дексафорт, синулокс

То же

Эвтаназия

Трахеостомия, 7 сеансов ЛТ (СОД 30 Грей), ФДТ, гастростомия Не проводили

Гибель

Эвтаназия

То же

Не проводили

Трахеостомия

Гибель

Эвтаназия

Преднизолон и цефотаксим (в другой клинике)

Трахеостомия

Исход

Лечение

Гистологический диагноз

Методы инструментальной диагностики

То же

Отсутствовали

Метастазы в РЛУ

Не отмечены

Инвазия мягких тканей шеи

Не отмечены

Инвазия мягких тканей шеи; метастазы рака в РЛУ

Инвазия трахеи и мягких тканей шеи

>179**

>334**

Инвазия мягких тканей шеи. Пневмония Инвазия мягких тканей; метастазы в легких

Инвазия мягких тканей шеи и правой доли щитовидной железы; метастазы в РЛУ и легких Метастазы в РЛУ

Выживаемость, дни

Инвазия/метастазирование ОГ; осложнение основного заболевания

Примечание. * – Продолжительность клинических признаков – приблизительное время наблюдения клинических признаков владельцами на момент первичного приема. ** – животное находится в удовлетворительном состоянии на момент сдачи номера журнала в печать. *** – в течение 90 дней у кошки были стридор и кашель, в последние 7 дней добавилось затрудненное глотание

90; 7 ***

150

Стридор, дисфония, кашель

Стридор, кашель; затрудненное глотание

180

Неизвестна

Инспираторная одышка, стридор, рвота сразу после приема корма

Стридор

Инспираторная одышка, стридор

Около 3, самец

105

Неизвестна

Стридор, вытягивание шеи

Инспираторная одышка, стридор, афония

12, самец

Стридор, афония, затрудненный прием твердого корма

14, самец

7, самец

Европейская короткошерстная

Стридор, инспираторная одышка

12, самец

Сибирская

Кашель, рвота сразу после еды или питья, стридор

14, самка

Продолжительность клинических признаков*, дни

Инспираторная одышка, стридор, кровохарканье

Стридор, афония

Клинические признаки

Кашель, стридор

12, самец

9, самка

Возраст, лет, пол

11, самка

Европейская короткошерстная

Порода

Случай

1. Информация о пациентах (n=13) с ОГ

ОНКОЛОГИЯ

2. Заболеваемость и выживаемость при ОГ у кошек (n=13)

Диагноз

Число случаев

Средний возраст, лет

Возрастной диапазон, лет

Плоскоклеточный рак

9–14

Европейская короткошерстная (5), сибирская (1)

0–76

Лимфома

3–14

Европейская короткошерстная (3), сибирская

0 и более 334

Плоскоклеточная папиллома

9,5

9–10

Европейская короткошерстная (1), персидская

3 и более 179

Низкодифференцированный рак

Европейская короткошерстная

Описание клинических случаев В период с ноября 2008 г. по июнь 2015 г. в клинике экспериментальной терапии НИИ Клинической онкологии ФГБНУ «РОНЦ им. Н. Н. Блохина» с ветеринарной клиникой «Биоконтроль» было зарегистрировано 13 случаев ОГ у кошек (табл. 1).

Обсуждение Цель данной статьи – изложить распространенность, клинические и патоморфологические признаки, методы диагностики и лечения ОГ у кошек. Все обнаруженные нами литературные источники по этой теме приведены в библиографии статьи. Гистологическое исследование биопсийного и секционного материалов пациентов клиники экспериментальной терапии НИИ Клинической онкологии ФГБНУ «РОНЦ им. Н. Н. Блохина» с ветеринарной клиникой «Биоконтроль» за период с ноября 2008 г. по июнь 2015 г.

зарегистрировало 13 случаев ОГ у кошек (таблица 2), всегда явившимися основным заболеванием данных животных. У собак ОГ за тот же временной интервал не обнаружены. В 5 случаях заболевание выявлено у самок, в 8 – у самцов; средний возраст больных составил 10,6 лет у самок, 11,0 лет – у самцов; в 10 случаях страдали европейские короткошерстные кошки, в двух – сибирская и в одном – персидская. Клиническими признаками ОГ явились стридор (n=13), инспираторная одышка (n=5), кашель (n=4), дисфония/афония (n=4), рвота пос ле приема пищи (n=2) и затрудненное глотание (n=2). Средняя продолжительность клинических признаков на момент первичного приема составила, дни: 32,8 при плоскоклеточном раке, 143 при лимфоме, 120 при плоскоклеточной папилломе; 90 при низкодифференцированном раке. И доброкачественные, и злокачественные

Рис. 5. Макропрепарат. Анапластическая лимфома гортани. Экзоэндофитная – выбухающая как в просвет органа (показано на фото), так и за пределы адвентиции; протяженность около 2,0 см (от основания надгортанника до первого кольца трахеи), захватывает обе половины органа; белая со светло-желтым очагом, бугристая

www.mirvet.com.ua

Выживаемость, дни

Порода

ОГ клинически агрессивны, поскольку создают обструкцию воздухоносного пути, их чаще диагностируют на поздней стадии болезни при появлении развернутой клинической картины. При первичном обращении в клинику владельцев животного почти всегда еще вовлечены либо соседние анатомические отделы органа (захватывая почти всю поверхность слизистой), либо и хрящи гортани с прилежащими мягкими тканями, что создает сложность их оперативного иссечения, а также определения исходной локализации даже после гистологического исследования. Так, эвтаназия (n=7) либо гибель (n=4) кошек при ОГ были следствием основного заболевания (за исключением случая № 3, когда плоскоклеточный рак гортани осложнился пневмонией); сопутствующими заболеваниями явились лишь плоскоклеточный рак грудного отдела трахеи (случай № 2), аденома доли щитовидной железы (случаи № 6 и 11),

Рис. 6. Макропрепарат. Лимфома гортани. Экзоэндофитная; протяженность около 2 см, белая с очагами умеренного полнокровия, бугристая; выбухающая над слизистой оболочкой органа (преимущественно справа) от основания надгортанника до второго кольца трахеи

МИР ВЕТЕРИНАРИИ

ОНКОЛОГИЯ

Рис. 7. Ларингоскопия. Опухоль гортани – розовая, умеренно бугристая, на широком основании, с четкими границами в области левой голосовой складки. Новообразование показано черной стрелкой, мягкое нёбо – зеленой, голосовая щель показана желтой стрелкой, тубус показан белой стрелкой. Надгортанник не визуализируется (смещён эндоскопом вентрально) аденоматоз поджелудочной железы (случай № 11) и гипертрофическая кардиомиопатия (случаи № 2 и 11). Метастатическое поражение РЛУ отмечено в 3 случаях плоскоклеточного

Рис. 8. Микропрепарат. Гистологический срез опухоли гортани. Фрагмент ткани, покрытый многослойным плоским эпителием, с массивной пролиферацией лимфоидных клеток. Гематоксилин и эозин, ув. ×1000

рака гортани и в случае низкодифференцированного рака гортани; отдаленные метастазы (в легких) выявлены при плоскоклеточном раке гортани (n=2). Патологоанатомическое

исследование органов грудной и брюшной полостей проводилось всем трупам кошек, за исключением случая № 5 (в связи с отказом владельцев от аутопсии). В случаях лимфомы

ОНКОЛОГИЯ

Рис. 9. Макропрепарат. Новообразование основания надгортанника и преддверия гортани; неправильной формы, около 1,8 см, бугристое, белое с некрозами зеленого цвета

Рис. 10. Микропрепарат. Гистологический срез опухоли гортани. Мелкий фрагмент папиллярной структуры, покрытый многослойным плоским эпителием. В субэпителиальных отделах – комплексы многослойного плоского эпителия без нарушения стратификации эпителиальных слоев, что исключает диагноз рака. Эпителиальные комплексы в подслизистом слое являются вероятно фрагментами базальных реактивных разрастаний. Гематоксилин и эозин, ув. ×400 гортани не отмечено ее признаков в лимфоузлах и других органах. Первые инструментальные методы диагностики ОГ – рентгенография шеи и УЗИ гортани, которые могут выявить мягкотканный компонент

однородной структуры в проекции органа. При дальнейшей ларингоскопии чаще обнаруживают массивное новообразование слизистой оболочки органа на широком основании, суживающее его просвет. Однако при поражении опухолью краниальной части гортани (например, надгортанника, черпаловидных хрящей или голосовой складки) возможна ее визуализация уже через ротовую полость под общей анестезией. Цитологическое и гистологическое исследования биопсийного материала позволяют определить морфологический тип опухоли и тактику дальнейшего лечения. При врастании ОГ в прилежащие мягкие ткани или ее метастазировании в РЛУ (выявлены у девяти животных), новообразование либо увеличенные лимфоузлы в большинстве случаев пальпируются. Паранеопластический синдром при ОГ нехарактерен – отмечена лишь тромбоцитопения (60 тыс./мкл) при лимфоме органа (случай № 6). При ларингоскопии дифференцировать ОГ необходимо от такой еще более редко выявляемой нами ларингеальной патологии у кошек, как ларингит (диагностирован в единичных случаях; проявлялся, преимущественно, в виде отека и гиперемии голосовой щели). Паралич гортани, возникший вследствие нарушения иннервации органа, диагностирован нами лишь однажды (в период

www.mirvet.com.ua

с ноября 2008 г. по июнь 2015 г.); проведена операция: латерализация. Лечение ОГ может быть консервативным и/или оперативным. Ларингэктомия при ОГ у кошек не приведет к выздоровлению. Эндоскопическая резекция возможна при папилломе гортани, поскольку эта опухоль, в отличие от злокачественных новообразований, чаще расположена на нешироком основании в области голосовой складки, что облегчает выполнение операции. Трахеостомия – паллиативная мера восстановления функции дыхания у кошек с обтурацией гортани; однако трахеостома у кошек часто забивается слизью (в связи с чем необходима ее регулярная санация) или смещается. Трахеостомия в комплексе с ЛТ и ФДТ (случай № 6), с ХТ (случай № 10) и с эндоскопической резекцией и ЛТ (случай № 13) помогли достигнуть ремиссий у 3-х пациентов в нашем исследовании. Никаких местных либо системных осложнений после ЛТ или ХТ не наблюдали.

Заключение По данным клиники экспериментальной терапии НИИ Клинической онкологии ФГБНУ «РОНЦ им. Н. Н. Блохина» с ветеринарной клиникой «Биоконтроль», ОГ составляют около 0,5 % от всех новообразований в структуре онкологических заболеваний у кошек. Основной диагностический метод выявления ОГ – ларингоскопия органа с последующим морфологическим анализом взятых образцов. На сегодняшний день OГ у кошек чаще всего не удается излечить. Продолжительность жизни одиннадцати кошек в нашем исследовании после постановки диагноза «опухоль гортани» не превышала 76 дней; двое пациентов живы на момент сдачи номера в печать. Такие низкие показатели выживаемости также связаны с проведением эвтаназии животных (до наступления той стадии болезни, при которой наступила бы их гибель), в связи с отказом владельцев от биопсии ОГ и ее дальнейшего лечения. В случае папилломы гортани (в области правой голосовой складки) проведена ее эндоскопическая резекция с трахеостомией; ремиссия составила около 116 дней (при контрольной ларингоскопии, проведенной на

МИР ВЕТЕРИНАРИИ

ОНКОЛОГИЯ

Литература: 1. Быкова В.П. Опухоли гортани. В книге: Патологоанатомическая диагностика опухолей человека. Том 1. / Под ред. Н.А. Краевского, А.В. Смольянникова, Д.С. Саркисова. — М.: Медицина, 1993 – 560 с. 2. Byhardt R.W., Almagro U. The role of radiation therapy in the treatment of recurrent adult laryngeal papillomatosis // Am J Clin Oncol. ― 1988 Apr. ― N. 11(2). ― P. 131‒137.

116-й день после эндоскопической резекции опухоли, выявлен рецидив, однако общее состояние животного удовлетворительное и на 179-й день после операции). Наилучший показатель ремиссии (более 334 дней) получен у животного с лимфомой гортани, что объясняется хорошей чувствительностью опухоли к ХТ.

Summary

3. Carlisle C.H., Biery D.N., Thrall D.E. Tracheal and laryngeal tumors in the dog and cat: literature review and 13 additional patients // Veterinary Radiology&Ultrasound. ― 1991. ― N. 32 (5). ― P. 229‒235.

Laryngeal tumors in cats: a review of 13 cases.

4. Costello M.F., Keith D., Hendrick M., King L. Acute upper airway obstruction due to inflammatory laryngeal disease in 5 cats // Journal of Veterinary Emergency and Critical Care. ― 2001. ― N. 11 (3). ― P. 205‒211.

Clinic of Experimental Therapy of National Research Institute of Clinical Oncology FGBSI «ROSC N.N. Blokhin»; Veterinary Clinic «Biocontrol» (Moscow).

5. Ensley J.F., Gutkind J.S., Jacobs J.R., Lippman S.M. Head and Neck Cancer: Emerging Perspectives ― San Diego, California: Academic Press, 2003. P. 602. 6. Guenther-Yenke C.L., Rozanski E.A. Tracheostomy in cats: 23 cases (1998‒2006) // J Feline Med Surg. ― 2007 Dec. ― N. 9(6). ― P. 451‒457. 7. Hug E.B., Wang C.C., Montgomery W.W., Goodman M.L. Management of inverted papilloma of the nasal cavity par paranasal sinuses: Importance of radiation therapy // Int J Radiat Oncol Biol Phys. ― 1993. ― N. 26(1). ― P. 67‒72. 8. Jakubiak M.J., Siedlecki C.T., Zenger E., Matteucci M.L., Bruskiewicz K.A., Rohn D.A., Bergman P.J. Laryngeal, laryngotracheal, and tracheal masses in cats: 27 cases (1998‒2003) // J Am Anim Hosp Assoc. ― 2005 Sep-Oct. ― N. 41(5). ― P. 310‒316. 9. Lam A.L., Beatty J.A., Moore L., Foster D.J., Brain P., Churcher R., Angles J., Lam R.W., Barrs V.R. Laryngeal disease in 69 cats: a retrospective multicentre study // Aust Vet Pract. ― 2012. ― N. 42(4). ― P. 321‒326. 10. Lieberman L.L. Feline adenocarcinoma of the larynx with metastasis to the adrenal gland // J Am Vet Med Assoc. ― 1954 Aug. ― N. 125(929). ― P. 152‒154. 11. Macphail C. Laryngeal disease in dogs and cats // Vet Clin North Am Small Anim Pract. ― 2014 Jan. ― N. 44(1). ― P. 19‒31. 12. Marconato L., Buchholz J., Keller M., Bettini G., Valenti P., Kaser-Hotz B. Multimodal therapeutic approach and interdisciplinary challenge for the treatment of unresectable head and neck squamous cell carcinoma in six cats: a pilot study // Vet Comp Oncol. ― 2013 Jun. ― N. 11(2). ― P. 101‒112. 13. Schnadig V.J., Clark W.D., Clegg T.J., Yao C.S. Invasive papillomatosis and squamous carcinoma complicating juvenile laryngeal papillomatosis // Arch Otolaryngol Head Neck Surg. ― 1986 Sep. ― N. 112(9). ― P. 966‒971. 14. Stepnik M.W., Mehl M.L., Hardie E.M., Kass P.H., Reimer S.B., Campbell B.G., Mison M.B., Schmiedt C.W., Gregory C.R., Hobson H.P. Outcome of permanent tracheostomy for treatment of upper airway obstruction in cats: 21 cases (1990‒2007) // J Am Vet Med Assoc. ― 2009 Mar. ― N. 234(5). ― P. 638‒643. 15. Taylor S.S., Goodfellow M.R., Browne W.J., Walding B., Murphy S., Tzannes S., Gerou-Ferriani M., Schwartz A., Dobson J.M. Feline extranodal lymphoma: response to chemotherapy and survival in 110 cats // J Small Anim Pract. ― 2009 Nov. ― N. 50 (11). ― P. 584‒592. 16. Taylor S.S., Harvey A.M., Barr F.J., Moore A.H., Day M.J. Laryngeal disease in cats: a retrospective study of 35 cases // J Feline Med Surg. ― 2009 Dec. ― N. 11(12). ― P. 954‒962. 17. Wheeldon E.B., Amis T.C. Laryngeal carcinoma in a cat // J Am Vet Med Assoc. ― 1985 Jan 1. ― N. 186(1). ― P. 80‒81. 18. Withrow S.J., D.M. Vail Small animal clinical oncology ― Philadelphia: Saunders Elsevier Publisher, 2007. P. 846.

№3 май-июнь 2015

D.E. Mitrushkin, A.L. Kuznetsova, A.A. Shimshirt, L.V. Golub, M.V. Rodionov, E.A. Kornyushenkov.

The retrospective study describes 13 cases of morphologically confirmed laryngeal tumors that are considered to be rare in cats (6 squamous-cell carcinoma; 4 lymphoma; 2 papilloma; 1 poorly differentiated carcinoma). Stridor and inspiratory dyspnea were the most common clinical signs. The survival times of the nontreated animals (n=10) were 0-65 days. The cat with laryngeal squamous-cell carcinoma treated with tracheostomy, photodynamic therapy and radiation therapy (a total dose of 30 Gy) survived for 76 days. Remission duration of the cat with laryngeal lymphoma treated with tracheostomy and COP-based chemotherapy was over 334 days (alive at the time of publication). Remission duration of the cat with endoscopically resected laryngeal papilloma, tracheostomy and radiation therapy (a total dose of 11 Gy) was approximately 116 days (alive at the time of publication).

ВИЗУАЛЬНАЯ ДИАГНОСТИКА В. Г. Стовба врач-рентгенолог, главный радиолог ветеринарного радиологического портала xray.com.ua, г. Полтава

ВЫВИХ КОЛЕННОЙ ЧАШЕЧКИ У СОБАК И КОШЕК: ОСОБЕННОСТИ ВИЗУАЛЬНОЙ ДИАГНОСТИКИ чашечки вносят вклад уменьшение желобка бедренной кости для коленной чашечки, малые размеры коленной чашки, искривление продольной оси бедра, а также слабость мышечного и связочного аппарата, остеоартриты, травмы и воспалительные процессы коленного сустава. В случае постоянного сдвига это смещение называется вывихом коленной чашки. В случаях, когда смещение носит лишь частичный или временный характер, оно называется подвывихом («дислокация», «выскальзывание», «люксация»). У собак наследственные вывихи коленной чашечки происходят чаще всего в медиальном направлении,

б Рис. 1. Кости, образующие коленный сустав у собаки (а) и кошки (б)

Вывих коленной чашечки у собак – это патология, при которой коленная чашечка смещается из желоба блока бедренной кости относительно нормального положения внутрь (медиально) или наружу (латерально). Точная причина медиального вывиха не установлена, предположительно это наследственное заболевание. Лефлер и Майер (1964) считают, что важнейшей причиной вывиха коленной чашечки являются гипоплазия мыщелков и уплощение гребней блока бедренной кости для коленной чашечки. Кроме того, в этиологию вывихов коленной

что подтверждается многочисленными исследованиями Визнера, Виллера, Спайра, Лефлера, Майера и многих других. Вывих коленной чашечки часто сопровождается или осложняется краниальным разрывом крестообразной связки, что делает собаку инвалидом. Как вывих, так и подвывих, может быть как односторонним, так и двусторонним. В легких случаях эти дефекты практически не отражаются на движениях собаки, однако способствуют травматизации конечности. В тяжелых случаях развивается устойчивая хромота. Эти дефекты сустава широко распространены и в сильной степени наследственно обусловлены. Очень молодые собаки могут не выказывать явных признаков и симптомов проявления вывиха коленной чашечки, но с возрастом несомненной будет тенденция ухудшения состояния конечности и легкая степень вывиха пателлы плавно переходит в более тяжелые степени. Этот механический процесс воздействия на коленную чашечку необратим. Поэтому, при малейших признаках намека на данное заболевание необходимо обратиться к врачу. Это заболевание способно воздействовать на органы собаки, причиняет деформацию скелета. Очень часто этим заболеванием начинают страдать суки после родов, так как вынашивание щенков, увеличение массы

Рис. 2. Мышцы и связки области коленного сустава, макропрепарат

www.mirvet.com.ua

МИР ВЕТЕРИНАРИИ

ВИЗУАЛЬНАЯ ДИАГНОСТИКА

Рис. 3. Схема поперечного сечения коленного сустава

Рис. 4. Поперечное сечение коленного сустава, макропрепарат тела дают несомненное воздействие на конечности собаки.

Анатомия (рис. 1–6) Коленный сустав объединяет бедроберцовый сустав, сустав коленной чашки и проксимальный межголенный сустав (рис. 1). Бедробольшеберцовый сустав является сложным, так как в его формировании помимо дистального эпифиза бедренной кости и проксимального эпифиза большеберцовой кости принимают участие латеральный и медиальный мениски. Мениски имеют полулунную форму и сглаживают инконгруэнтные поверхности мыщелков, одновременно они служат буфером и увеличивают размах движений в суставе. Каждый из менисков имеет выпуклый тупой латеральный край и вогнутый острый медиальный край. Проксимально и дистально на менисках имеются суставные поверхности: проксимальная значительно вогнута и направлена в сторону мыщелков бедренной кости, а дистальная слабо вогнута и направлена к мыщелкам большеберцовой кости (рис. 3, 4). Движения менисков относительно костей очень незначительное: лишь во время сгибания коленного сустава

№3 май-июнь 2015

они (в большей степени латеральный) несколько смещаются каудально. Главные движения в суставе осуществляются между менисками и мыщелками бедренной кости. Классификация и предрасположенность По причинам возникновения вывихи коленных чашек можно разделить на врожденные, наследственные и травматические. Последние встречаются у собак любой породы и обычно случаются в результате удара по латеральной поверхности коленного сустава, вызывая повреждение латерального удерживателя разгибателей,

Рис. 5. Анатомия коленного сустава приводя к нестабильности и медиальному вывиху коленной чашки. Причина врожденного пателлярного вывиха точно не установлена. Заболевание чаще всего наблюдается у небольших

Рис. 6. Анатомия коленного сустава

www.veterinars.com

ВИЗУАЛЬНАЯ ДИАГНОСТИКА

Рис. 7. Схема нормального взаимоотношения в коленном суставе и медиального и латерального вывиха надколенника (прямая проекция) собак, таких как карликовый и той пудели, кавалер кинг чарльз спаниель, йоркширский терьер, чихуахуа и гриффон. Более чем в 95 % случаев, у данных пород собак, это медиальный вывих, сопровождающийся сопутствующей патологией – genu varum. (DeAngelis, M.,and Hohn, R.B., 1990 г.). Однако врожденный пателлярный вывих наблюдается и у собак более крупных пород: у боксера, гладкошерстного ретривера, лабрадора ретривера, а также у гигантских пород, таких как сенбернар, у которого латеральный вывих тоже связан с деформацией коленного сустава. У собак с застарелым бессимптомным пателлярным вывихом, хромота может появиться в результате повреждения крестовидной связки. Предрасположенность к этому возникает из-за недостатка краниальной поддержки, которую комплекс четырехглавой мышцы оказывает здоровому коленному суставу, поскольку четырехглавая мышца бедра является разгибателем коленного сустава, то она с большей вероятностью создает перерастяжение, которое способно повредить краниальную крестовидную связку, а не защитить ее. При лечении подобных случаев пателлярный вывих будет иметь большее значение, чем вторичное повреждение крестовидной связки, в зависимости от размера собаки. У некоторых собак, особенно у бультерьеров, встречается пателлярный подвывих. В этих случаях не может произойти смещение коленной чашечки из блокового углубления, и до наступления зрелости хромота незаметна. Смещение комплекса четырехглавой

мышцы подкатывает коленную чашку к медиальному краю головки суставного конца кости. Со временем суставной хрящ на краю и/или коленная чашечка изнашиваются, и обнажается субхондральная кость, в результате чего появляется боль и хромота. Чаще всего наблюдается медиальный врожденный вывих коленной чашки. А вот латеральный врожденный

хромота, увеличивается частота подвывихов или вывихов, приводя в итоге к устойчивому вывиху. Генетически обусловленные вывихи возникают, в основном, в течение первого года жизни животного, имеющего генетическую предрасположенность к вывиху коленной чашки. Например, недостаточное углубление в блоке бедренной кости, в основном, у мелких и карликовых пород собак или латеральный наклон дистального участка бедренной кости. Врожденная форма пателлярного вывиха, несомненно, связана с аномалиями развития конечности, которые приводят к смещению комплекса четырехглавой мышцы (четырехглавая мышца + коленная чашка + связка/сухожилие коленной чашки). Известны следующие основные анатомические аномалии коленного сустава, наблюдаемые в сочетании с врожденным медиальным пателлярным вывихом: • ретроверсия (отклонение каудально) головки и шейки бедренной кости; • альтерация (изменение) угла на-

Рис. 8. Схема нормального взаимоотношения в коленном суставе и медиального и латерального вывиха надколенника (боковая проекция) вывих вызывает более серьезные двигательные и опорные нарушения тазовой конечности. Наследственные вывихи Симптоматические вывихи возникают как симптом основного наследственного заболевания, например, при дисплазии ТБС, когда смещение комплекса четырехглавой мышцы подкатывает коленную чашку к медиальному краю суставного блока бедренной кости. Со временем суставной хрящ на краю блока и/или коленная чашечка изнашиваются, появляются боль,

www.mirvet.com.ua

клона тазобедренного сустава; • латеральный поворот и наклон дистальной части бедренной кости; • неглубокое углубление в головке суставного конца кости со слабо развитым медиальным краем; • дисплазия дистального бедренного эпифиза; • поворот и латеральная разболтанность сустава, относящегося к бедренной и большеберцовой костям; • медиальный наклон и поворот проксимальной части большеберцовой кости;

МИР ВЕТЕРИНАРИИ

ВИЗУАЛЬНАЯ ДИАГНОСТИКА

• наружный поворот коленного сухожилия; • уменьшение роста конечности. В случае врожденного латерального вывиха патологические изменения будут аналогичными, но, возможно, с физеальными нарушениями в случаях вальгусной деформации коленного сустава. Дискуссионным является такой факт: не являются ли видимые на рентгеновских снимках нарушения в тазобедренном суставе артефактами, причина которых кроется в неумении правильно уложить пациента по отношению к тазобедренным суставам, с имеющимися нарушениями, вызывающими пателлярный вывих. Нарушения, наблюдаемые в каждом конкретном случае, не являются статичными, и их количество может со временем возрастать. К примеру, латеральный наклон дистальной части бедренной кости может привести к медиальному пателлярному вывиху. При повторных вывихах медиальный край головки суставного конца кости может износиться, увеличивая, таким образом, частоту вывихов. Поскольку коленная чашка будет находиться меньше времени в углублении головки суставного конца кости, она останется недоразвитой и неглубокой. При медиальном расположении коленной чашечки она образует медиальное вытяжение на шероховатости большеберцовой кости, которая в ходе своего развития начинает отклоняться медиально. Поэтому нарушения, вызывающие перемежающийся вывих, могут привести к дальнейшей деформации и устойчивому вывиху. Необходимо отметить, что в процессе изменений в хрящевом покрове сустава и разрушения хондроцитов выделяется большое количество лизосомальных ферментов (металлопротеазы, липазы и т.д.), которые усиливают разрушение и разволокнение ещё оставшихся нормальных протеогликановых комплексов. Таким образом, в биомеханической и биохимической структуре сустава возникает порочный круг развития патологических процессов. Травматические вывихи Встречаются у собак любой породы и обычно случаются в результате удара по латеральной поверхности коленного сустава, вызывая повреждение

№3 май-июнь 2015

Рис. 9. Собака держит лапу в полусогнутом положении латерального удерживателя разгибателей и приводя к медиальному вывиху коленной чашки. Стоит помнить, что усугубить проблему в течение жизни может излишний вес животного.

Клинические симптомы При наличии у пациентов врожденного пателлярного вывиха, владельцы обращают внимание на перемежающуюся «подпрыгивающую» хромоту, которая то возникает, то пропадает по несколько раз в процессе нагрузки и не очень волнует собаку. При более устойчивом вывихе собака, обычно, держит лапу в полусогнутом положении (рис. 9); если заболевание носит двусторонний характер, в этом случае она припадает к земле при ходьбе и подпрыгивает, как кролик.

Латеральный врожденный вывих вызывает более сильные нарушения, чем медиальный. Пателлярный подвывих может стать причиной прогрессирующей хромоты коленного сустава, которая усиливается при нагрузке и вызывает скованность после отдыха. В случае травмы хромота вначале бывает острой при опоре на конечности всей тяжестью, с некоторыми улучшениями в первые несколько дней. В некоторых случаях застарелая слабая пателлярная нестабильность может усугубляться в результате травмы, полученной в более поздний период, при этом даже после небольших повреждений потребуется значительная хирургическая коррекция. Клиническое обследование должно состоять в исключении других возможных причин хромоты, таких как болезнь Легга-Пертеса, и других осложняющих факторов, например, вывиха тазобедренного сустава или повреждения крестовидной связки. При воздействии на коленный сустав часто не ощущается боль, за исключением тех случаев, когда присутствует эрозия суставной поверхности, например, при пателлярном подвывихе или растяжении мягких тканей при попытке редукции устойчивого вывиха. Может быть недостаточно объёма движений разгибания сустава, что оказывает влияние на прогноз, поскольку при заметных симптомах это может быть связано с контрактурой мягких тканей, каудальных по отношению к суставу, или, особенно у недоразвитых животных, с необратимыми эпифизарными нарушениями. Подобные патологические изменения могут повлиять на диапазон подвижности сустава, достигнутый после операции и значительно ухудшить ее результат (Х. Г. Ниманд, 2004 г.).

Рис. 10. Нормальное положение задних конечностей (а); положение задних конечностей при медиальном вывихе надколенника (б, в)

www.veterinars.com

ВИЗУАЛЬНАЯ ДИАГНОСТИКА

При I и II степени животное время от времени не наступает на конечность (щадит ее), коленный сустав находится в согнутом положении. При III и IV степени животное припадает к земле. При медиальном вывихе коленной чашечки отмечается О-образное (рис. 10) искривление конечностей, при латеральном вывихе – X-образное искривление; основной вес тела переносится на передние конечности. Хондромаляция коленной чашечки или блока бедренной кости причиняет боль. В зависимости от длительности течения и причин возникновения данной патологии клиническая картина при вывихах коленной чашки весьма разнообразна. По клинической картине пателлярные вывихи можно классифицировать следующим образом: Привычные вывихи • перемежающийся привычный вывих; • частый привычный вывих. Привычные вывихи характеризуются спонтанным смещением коленной чашки и самопроизвольным ее вправлением. Частота и динамика таких вывихов бывает различной. Нередко перемежающийся привычный вывих может наблюдаться у собаки (в основном, у мелких, карликовых или комнатных пород) всю жизнь и не прогрессировать. В этом случае у собаки изредка (например, один раз в 2–3 дня, а иногда и реже) или чаще, при нагрузке, возникает непродолжительная, так называемая подпрыгивающая хромота или животное вообще не пользуется конечностью и держит лапу в полусогнутом положении некоторое время, после чего функция конечности полностью восстанавливается. А вот частый привычный вывих, как правило, характеризуется уже эрозиями или артрозными изменениями со стороны суставных поверхностей коленного сустава, вследствие более частых и постоянных вывихов. На этом фоне хромота может отмечаться даже при нормальном положении коленной чашечки. Такие частые вывихи практически всегда приводят к стабильным вывихам.

Рис. 11. Схема стадийности вывиха коленной чашечки коленном суставе и повторный ее вывих при сгибании – разгибании сустава). • Мануально-невправимый стабильный вывих (невозможность вправления коленной чашки руками врача при любом положении коленного сустава). Стабильные вывихи характеризуются нарушением функции конечности различной степени тяжести. В зависимости от породы, причины вывиха, веса животного основные симптомы пателлярного вывиха следующие: • незначительная хромота с неправильной постановкой конечности; • сильная хромота с девиацией шероховатости большеберцовой кости в сторону вывиха (чаще медиально); • отсутствие опороспособности конечности; • нарушение амплитуды движений в коленном суставе (т.е. контрактура сустава). К побочным осложнениям длительного вывиха коленной чашки можно отнести следующие патологии: • деформации трубчатых костей тазовой конечности (бедренной или большеберцовой); • разрыв передней крестовидной связки коленного сустава; • артроз коленного сустава; • уменьшение роста конечности у собак до 8–9-месячного возраста.

Нарушения/осложнения, наблюдаемые в каждом конкретном случае, не являются статичными, и их количество может со временем возрастать. Классификация степеней деформации По традиции принято использовать классификацию Singleton’s (1969) для оценки степени деформации, связанной с вывихом, и вида необходимого лечения. Он разделил симптомы животных на 4 стадии (по анатомическим характеристикам) (рис. 11). • Стадия 1: Нормальное движение, иногда возможны случаи привычного вывиха коленной чашечки, при котором собака держит конечность на весу из-за боли. Вытягивание конечности пациентом или владельцем приводит к вправлению вывиха. В вытянутом положении конечности коленную чашечку можно пальцами вытянуть из сустава в медиальном направлении, после чего она самостоятельно становится на место. • Стадия 2: Частый вывих коленной чашечки, связанный с медиальной девиацией шероховатости большеберцовой кости на 15–30°. • Стадия 3: Устойчивый медиальный вывих коленной чашки, связанный с медиальной девиацией шероховатости большеберцовой кости на 30–60°. Углубление в головке

Стабильные вывихи • Мануально-вправимый стабильный вывих (вправление коленной чашки руками врача при разогнутом

Рис. 12. Медиальный вывих надколенника III степени, рентгенография правого коленного сустава собаки в прямой и боковой проекциях до и после оперативного лечения

www.mirvet.com.ua

МИР ВЕТЕРИНАРИИ

Витаминно-минеральные комплексы и средства защиты от эктопаразитов ТМ Vitomax Торговая марка Vitomax представляет на украинском рынке продукты для поддержания здоровья животных: профилактические и лечебные витаминноминеральные комплексы, а также средства против блох, клещей и других паразитов. 2

ормула витаминов ТМ Vitomax разработана швейцарскими специалистами совместно с европейскими ветеринарами, а производство продукции осуществляется в г. Харькове под тщательным контролем разработчиков.

1. В ассортименте витаминов для собак и кошек ТМ Vitomax – противовоспалительные для суставов собак, для кастрированных котов и стерилизованных кошек, для зубов и костей с кальцием и фосфором (для собак и для котов), для профилактики мочекаменной болезни у котов, противоаллергенный комплекс для собак, для шерсти с биотином (для собак и для котов), бреверс с чесноком (для собак и для котов). Помимо витаминно-минеральных комплексов, ассортиментный портфель торговой марки Vitomax представлен такими средствами защиты домашних питомцев, как ошейники, спреи, капли против блох и клещей, а так же фитошампуни.

2. ЭКО-капли на холку для собак и для котов – натуральные капли для отпугивания и уничтожения блох, клещей и других эктопаразитов, а также гигиены кожи и шерстного покрова собак и котов. Основными ингредиентами являются натуральные компоненты – композиция масел мяты, корицы, цинамона, лимона, гвоздики и полыни. Защита от одной капсулы (0,6 мл) длится на протяжении 1 месяца. В одной упаковке для собак – 4 капсулы, для котов – 3 капсулы. 3. ЭКО-ошейник против блох и клещей для собак, для котов и мелких собак – полимерная лента светло-зеленого цвета со специфическим запахом экстрактов растительных компонентов. Содержит только природные компоненты (композицию масел мяты, корицы, лимона, гвоздики, полыни; ванилин). Постоянное выделение природных репеллентов из мягкой фактуры ошейника обеспечивает защиту от паразитов на протяжении 3-х месяцев. 4. ЭКО-спрей против блох и клещей для собак, для котов, для декоративных грызунов, для декоративных птиц – натуральный аэрозоль, жидкость нежнозеленого цвета, основными ингредиентами которой являются масла мяты, корицы, лимона, гвоздики, полыни. Рекомендуется применять также перед прогулкой и/или поездкой на природу. 5. Фито-шампуни для собак и для котов – на основе экстрактов растений, полезных для шерсти и кожи. Шампуни обладают антипаразитарными свойствами, защищая питомцев от эндопаразитов. Фито-шампунь состоит исключительно из натуральных и природных компонентов, которые позитивно влияют на шерсть и кожу домашнего животного. Травы и масла, входящие в его состав, помимо укрепления и восстановления шерстяного покрова, увлажняют и заживляют кожу, устраняют воспалительные реакции, смягчают и питают шерсть, обогащая ее необходимыми витаминами и повышая защитные силы организма. Благодаря активной работе высококвалифицированных специалистов ассортимент торговой марки Vitomax перманентно расширяется, а технологии производства и качество готовой продукции постоянно совершенствуются.

Эксклюзивный дистрибьютор продукции ТМ Vitomax в Украине – ООО «Лайф-Групп» Харьков, Украина. Тел.: +38 (099) 770-21-07; e-mail: director@life-group.com.ua www.vitomax.com.ua

ВИЗУАЛЬНАЯ ДИАГНОСТИКА

суставного конца бедренной кости, обычно, неглубокое. • Стадия 4: Устойчивый медиальный вывих коленной чашечки, связанный с медиальной девиацией шероховатости большеберцовой кости на 60–90°. Углубление в головке суставного конца бедренной кости отсутствует или выпуклое. Однако оценка степени поворота шероховатости большеберцовой кости очень субъективна, и надежнее применять более простые описания стадий, которые приводит Putnam (1968): • Стадия 1: Перемежающийся пателлярный вывих, сопровождаемый мануальным смещением при полном разгибании сустава и спонтанной редукцией при устранении смещения. Следует отметить, что колено не может сгибаться, когда коленная чашка находится вне своего анатомического расположения. У собак с такой стадией вывиха редко бывают сложности. Эти животные обычно не оперируются, так как это состояние редко приводит к дегенеративным изменениям сустава. • Стадия 2: Частый пателлярный вывих при сгибании сустава или надавливании пальцами, при этом спонтанная редукция не всегда происходит сразу. Животные с этой степенью склонны к зачашечной хондромаляции и околоблоковому остеофитозу, приводящим к тому, что коленная чашка часто скользит за пределы суставного блока и обратно, стирая хрящ с глубоким его повреждением и вызывая остеоартритный ответ. Хирургическое вмешательство должно быть проведено до возникновения дегенеративных изменений сустава. Наиболее подходящее время – после закрытия проксимального большеберцового эпифиза. • Стадия 3: Устойчивый пателлярный вывих, при котором мануальная редукция невозможна, но после устранения его происходит спонтанный повторный вывих. Собаки с 3-й стадией – претенденты на хирургическое вмешательство (рис. 12) с того момента, когда консервативные методы не дают эффекта и начинают развиваться дегенеративные изменения в суставе.

Рис. 13. Медиальный вывих надколенника IV степени, рентгенография коленных суставов собаки в прямой проекции • Стадия 4: Устойчивый пателлярный вывих, при котором мануальная редукция невозможна (рис. 13). Оперативное исправление вывиха четвертой стадии не объективно. Если попытаться, то необходимо выполнять операцию в возрасте 6–8 мес. (до года), когда мыщелки бедренной кости и плато большеберцовой кости еще не подверглись пластической деформации, которая не может быть исправлена оперативным вмешательством (Х. Денни; С. Баттервоор, 2004 г., De Angelis, M. and Hohn, R.B. 1990 г.). Хотя эти стадии не всегда соответствуют клиническим симптомам, они помогают следить за развитием заболевания у молодых животных, у которых отсутствуют симптомы, или при планировании определенного вида хирургического вмешательства при наличии хромоты. Хотя требуемые методы воздействия часто определяются во время операции, знание клинической стадии тоже приносит некоторую пользу. Например, при первой стадии вывихи можно лечить консервативным путем при отсутствии симптомов, или путем укрепления латерального удерживателя разгибателя; при вывихах 1-й и 2-й стадии не всегда требуется устранение медиальной капсулы; при вывихах 2–4-й стадий требуется латеральная транспозиция шероховатости большеберцовой кости; вывихи 3-й и 4-й стадии требуют устранения медиального удерживателя разгибателей и, вероятно, увеличения углубления в головке суставного конца бедренной кости.

www.mirvet.com.ua

Рис. 14. Рентгенограмма тазобедренных и коленных суставов в прямой проекции, правильная укладка Рентгенографическое исследование Рентгенографическое исследование помогает подтвердить клинический диагноз путем исключения остальных причин хромоты коленного сустава, в более тяжелых случаях – показывает вывих коленной чашечки и наличие костной деформации (Х. Г. Ниманд, 2004 г.). Многие специалисты не прибегают к рентгенологическому исследованию коленных суставов при этой патологии, но это не совсем верно, так как рентгенограмма позволяет зачастую выявить причину вывиха коленной чашечки. Это может быть искривление дистального эпифиза бедренной кости, искривление проксимального эпифиза большеберцовой кости, патология развития гребня большеберцовой кости, к которому крепится прямая связка коленной чашечки и если гребень находится более медиально, то он как бы утягивает за собой коленную чашечку внутрь. При определенной проекции можно увидеть, что желоб коленной чашечки настолько гладкий, что коленная чашечка в нем не может удерживаться, и постоянно вывихивается. Рентгеновские снимки коленного сустава необходимо делать в двух проекциях – в передне-задней (рис.

МИР ВЕТЕРИНАРИИ

ВИЗУАЛЬНАЯ ДИАГНОСТИКА

через межмыщелковую ямку (fossa intercondylaris) (рис. 17). Нижний полюс коленной чашки должен лежать на продолжении линии Blumensaat или немного выше (не >1 cм) при согнутом на 30° коленном суставе. На рентгеновских снимках будет видна степень поражения и разрушения сустава, градус поворота костей, состояние желобка на коленном суставе (рис. 19). На снимке можно увидеть периартикулярные остеофиты, свидетельствующие о патологических изменениях, связанных с остеоартритом, хотя их часто не бывает у собак мелких пород даже при застарелом заболевании.

Рис. 15. Рентгенограммы коленных суставов (а – правого, б – левого) в прямой проекции, нормальное положение коленной чашечки

Рис. 16. Рентгенограммы правого коленного сустава в прямой проекции, (а – латеральный вывих; б – медиальный вывих) 14) и боковой (Позябин С.В., 2004 г.) и желательно не только коленного, но и тазобедренного суставов. Колено разогнуто, коленная чашка обращена краниально. Определяют отношение большеберцовой кости, положение оси бедра, оси большеберцовой кости и угол между ними, измеряют ширину и высоту коленной чашки, ее отстояние от суставной щели (рис. 15, 16).

№3 май-июнь 2015

Стандартный снимок делают в согнутом (на 30°) положении коленного сустава, под прямым углом к переднезаднему снимку. Иногда, для определения состояния надколенно-бедренного сустава, делают дополнительные боковые снимки коленного сустава на 60 и 90°. При изучении снимка можно пользоваться вспомогательной линией Blumensaat, проведенной

www.veterinars.com

Рис. 17. Рентгенограмма коленного сустава собаки в боковой проекции, нормальное положение коленной чашечки (а), с обозначенной линией Blumensaat (б)

ВИЗУАЛЬНАЯ ДИАГНОСТИКА

Рис. 18. Рентгенограммы коленного сустава в боковых проекциях: а – вывих надколенника; б – нормальное соотношение в суставе

Рис. 20. Латеральный подвывих коленной чашечки, гонартроз

На рентгенограмме визуализируются вывихи коленной чашечки III–IV степени, также на снимке можно увидеть вторичные изменения в суставе в виде гонартроза (артроз коленного сустава – дегенеративные изменения в суставе) (рис. 20, 21). Вывих коленной чашки у кошек Вывих коленной чашки – смещение коленной чашечки относительно нормального положения на блоке бедренной кости. Вывих коленной чашечки является распространенным заболеванием кошек с рецессивным, полигенным наследованием. Вывих более чем в 75 % случаев происходит в медиальном направлении, в 50 % отмечается двусторонний вывих. Клинически заболевание может проявиться вскоре после рождения, но чаще всего оно обнаруживается после 4 мес. Предрасположенность выше у самок. Кошки болеют реже и чаще встречается у кошек пород: корниш-рекс и персидская. Степень проявления заболевания колеблется между легкой и тяжелой формами. Наиболее часто при вывихе коленной чашечки наблюдаются ротация большеберцовой кости вокруг ее продольной оси, искривление дистального и проксимального отделов большеберцовой кости, отсутствие или плохая выраженность вырезки блока бедренной кости, дисплазия эпифизов бедренной и большеберцовой костей, смещение порций четырехглавой мышцы. В связи с различной степенью выраженности клинических и патологических изменений была разработана

Рис. 19. Двусторонний медиальный вывих надколенника специальная классификация вывиха (I–V степени). Помимо генетических факторов к вывиху коленной чашечки предрасполагает травма. Факторами риска являются соха vara – 0-образное искривление конечностей (уменьшение угла между шейкой и продольной осью диафиза бедренной кости) и соха valga – X-образное искривление конечностей (увеличение угла между шейкой и продольной осью диафиза бедренной кости). При соха vara возрастает риск медиального вывиха, при соха valga – латерального. Другим способствующим фактором является чрезмерное смещение кпереди

www.mirvet.com.ua

Рис. 21. Латеральный вывих надколенника слева; деформация проксимальной трети большеберцовой кости левой голени бедренной кости (отклонение кпереди головки и шейки бедренной кости).

Дифференциальная диагностика: • Болезнь Легг-Кальве-Пертеса; • Вывих в тазобедренном суставе; • Разрыв передней крестовидной связки (зачастую сопутствует медиальному вывиху надколенника); • Отрывные переломы шероховатости большеберцовой кости; • Разрыв сухожилия коленной чашки. Вывих коленной чашечки необходимо дифференцировать от разрыва краниальной крестообразной связки, который отмечается у 15–20 % собак,

МИР ВЕТЕРИНАРИИ

ВИЗУАЛЬНАЯ ДИАГНОСТИКА

страдающих хроническим вывихом. Пальпация помогает установить диагноз. Для разрыва верхней крестообразной связки характерен симптом верхнего выдвижного ящика. При отрывных переломах бугорка большеберцовой кости происходит ослабление механизма четырехглавой мышцы, что приводит к нестабильности коленной чашечки. Неправильное сращение и смещение бедренной или большеберцовой кости могут привести к смещению всех порций четырехглавой мышцы.

Лечение вывихов коленной чашки От причин патологии зависит и выбор метода лечения, в том числе оперативного метода. Считается, что если вывих коленной чашечки у молодого животного, который не приводит к клинически выраженной хромоте, лечить нет необходимости, но у некоторых пациентов ближе к зрелому возрасту могут

Рис. 22. Медиальный вывих надколенника – до и после операции развиться вторичные изменения в суставе, более того, при сильной степени вывиха кости во время роста могут искривляться, усложняя патологию. Лечение вывихов коленной чашки бывает консервативным и оперативным. Консервативное лечение показано, в основном, при перемежающемся привычном вывихе и при отсутствии видимых или рентгенологических изменений. Суть лечения заключается в применении анаболических

стероидов, в правильном кормлении, в снижении веса животного (если есть избыток массы тела), и параллельно в поощрении нагрузок, оптимальных, для каждого конкретного животного. Оперативное лечение. Суть большинства операций состоит в восстановлении нормального механизма работы комплекса «четырехглавая мышца бедра – коленная чашка – шероховатость большеберцовой кости». Следовательно, если у молодого животного обнаруживается вывих

ВИЗУАЛЬНАЯ ДИАГНОСТИКА

коленной чашечки II–IV степени, то рекомендуется лечить патологию хирургически. Оптимальный возраст 5–7 месяцев. В этом возрасте животные хорошо переносят операцию и быстрее восстанавливаются. Хирургическое лечение вывиха коленной чашки включает следующие методики: 1. Укрепление латерального/медиального удерживателя коленной чашки (применяется при травматических вывихах и отсутствии других предрасполагающих деформаций, особенно костных): а. создание дупликатуры капсулы коленного сустава со стороны, противоположной вывиху; б. вязочно-мышечная пластика со стороны, противоположной вывиху. 2. Транспозиция шероховатости большеберцовой кости в сторону, противоположную вывиху (применяется при медиальной девиации шероховатости большеберцовой кости). 3. Устранение медиального/латерального удерживателя коленной чашки (данный метод обычно не применяется изолированно от других, т.к. не ликвидирует имеющуюся проблему). 4. Корректирующая остеотомия (применяется редко и только в случаях сильного наклона дистальной части бедренной кости или проксимальной части большеберцовой кости). 5. Увеличение межмыщелкового углубления в дистальном блоке бедренной кости (применяется при мелком углублении в дистальном блоке бедренной кости или при слабо развитом медиальном крае суставного блока бедренной кости, с использованием так называемой V-сулькопластики). Прогнозы Прогнозы зависят от степени вывиха. При I и III степени вывиха после грамотно проведенной хирургической коррекции прогнозы благоприятные. Как правило, животное снова может полноценно пользоваться конечностью и при внешнем осмотре нельзя сказать, что оно ранее испытывало такую серьезную проблему. При IV степени вывиха прогнозы ближе к неблагоприятным.

Литература: 1. Archibald J: Canine Surgery. American Veterinary Publications, Santa Barbara, CA, 1974.

23. Pearson PT: Alloy prosthesis to aid in correction of persistent patellar luxations. Anim Hosp 2: 191, 1966.

2. Blaney AJ: Surgical repair of a bilateral, lateral luxation of the patellae in a dog. North Am Vet 32:101, 1951.

24. Pearson PT, Ramsey FK: Evaluation of polytetrafluoroethylene implants to correct canine medial patellar luxations. J Am Vet Med Assoc 143:843, 1963.

3. Brinker WO, Kellar WE: Rotation of the tibial tubercle for correction of luxation of the patella. MSU Vet 22:92, 1962. 4. Brinker WO, Piermattei D, Flo G: Handbook of Small Animal Orthopedics and Fracture Treatment, p 290. Philadelphia, WB Saunders, 1983. 5. Campbell JR, Pond MJ: Capsular overlap for luxated patella. Mod Vet Pract 53:44, 1972. 6. Cassidy HJ, Degeer TR: Repair of ruptured lateral patellar ligament. Can Vet J 4:21 1963. 7. Craver NS: Removal of patella and its possibilities. North Am Vet 19:55, 1938. 8. Flecknell PA, Grudffydd-Jones TJ: Congenital luxation of the patellae in the cat. Feline Pract 9:18, 1979. 9. Haas KB, Milaknis A: Metallic fixation of the patella. J Am Vet Med Assoc 118:90, 1951. 10. Harrison JW: The pelvic limb: III. Patellar dislocation. Am Anim Hosp Assoc 42:453, 1975. 11. Herron MR: Medial luxation of the canine patella: A simple technic for surgical correction. Mod Vet Pract, 50:30, 1969. 12. Hutt FB: Genetic Defects of Bones and Joints in Domestic Animals. Cornell Vet. 58:104, 1968. 13. House D: Surgical repair of medial patellar luxations in dogs. Can Vet J 2:425, 1961. 14. Jonas S: Surgical reduction of medial patella dislocations. J Am Vet Med Assoc 113:556, 1948. 15. Kaplan B: Surgical palliation of bilateral congenital medial patellar luxation in a dog. Vet Med/ Small Anim Clin 66: 1971. 16. Kodituwakku GE: Luxation of the Patella in the Dog. Vet. Rec. 74:1499, 1962. 17. Leighton RL: A technic for repair of medial patellar luxation in the dog. Vet Med/Small Anim Clin 65: 365, 1970. 18. Leighton RL: Repair of bilateral medial patellar luxation in a cat. Feline Pract 8:23, 1978. 19. Mackey HW, McCune RF: Surgical correction of congenital patellar luxation. Mod Vet Pract 48:52, 1967. 20. McLean RT: Symptomatic relief for patellar luxation in the toy poodle. Small Anim Clin 3:436, 1963. 21. Miller ME, Christensen GC, Evans HE: Anatomy of the Dog. Philadelphia, WB Saunders, 1964. 22. Palumbo NE: A new technic for repair of canine patellar luxations. Mod Vet Pract 52:51, 1971.

www.mirvet.com.ua

25. Pettit GD: Patellectomy in the dog. Mod Vet Pract 50:22,1969. 26. Priester WA: Sex, Size and Breed as Risk Factors in Canine Patellar Luxation. J Am Vet Med Assoc. 160:740, 1972. 27. Price DJ: A method for correcting patellar luxations. North Am Vet 36:132, 1955. 28. Putnam: Patellar Luxation in the Dog. Master’s thesis, University of Guelph, 1968. 29. Richards CD: Surgical correction of medial patellar luxation: Tibial crest transplantation and trochlear arthroplasty. Vet Med/Small Anim Clin 70:322, 1975. 30. Rudy RL: The Stader method for correction of patellar luxation. Mod Vet Pract 46:28, 1965. 31. Rudy RL: Inheritance of patellar anomalies in dogs. Mod Vet Pract 47:54, 1966. 32. Schmoker EA: The removal of the patella in the dog. Mod Vet Pract 41:48, 1960. 33. Shuttleworth AC: Dislocation of the patella in the dog. Vet Rec 1935. 34. Singleton WB: The surgical correction of stifle deformities in the dog. J Small Anim Pract 10:59, 1969. 35. Slocum B: Trochlea recession for patellar stabilization. Presented at the 15th Annual Meeting of the American College of Veterinary Surgeons, 1980. 36. Stader O: Reinforcement of the lateral patellar ligament for correction of recurrent patellar luxation in the dog. North Am Vet 25:737, 1944. 37. Swaim SF, Miller LN: A surgical technic for correction of lateral patellar luxation in the dog. vet Med/Small Anim Clin 64:512, 1969. 38. Torg JJ: Anterior cruciate ligament substitution utilizing fibular head osteotomy with lateral collateral ligament and biceps tendon advancement technique. Presented at 50th Meeting of the American Academy of Orthopaedic Surgeons, Anaheim, CA, 1983. 39. Vierheller RC: Surgical correction of patellar ectopia in the dog. J Am Vet Med Assoc 134:429, 1959 36. Winner P: Recurrent dislocation of the patella. Clin Orthop Rel Res 65:213, 1970. 40. Zaslow IM: Repair of chronic patellar luxation. Mod Vet Pract 53:43, 1972.

МИР ВЕТЕРИНАРИИ

SOUTHERN EUROPEAN VETERINARY CONFERENCE 50 CONGRESO NACIONAL AVEPA

XII Congreso FIAVAC

Federación Iberoamericana de Asociaciones Veterinarias

15 - 17 October 2015 BARCELONA, Spain

Этот клинический случай будет представлен Dr. L. Beco на Южноевропейской ветеринарной конференции в Барселоне 15–17 октября 2015 года

ДИАГНОСТИКА ЛИСТОВИДНОЙ ПУЗЫРЧАТКИ 10-летняя сука, метис, была представлена на осмотр к дерматологу по поводу гнойных поражений кожи, сильно выраженного зуда и зловония, исходящего от собаки. Такое состояние отмечалось годом ранее, когда собаку взяли в дом. Назначение многочисленных препаратов (амоксиклав, цефовецин, ивермектин, метилпреднизолон) не оказало какого-либо заметного эффекта. Клинический осмотр выявил вялость и гипертермию у собаки. При дерматологическом обследовании обнаружили генерализованные поражения, характеризующиеся наличием корок, гнойного экссудата, покрывающего эрозии и крупные пустулы. Толстые корки и обширные эрозии наблюдались на ушных раковинах. При этом нос и подушечки лап затронуты не были. Также присутствовал тяжелый двусторонний гнойный отит. Процедуры и их результаты были следующими: • Цитологический мазок из нетронутых пустул: не измененные нейтрофилы и многочисленные акантолитические кератиноциты.

• Цитология из уха: обнаружены многочисленные бактерии (палочки). • Из уха выделены культуры таких микроорганизмов: Escherichia Coli, Streptococcus canis, Staphylococcus pseudintermedius, Bacteroides fragilis. • Общий анализ крови: отмечена нейтрофилия. • Кожная биопсия из нетронутых пустул: выявила подострый акантолитический пустулезный дерматит с не дегенеративными нейтрофилами и множеством акантолитических клеток. PAS окрашивание – отрицательное. Характерные клинические признаки наряду с результатами анализов позволили установить диагноз: листовидная пузырчатка (ЛП). Начальное лечение: преднизолон 10 мг/кг один раз в день в течение 3 дней (пероральная пульс-терапия глюкокортикоидами продемонстрировала более короткий период до наступления улучшения, более высокий процент полной ремиссии и меньшую долю смертности), азатиоприн – 25 мг/15 кг один раз в день, наружная обработка шампунем с хлоргексидином. Лечение наружного отита осуществляли препаратом для очистки ушей, а также суспензией, содержащей гентамицин, гидрокортизон и миконазол. После 4 дней собака стала активной и у нее отмечалось значительное улучшение дерматологических поражений. Дозировка преднизолона была снижена до 1 мг/кг один раз в день, остальные процедуры остались прежними. Спустя 13 дней отмечен рецидив и снова назначена повторная 3-дневная пульс-терапия преднизолоном. И снова после этого короткого кур-

Dr. L. Beco докладчик SEVC 2015

са отмечено улучшение, но некоторые корки остались преимущественно на спинке носа, шее и ушных раковинах. Пероральный прием преднизолона заменили дексаметазоном (0,1 мг/кг один раз в день) и местной обработкой спреем с гидрокортизоном. Частота приема дексаметазона была затем постепенно снижена до одного раза в три дня, в конечном итоге поражения подверглись ремиссии. Общий клинический и биохимический анализы крови проводились каждые 2 недели в течение 3 месяцев для мониторинга за возможными побочными эффектами лечения азатиоприном. Через 2 месяца после наступления полной ремиссии поражений к поддерживающей терапии был добавлен циклоспорин (5 мг/кг один раз в день), чтобы уменьшить побочные эффекты от применения глюкокортикоидов.

Заключение

Некоторые случаи ЛП трудно поддаются лечению и требуют комбинированной терапии для достижения ремиссии и минимизации побочных эффектов. Недавно было доказано, что оральная пульс-терапия глюкокортикоидами обеспечивает более быстрое наступление улучшений, более полную ремиссию в течение 3 месяцев и более низкий уровень смерти. Это является весьма важным для лечения собак с ЛП.

ДЕРМАТОЛОГИЯ Лекции по дерматологии, которые будут представлены в Барселоне 15–17 октября в рамках SEVC 2015 SOUTHERN EUROPEAN VETERINARY CONFERENCE 50 CONGRESO NACIONAL AVEPA

Dr. L. Ordeix

Dr. L. Beco

Dr. S. Paterson • Рациональный подход к наружному отиту у собак • Наружный отит у кошек • Очистка ушей – что и как использовать • Лечение хронического наружного отита

• Средний отит: не только дерматологический взгляд на проблему • Наружный и средний отит, обусловленный псевдомонадами

• Аутоиммунные болезни кожи: что важно (часть первая) • Аутоиммунные болезни кожи: что важно (часть вторая)

Barcelona, SPAIN

•

15-17 October, 2015

•

www.sevc.info

ХИРУРГИЯ / КЛИНИЧЕСКИЙ СЛУЧАЙ Ю. Д. Бабурова главный врач, клиника ВЦ «Алден-Вет», Краснозвездный пр., 10

КЛИНИЧЕСКИЙ СЛУЧАЙ УДАЛЕНИЯ НОВООБРАЗОВАНИЯ В НОСОВОЙ ПАЗУХЕ У КОШКИ С САХАРНЫМ ДИАБЕТОМ

Сокращения: СД – сахарный диабет, ИФА – иммуноферментный анализ, УЗИ – ультразвуковое исследование, ОАК – общий анализ крови, БХАК – биохимический анализ крови, ОАМ – общий анализ мочи, АСТ – аспартатаминотрансфераза, АЛТ – аланинаминотрансфераза, ГГТ – гаммаглутамилтрансфераза, ЩФ – щелочная фосфатаза, АПФ – ангиотензинпревращающий фермент, ЧСС – частота сердечных сокращений, ЧДД – частота дыхательных движений, МРТ – магнитнорезонансная томография, СНК – скорость наполнения капилляров. Анамнестические данные. Кошка ориентальной породы, кличка – Бенита, возраст – 7 лет и 8 месяцев, стерилизована, масса тела – 3,3 кг, кормление РК Диабетик, содержание в квартире. Заболевание СД началось в полуторагодовалом возрасте, установлено носительство коронавирусной инфекции, было проведено исследование

ИФА на Т4, УЗИ щитовидной железы для исключения гипертиреоза. Установленные сопутствующие патологии на данный момент – гепатохолецистит (рис. 1), субаортальный стеноз, недостаточность двустворчатого клапана (рис. 2). Животное постоянно получает инсулин лантус, 2 раза в день в дозе 2,5 Ед. Регулярно пациент проходит диспансеризацию (осмотр эндокринолога, ОАК, БХАК, ОАМ, УЗИ) 1 раз в 3–4 месяца. Ежедневно, в домашних условиях, проводится глюкометрия перед инъекцией инсулина. Животное поступило на прием с жалобами владельцев на чихание, одышку и кашель, периодические выделения зеленоватого экссудата из носовых ходов, неприятный запах из ротовой полости, плохой аппетит, снижение общей активности.

Результаты клинического обследования При осмотре животного температура тела – 37,9 °С, ЧСС – 138 в мин (слабое выявление систолического шума слева), ЧДД – 16 в мин, слизистные оболочки бледнорозовые, шерсть тусклая, видимые лимфатические узлы в пределах нормы, брюшная полость не напряжена при пальпации, дыхание грудо-брюшного типа, кондиция тела и сознание сохранены. Животному были отобраны пробы крови для ОАК и БХАК и мочи для ОАМ. Результаты приведены в таблицах 1–3. Из дополнительных методов диагностики были проведены рентгенография и эхокардиография. По результатам рентгенографии не было

Рис.1

выявлено патологических изменений со стороны костной системы. Поэтому было принято решение провести дополнительное исследование – МРТ головы и соответственно носовых и лобных пазух. В результате МРТ обнаружено объемное образование в носовой пазухе с признаками деформации носовой перегородки (рис. 3, 4). По результатам консилиума, состоящего из нескольких узкопрофильных специалистов (хирург, анестезиолог, эндокринолог, инфекционист), было принято решение о проведении оперативного вмешательства на носовых пазухах с удалением новообразования и дальнейшим его гистологическим исследованием. В дооперационном периоде пациенту были назначены препараты – ингибиторы АПФ, антибиотики. За 12 ч до операции назначена голодная диета. Протокол анестезии. Премедикация – нейролептики, блокаторы Н1-гистаминовых рецепторов, антагонисты опиатных рецепторов внутримышечно. Основной анестетик дипрофол 1%-й, вводная доза – 6 мг/кг, индукционная – 0,2 мг/кг/мин. Интубация (эндотрахеальная трубка с манжетой, размер 3,5). SpО2 артериальной крови – 96–98 %. ЧСС – 142 в мин, пульс – 142 в мин, ЧДД – 12 в мин, Т – 37,5 °C, СНК – 1,5 сек (слизистые оболочки бледно розовые, влажные). Кровопотеря не более 5 мл. Диурез – 2 мл/кг/мин. Глюкометрия проводилась при помощи глюкометра для животных «Gluco calea» (рис. 5)– каждые полчаса (6,8 ммоль/л, 8 ммоль/л, 11,7ммоль/л).

Рис.2

www.mirvet.com.ua

МИР ВЕТЕРИНАРИИ

ХИРУРГИЯ / КЛИНИЧЕСКИЙ СЛУЧАЙ

Таблица 1. Результаты общего анализа крови

Показатель

Результат

Норма (до 2-х месяцев)

Норма

Гемоглобин, г/л

118

84–138

100–150

Эритроциты, 1012/л

8,6

5,64–7,13

5,54–10,7

Лейкоциты, 109/л

10,9

6,2–16,5

6,4–13,5

Тромбоциты, 109/л

256

200–500

Гематокрит, %

35,9

26,9–45

26,2–46,3

Эозинофилы, %

0–6

Юные нейтрофилы, %

Палочкоядерные нейтрофилы, %

1–6

Сегментоядерные нейтрофилы, %

43–68

Лимфоциты, %

25–50

Моноциты, %

0–6

Базофилы, %

0–1

Нормоциты

Анизоцитоз

Пойкилоцитоз

Бабезиоз

Отрицательно

Гемобартонеллез

Отрицательно

Дирофиляриоз

Отрицательно

Далее глюкометрия проводилась каждый час, и при установлении гликемии 13,9 ммоль/л был введен внутримышечно инсулин актрапид (короткого действия) в дозе 0,5 Ед/кг, после чего через 2 ч гликемия составляла 11,2 ммоль/л. Еще через 2 часа уровень гликемии составил 16,1 ммоль/л (на 23 часа). Был введен инсулин лантус в дозе 2 Ед подкожно. Глюкометрия проводилась каждые 4 ч. Затем на следующий день в 11 ч был снова введен инсулин лантус в дозе 2 Ед (уровень гликемии составлял 17,8). В состав инфузионной терапии входили изоосмолярные растворы кристаллоидов, растворы аминокислот, антиагреганты, кровеостанавливающие, петлевые диуретики, антигипоксанты, антимикробные препараты, кардио- и гепатопротекторы, ингибиторы протеаз. Протокол оперативного вмешательства. Операция длилась 1ч 38 мин. Новообразование из носовой полости было извлечено путем трепанации носовых пазух. Разрез кожи и подлежащих тканей производился в области спинки носа, длиной около 4 см. Сосуды коагулировались при помощи электрокоагулятора. Надкостница удалялась при помощи распатора. Носовая кость выпиливалась

№3 май-июнь 2015

Рис.3

Рис.4 Таблица 2. Результаты биохимического анализа крови

Показатель

Результат

Норма (до 2-х месяцев)

Норма

АСТ, МЕ/л

25–45

10–48

АЛТ, МЕ/л

55,6

18–67

10–69

ГГТ, МЕ/л

5,6

0–10

ЩФ, МЕ/л

61,3

40–100

12–100

Билир. общий, мкмоль/л

6,2

0–10

Билир. прямой, мкмоль/л

1,8

0–4

Креатинин, мкмоль/л

125

25–106

25–140

Мочевина, ммоль/л

10,08

2,5–8,0

2,5–10

Амилаза, МЕ/л

1396

400–1000

Белок общий, г/л

53–72

56–80

Альбумин, г/л

30,3

24–36

24–48

Глюкоза, ммоль/л

10,9

3,5–6,2

Кальций, ммоль/л

2,8

2,2–2,7

1,95–2,5

Магний, ммоль/л

1,08

0,8–1,8

1,0–1,25

Фосфор, ммоль/л

1,5

1,5–2,8

1,0–2,65

Холестерин, ммоль/л

3,9

2,0–7,0

Калий, ммоль/л

4,2

4–5,5

Натрий, ммоль/л

152

145–158

Липаза, МЕ/л

15–80

www.veterinars.com

ХИРУРГИЯ / КЛИНИЧЕСКИЙ СЛУЧАЙ

Таблица 3. Результаты общего анализа мочи

Показатель

Результат

Норма

Цвет:

светло–желт

светло–желтая

Прозрачность

слабо мутная

Гемоглобин, мМоль/л

Уробилиноген, мМоль/л

Билирубин

Нитриты , мМоль/л

Кетоны, мМоль/л

Глюкоза, мМоль/л

Белок, г/л

0,3 (+)

рН(кислотность)

5,0

6,2–6,6

Удельный вес

1,015

1,010–1,025

Эпителий

неб. к–во

незнач. к–во

Лейкоциты

еденичн

Эритроциты

Сперматозоиды

–

Бактерии

неб. к–во

Соли

неб. к–во оксалаты

Слизь

Цилиндры

Доп. сведения

–

Рис.7

Рис.8

Рис.9

Рис.5

Рис.6

осцилляторной пилой в виде «окна» (рис. 6). Само новообразование и слизистая оболочка были экстирпированы при помощи ложки Фолькмана (рис. 7), кровотечение из операционной раны останавливалось тампонированием и электрокоагуляцией. Часть носовой перегородки была также удалена. Операционная рана была промыта 0,9%-м раствором натрия хлорида, подогретым до 60 °С, и ушита двухэтажным швом.

В послеоперационном периоде на животное был надет защитный воротник, назначен курс антибиотика широкого спектра действия, ингибиторов АПФ (постоянно), диуретиков, наружные обработки шва, энтеральное диетическое питание. Швы сняли через 10 дней после операции. В послеоперационном периоде у пациента в первые 3 дня наблюдался плохой аппетит (связанный, скорее всего, с частичной утратой обоняния), периодическое

www.mirvet.com.ua

чихание. Инъекция инсулина проводилась 1 раз в сутки в дозе 2 Ед подкожно, так как уровень гликемии на вечерние часы инъекции был в пределах нормы. Владельцам было рекомендовано в домашних условиях в течение суток, с интервалом в 2–4 ч провести измерение уровня глюкозы в крови (построение сахарной кривой) для выявления периода действия инсулина, пика его действия и изменения гликемии в течение суток. При гистологическом исследовании удаленного образования было установлено наличие воспалительного инфильтрата и фрагменты отечного полипа (фиброзный полип) (рис. 8). На данный момент животное полностью восстановилось после операции и вернулось к обычному ритму жизни (рис. 9).

МИР ВЕТЕРИНАРИИ

ЛАБОРАТОРНАЯ ДИАГНОСТИКА И. В. Копитько, врач-лаборант К. А. Смоляр, старший врач-лаборант клинико-диагностическая лаборатория ВЦ «Алден-Вет»

ОБЕСПЕЧЕНИЕ КАЧЕСТВА ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

На сегодняшний день клинико-диагностическая лаборатория предоставляет около 90 % объема диагностической информации, необходимой для своевременного принятия правильного клинического решения и контрольных мероприятий над эффективностью проводимого лечения. Обеспечение качества лабораторных исследований – это многогранный и последовательный процесс, целью которого является гарантия предоставления надежных и объективных результатов исследований. Этот процесс распространяется на все уровни функционирования лаборатории – это в первую очередь квалифицированные специалисты, современное оборудование, качественные реагенты и расходные материалы и т.д. Лабораторные исследования принято делить на три основных этапа: преаналитический, аналитический и постаналитический. Согласно мировой практике, от 32 до 75 % лабораторных ошибок происходит на преаналитическом этапе. Соблюдение определенных правил преаналитического этапа

исследований напрямую отражается на их качестве. Преаналитический этап в свою очередь можно разделить на: внелабораторный (до доставки биологического материала в лабораторию) и лабораторный (непосредственно в стенах лаборатории). Врачи-лаборанты контролируют соблюдение правил как в лаборатории, так и по мере возможности влияют на предупреждение возможных ошибок на внелабораторном этапе. Одним из самых эффективных способов устранения этих ошибок является хороший контакт и совместная работа с врачами-клиницистами. Обеспечение качества на преаналитическом этапе может носить характер образовательных и инструктивных мероприятий, а также может быть ретроспективным по отношению к выявленным случаям по игнорированию клиническим персоналом установленных правил, что приводит к ошибочным лабораторным результатам. Долабораторный преаналитический этап включает в себя подготовку животного к исследованиям, правильный забор биологического материала, его маркировку и транспортировку в лабораторию. Подготовка – одна из важнейших составляющих преаналитического этапа. Здесь обязательно должны быть соблюдены определенные правила: воздержание от физических перегрузок, соблюдение привычного рациона питания накануне сдачи анализов, а также избегание стрессовых ситуаций в день проведения диагностики. Также на результаты исследований неизбежно повлияет прием лекарственных препаратов. Не менее важно, учитывая существование циркадных (суточных) ритмов, рекомендуется плановые!!! обследования проводить в определенное время. Например, циркадный ритм кортизола может являться причиной недостоверных результатов теста на толерантность к глюкозе, если он проводится во второй половине дня. Для того чтобы не затруднять процесс интерпретации результатов, отбор проб для анализа нужно проводить в определенное время суток, обычно между 7:00 и 9:00 часами утра. Следует иметь в виду, что референсные интервалы большинства тестов, приведенных в справочной

www.mirvet.com.ua

литературе, установлены именно для этого промежутка времени. При проведении специальных исследований, например, при установлении индивидуального циркадного ритма секреции гормона, в течение суток берется несколько проб анализируемого материала. В документах, сопровождающих такие образцы, необходимо указать точное время взятия каждого из них. На циркадный ритм могут накладываться индивидуальные ритмы сна, еды, физической активности, которые не следует путать с действительно суточными колебаниями. В некоторых случаях следует учитывать сезонные влияния. Например, содержание трийодтиронина на 20 % ниже летом, чем зимой. Кроме суточных следует обратить внимание на наличие низкоамплитудных «внутридневных» колебаний концентрации некоторых аналитов, например глюкозы, гемоглобина, ретикулоцитов. Существование биологической ритмичности в активности эритропоэза в костном мозге важно для выбора оптимального времени исследования и соответствующей терапии. Например, акрофаза гемоглобина и эритроцитов приходится на 12:00, т.е. примерно через 12 часов после акрофазы ретикулоцитов. Циркадный ритм в динамике количества ретикулоцитов является отражением суточной вариации в количестве сывороточного эритропоэтина, пик которого приходится на 1 час ночи. Приводим примеры суточных колебаний некоторых аналитов (табл. 1). Вторым, не менее важным этапом является забор материала. Забор крови для гематологических и биохимических исследований (кроме экстренных) проводят в утреннее время, обязательно натощак (т.е. не менее чем через 8–10 часов после последнего кормления). В современных лабораториях рекомендуется использовать для забора крови только одноразовые системы (пробирки). Внедрение таких систем в практику оказывает влияние на все этапы лабораторного исследования и в целом переводит организацию работы лаборатории на иной уровень! Важно, особенно для животных, находящихся на стационарном лечении, принять за правило: никогда не брать кровь из вены, в которую проводится введение лекарств и растворов (при

МИР ВЕТЕРИНАРИИ

ЛАБОРАТОРНАЯ ДИАГНОСТИКА

Таблица 1. Суточные колебания содержания некоторых аналитов в сыворотке крови

Аналиты

Макс.концентрац. Миним.концентрац.

Амплитуда

(время суток)

(% от средней за сутки)

АКТГ

6–10

0–4

150–200

Кортизол

5–8

21–3

180–200

Тестостерон

2–4

20–24

30–50

ТТГ

21–23

1–21

300–400

Пролактин

5–7

10–12

80–100

Альдостерон

2–4

12–14

60–80

Ренин

0–6

10–12

120–140

взятии крови на лабораторные исследования необходимо учитывать и расписание уже проведенных инфузий; кровь можно брать только через 8 часов после введения жировых эмульсий и через час после введения растворов, содержащих аминокислоты и гидролизаты белков, электролиты, или растворов с высоким содержанием углеводов). Так как эти и многие другие лекарственные препараты оказывают значительное влияние на результаты лабораторных исследований.

Влияние лекарственных средств на результаты лабораторных исследований может быть двух типов: 1) Физиологическое влияние in vivo (в организме пациента) лекарственных средств и их метаболитов. Приведем примеры изменения некоторых показателей (более интенсивным изменениям подвержены биохимические показатели (аналиты)): – увеличение активности амилазы в крови наблюдается после введения кортикостероидов,

наркотических веществ (во время операций и каких-либо процедур, для которых необходимо их введение), тетрациклина, салицилатов, фуросемида; – активность аминотрансфераз повышается после приема аскорбиновой кислоты, некоторых антибиотиков, холинергических средств; – увеличение щелочной фосфатазы возможно после приема сульфаниламидных препаратов, некоторых антибиотиков; – при определении катехоламинов флуориметрическим методом в моче интенсивную флуоресценцию может вызывать принимаемый пациентом тетрациклин; – метаболит пропранолола 4-гидроксипропранолол интерферирует при определении билирубина методами Йендрашека–Грофа и Эвелина–Меллоя. 2) Влияние in vitro (на химическую реакцию, используемую для определения показателя) благодаря химическим и физическим свойствам (интерференция).

ЛАБОРАТОРНАЯ ДИАГНОСТИКА

Таблица 2.

Аналит Кальций общий, моль/л

Время наложения жгута, мин. 0

2,38

2,45

2,52

2,58

Белок общий, г/л

Альбумин, г/л

Интерференция может быть вызвана наличием в пробе биоматериала как эндогенного, так и экзогенного вещества (наиболее частые экзогенные интерферирующие факторы – лекарственные средства или их метаболиты). К основным эндогенным интерферирующим факторам относят следующие: 1. Гемолиз (разрушение эритроцитов крови) – видимые признаки, при концентрации гемоглобина в сыворотке более 20мг/100мл. Возникает при удлинении времени наложения жгута, это приводит к выдавливанию воды и молекул небольшого размера из внутрисосудистого пространства, не влияя на большие молекулы, клеточные элементы и связанные с белками молекулы небольшого размера. Сыворотка крови становится более концентрированной, вследствие чего содержание некоторых аналитов может быть завышено. В связи с этим не рекомендуется наложение жгута более чем на одну минуту, так как это приводит к гемоконцентрации, закислению крови и накоплению лактата. При более продолжительном наложении жгута клинически значимо возрастает уровень активности аспартатаминотрансферазы, содержание железа и калия, содержание общего белка и липидов, а также это приводит к росту содержания компонентов, имеющих более высокую концентрацию в эритроците по сравнению с плазмой – альдолазы, кислой фосфатазы, изоцитратдегидрогеназы, глюкозы, лактатдегидрогеназы, фосфора, аспартатаминотрансферазы, холестерина (при выполнении исследований методом колориметрии). Кроме того, снижение рН крови может изменять связывающую способность транспортных белков, приводя к некорректному (завышенному) определению количества свободных фракций гормонов и некоторых ионов (например, кальция и магния). Гемолиз эритроцитов может быть вызван также длительной физической нагрузкой, а также в ряде случаев – патологическими состояниями, например, гемолитической анемией,

кровепаразитарными заболеваниями, заболеванием печени и т.д. В таблице 2 приведены примеры изменения концентраций некоторых аналитов в зависимости от времени наложения жгута на вену: 2. Липемия, извращающая результаты ряда колориметрических и нефелометрических методов исследования (особенно при исследовании фосфора, общего билирубина, мочевой кислоты, общего белка, электролитов). 3. Парапротеинемия, вызывающая изменения результатов определения некоторыми методами фосфатов, мочевины, креатинкиназы, лактатдегидрогеназы, амилазы. Выявить интерференцию – одна из задач врача клинической лабораторной диагностики. Следующей важной частью является правильная маркировка, хранение и транспортировка проб в лабораторию. Внутрилабораторная часть преаналитического этапа проводится непосредственно в лаборатории врачом-лаборантом и включает в себя маркировку, оформление бланка и подготовку проб для анализа. Подготовка крови для биохимического анализа включает в себя отделение сыворотки или плазмы (центрифугирование) в установленные сроки и выполненные в определенных условиях. Центрифугированию подвергается различный материал, который в дальнейшем предполагается использовать для лабораторных исследований. Оценка времени центрифугирования – это, прежде всего, определения соответствия времени и условий центрифугирования данному виду материала (визуальный контроль центрифугирования). Пробы для биохимических исследований, в методиках которых используется сыворотка крови, во избежание ошибок преаналитического характера, должны подвергаться центрифугированию не позднее чем через час после проведения процедуры забора крови. При проведении центрифугирования

www.mirvet.com.ua

необходимо строго выдерживать режимы и время центрифугирования. При хранении проб необходимо учитывать, что на качество образца могут повлиять процессы испарения, светового воздействия, разрушения под действием микроорганизмов, осмоса и т.д., что приведет к методологическим ошибкам при определении отдельных аналитов. Для длительного хранения образцы необходимо замораживать. При этом допускается не более одного цикла замораживание–оттаивание. Специалистом клинической лабораторной диагностики должны быть определены и утверждены критерии отказа в приеме материала на исследование (например, расхождение между данными заявки и этикетки на пробирке, невозможность прочесть заявку, материал взят не с тем антикоагулянтом или консервантом, превышение сроков доставки, наличие сгустков в цельной крови с антикоагулянтом и прочее). После центрифугирования наиболее частые критерии отказа – выраженный гемолиз, гиперлипидемия. Недостаточно учтенные врачамиклиницистами факторы биологической (вариабельность содержания аналитов в организме и своеобразие их свойств) и ятрогенной (влияние на содержание аналитов различных лечебных и диагностических процедур) вариации способны создать серьезные затруднения при интерпретации результатов исследований, и в этих случаях контроль на постаналитическом этапе обретает обратную связь с преаналитической фазой. Соблюдение всех правил проведения преаналитического этапа и четкий контроль за работой персонала минимизируют возможные ошибки и способствуют решению приоритетной задачи современной клинической лабораторной диагностики – обеспечению высокого качества и достоверности результатов лабораторных исследований, что в свою очередь влияет на своевременность и правильность постановки диагноза. Клинико–диагностическая лаборатория «Алден–Вет» проводит общеклинические, гематологические, биохимические, бактериоскопические, паразитологические, иммуноферментные, а также срочные (cito) исследования. Лаборатория участвует в программе международного контроля качества PREVECAL.

МИР ВЕТЕРИНАРИИ

ЗНАМЕНАТЕЛЬНАЯ ДАТА М. В. Чаркина PR-специалист ВЦ «Алден-Вет»

15 лет «Алден-вет» Когда художник пишет свою картину, он зачастую не имеет полного представления о своем творении, и какой вид оно будет иметь в результате. Вдохновение – вот что ведет тех, кто создает! И этот фактор играет роль не только в искусстве, а во всех начинаниях. Особенно в создании бизнеса, где руководитель, словно художник, трансформирует изначальную идею с каждым новым порывом вдохновения. Так случилось и с ВЦ «Алден-вет». Кто знал, что через 15 лет киевская ветеринарная клиника на улице Пестеля станет целой сетью ветеринарных клиник по всему городу? Пожалуй, сами руководители в 2000 году и не догадывались, какими семимильными шагами им придется идти. Сейчас ВЦ «Алден-Вет» – это 10 ветеринарных клиник, которые расположены в разных районах Киева, более 200 ветеринарных врачей, которые являются мастерами своего дела. И ежедневно в клинику обращаются более 500 клиентов, доверяя нам жизни своих питомцев. Многие задают вопрос: «Как вам удалось достичь таких масштабов?». Все, кто спрашивают, думают, будто есть фамильный секрет, тайный «рецепт» успешной бизнес-модели или нам помогают высшие силы. Но нет, друзья, все намного проще и сложнее одновременно. С одной стороны, мы с огромной любовью относимся к нашему «творению», – «Алден-вет» стал неотъемлемой частью личности каждого из его руководителей. С другой стороны, дело в налаженной системе управления, а это в свою очередь – плод непосильного труда руководителей: Дениса Геннадьевича Тищенко, Аллы Витальевны Бондаренко, Елены Витальевны Кутузовой и Ярослава Геннадьевича Тищенко. Благодаря их упорству «Алден-Вет» сегодня предоставляет ветеринарные услуги на высоком уровне и качественно отличается от других клиник. И даже в то время, когда ветер перемен дует на Украину со всех сторон, во времена кризиса, мы занимаем ту же лидирующую позицию на зооветеринарном рынке. Но знаете, всё-таки есть некоторые тонкости ведения ветеринарного бизнеса, которые можно определить исключительно опытным путем. Некоторыми тонкостями мы делимся с коллегами на наших ветеринарных конференциях «Алден-Вет». Это еще одно направление, которое мы активно развиваем. Два раза в год в родных стенах Национального университета биоресурсов и природопользования мы проводим международные научно-практические ветеринарные конференции. И смело можно заявить, что данные мероприятия – самые крупные события по ветеринарной медицине мелких животных, которые проходят в Украине. 577 человек посетили XVI ветеринарную конференцию и несложно заметить, что количество участников растет в арифметической прогрессии. Каждую конференцию посещает более 100 новых людей, ну и конечно же те ветеринарные врачи, для которых мероприятия «Алден-Вет» превратились в традицию. В сентябре 2015 года состоится XVII конференция «АлденВет» и мы уже знаем, чем вас удивить! Помимо вышеуказанных достижений, у нас есть много проектов как для клиентов, так и для ветеринарных врачей: • программное обеспечение Ветбизнес ™

№3 май-июнь 2015

• курсы стажировок для ветеринарных врачей • информационный портал «Мир Ветеринаров» • партнерская программа по сотрудничеству с другими клинками • журнал для ветеринарных врачей «Мир Ветеринарии» • научно-развлекательный журнал «Алден-вет Ревю» (тираж: 5000 экземпляров) • всеукраинский дисконтный клуб для клиентов ветеринарных клиник ALDEN CLUB Цифру 15 в символике чисел связывают с духовным вознесением и началом чего-то нового. В этом году ВЦ «АлденВет» отмечает 15 лет своей деятельности, и как видите, мы многое сделали за этот период. Но расслабляться мы не собираемся, у нас есть множество интересных идей, оригинальных проектов, а главное – прекрасный коллектив, который каждый день привносит что-то новое в «Алден-Вет». Мы искренне благодарны всем, кто с нами сотрудничает: нашим ветеринарным врачам, директорам, партнерам. Спасибо всем, кто на протяжении 15 лет с был и остается с нами! Вы – наше вдохновение!

www.veterinars.com

ОФТАЛЬМОЛОГИЯ В. Ю. Марцинчик главный врач, офтальмолог, кардиолог, клиника ВЦ «Алден-Вет», ул. Героев Днепра, 18

КОРНЕАЛЬНЫЙ СЕКВЕСТР - нарушение роговичного стромального метаболизма и др. Предрасположенность: 1. Породная: чаще – персидские кошки, реже – экзотические, сиамские, ангорские, британские и шотландские вислоухие, редко – беспородные. 2. Возраст: 1–5 лет. 3. Пол – не выявлено. 4. Цвет радужки – часто – желтоглазые, иногда – голубоглазые, редко – зеленоглазые.

Патогенез Ключевые слова: корнеальный секвестр, мумификация роговицы, роговица, строма, кошки, кератэктомия. Корнеальный секвестр – состояние глаза, которое характеризуется явлениями некроза стромы роговицы, при котором происходит образование пигментного очага. При этом цвет стромы может быть от еле желтоватого и до черного. Эта патология встречается у кошек и зафиксированы случаи у лошадей. Впервые заболевание описано только в 1965 году. В наше время имеется большое количество различных названий данного заболевания: мумификация роговицы, очаговая дегенерация роговицы, некроз роговицы, некротизирующий кератит, почернение роговицы (cornea nigra).

Этиология На данный момент нет единого мнения о причинах, которые приводят к данной патологии, но известно, что есть ряд предрасполагающих факторов: - вирусная инфекция; - наследственная предрасположенность; - особенность строения черепа (брахицефалы), положения глазного яблока в орбите (экзофтальм) и положения век (лагофтальм); - травма роговицы; - хроническое раздражение роговицы (энтропион, трихиаз и т.д.); - местное использование кортикостероидов;

Секвестрация роговицы происходит только после повреждения эпителиального слоя в сочетании с одним или несколькими предрасполагающими факторами. В результате происходит торможение митоза клеток, кератоциты переходят в состояние апоптоза с признаками нарушения расположения хроматина и со сморщенной цитоплазмой. Соответственно этот участок остается открытым и пигмент слезы пропитывает оголенную строму. Сам пигмент слезы имеет белковое строение и изменяет цвет на коричневый при окислении на воздухе. В последующем поверхность роговицы все же эпителизируется, но пигмент остается в толще. Через некоторое время начинается процесс отторжения секвестра, так как организм начинает реагировать на образовавшийся секвестр как на инородное тело: появляется васкуляризация роговой оболочки, инфильтрация граничащей зоны нейтрофилами, лимфоцитами, макрофагами и гигантскими клетками, и на этом месте образуется язва, а затем бельмо различной интенсивности. Иногда под телом секвестра происходят процессы кератомаляции и на месте отторгнутого секвестра возникает перфорация роговицы. Течение – хроническое, от 1–2 мес до 1–2 лет.

Симптомы Характерно наличие пятна различной интенсивности коричневого цвета в центральной или парацентральной зоне. Сам секвестр может иметь как правильную округлую форму,

www.mirvet.com.ua

так и неправильную форму. Из конъюнктивальной полости выделяется слизистый, слизисто-гнойный или гнойный экссудат в результате осложнения процесса бактериальной микрофлорой.

Диагностика Не представляет труда – на основе наличия в толще роговицы пигментного очага коричневого цвета. Имеет смысл провести диагностическое окрашивание витальным красителем – раствором флуоресцеина натрия, при этом сам секвестр не окрашивается, а краситель задерживается по периферии вокруг пигментного очага, где краситель имеет возможность адсорбироваться гидрофильной стромой. Не лишним будет также провести ПЦР диагностику при подозрении на наличие вирусной инфекции и тест Ширмера для определения общей слезопродукции.

Лечение Возможны как консервативный, так и оперативный методы лечения. Консервативный метод имеет ряд преимуществ и недостатков. Преимущества: - не требует специального микрохирургического офтальмологического оборудования; - не требует общей анестезии и, соответственно, нет анестезиологических рисков; - не требует специальных профессиональных навыков от врача. Недостатки: - недопустим при риске перфорации роговицы; - долгий период лечения (от 2-х мес. до 1-го года и более); - исход – рубец различной степени выраженности. Используемые медикаменты: - антибактериальные средства (тобрекс, флоксал, гентамициновые глазные капли, офтаквикс) в виде глазных капель; - кератопротекторы (солкосерил, актовегин, корнерегель); - препараты, активизирующие противовирусный иммунитет (интерфероны);

МИР ВЕТЕРИНАРИИ

Источник фото: http://cal.vet.upenn.edu/projects/ophthalmology/ophthalmo_files/Corneal_Opacities/All/images/sequestration_ 2.jpg

- М-холиноблокаторы (атропин, капли глазные); - нестероидные противовоспалительные препараты (капли глазные униклофен, индоколлир, дикло-Ф, Накло-Ф). Оперативный метод – основной, который используется при данной патологии. Недостатки: - использование общей анестезии; - необходим микрохирургический инструментарий; - необходимы специальные навыки врача; Операции, проводимые при корнеальном секвестре: • Суперфициальная кератэктомия (выполняется в том случае, если секвестр не проникает во все слои роговицы – возможно удаление до 5-ти слоев). • Послойная передняя кератопластика – пересадка роговицы, при которой роговица не просекается насквозь (применяется, когда после отторжения секвестра образуется обширная глубокая язва или десцеметоцеле). • Сквозная кератопластика – пересадка роговицы, при которой роговица просекается наскозь (применяется при наличии сквозных секвестров). • Корнео-конъюнктивальная пластика (при условии поверхностного секвестра). • Пластика роговицы конъюнктивальным лоскутом. При этом первые три метода являются более предпочтительными. После оперативного вмешательства также назначаются мидриатики, антибактериальные средства, нестероидные противовоспалительные препараты, кератопротекторы.

Для профилактики рецидива можно порекомендовать при первых признаках раздражения роговицы местное применение противовирусных препаратов, возможно дополнительное применение лизина внутрь. Также не следует забывать о ежегодной вакцинации животного, для поддержания необходимого титра антител к вирусным заболеваниям.

Литература: 1. Копенкин Е. П., Сотникова Л. Ф. Болезни глаз мелких домашних животных: Учебное пособие. - М.: Товарищество научных изданий КМК; Авторская академия, 2008. – 186 с. 2. Риис Р. К. Офтальмология мелких домашних животных / Пер. с англ.- М.: ООО «Аквариум-Принт», 2006. – 280 с. 3. Robert Peiffer, Simon ophthalmology 2009.

№3 май-июнь 2015

Petersen-Jones

Small

animal

ПАРАЗИТОЛОГИЯ Л. П. Яровая врач ветеринарной медицины, офтальмолог, иммунолог клиника ВЦ «Алден-Вет», Краснозвездный пр. 10

ТОКСОПЛАЗМОЗ. РЕАЛЬНОСТЬ И ПРЕДУБЕЖДЕНИЯ В последнее время научные достижения дали возможность диагностировать точнее и быстрее любые заболевания. Интернет-ресурсы наполнены большим количеством информации и дают ответы на многие вопросы пользователей. Но иногда можно прочитать много недостоверной информации или, наоборот, стать недоинформированным, поэтому на приеме у врача клиенты начинают бить тревогу. Что делать и как быть? Наша с вами задача ответить грамотно на поставленные вопросы, успокоить клиента и по возможности опровергнуть недостоверную информацию. Давайте поговорим о токсоплазмозе. Все ли мы знаем о нем? Как поступить грамотно, что делать при получении результатов анализов, чего нужно бояться, а чего не стоит? Многие медики, узнав, что в доме живет кошка, сразу же советуют избавиться от любимого питомца, потому что она может заразить токсоплазмозом! И в кабинет ветврача забегают владельцы с животным, неся его на вытянутых руках, «потому что он заразный!». Наступает наш черёд. Да, токсоплазмоз – очень опасное, самое распространенное заболевание человека и животных, в том числе домашних и диких птиц, покорившее все континенты мира. По статистике токсоплазмозом заражен каждый третий человк в мире, в некоторых странах зараженность достигает больше 50 %. Это дало повод медикам полагать, что токсоплазмы безопасны для человека и животных. Токсоплазмы относят к наиболее коварным возбудителям, которые известны на сегодняшний день врачам и медицинским, и ветеринарным. Несмотря на то, что они являются простейшими – оживленные дискуссии ведутся постоянно. Они поражают в первую очередь головной мозг человека и животных, поэтому влияют на здоровье населения планеты, а также приносят значительный экономический ущерб животноводству. Токсоплазмоз – эндемическое заболевание. В распространении данного заболевания кошки и дикие животные из семейства кошачьих играют важную роль, так как являются дефинитивными хозяевами, которые

выделяют с фекалиями ооцисты, устойчивые в окружающей среде. Но только спорулированные ооцисты от инфицированных кошек и брадизоиды в поражнных тканях (одна из форм токсоплазмы, которая локализируется в кистах различных тканей организма) промежуточных хозяев являются заразными для человека и всех теплокровных животных. Собаки и кошки могут выступать в роли промежуточных хозяев. Токсоплазмоз протекает у них с различной степенью тяжести. У людей в большинстве случаев с нормальной иммунокомпетентностью токсоплазмоз протекает бессимптомно или в легкой форме с неярко выражеными симптомами. При внутриутробном заражении детей и у людей с ослабленным иммунитетом – заболевание протекает тяжело с высоким уровнем смертности. Из-за потенциального риска для здоровья человека ветеринарные специалисты должны не только вовремя идентифицировать токсоплазмоз, но и проводить терапию больных кошек, осуществлять мероприятия, направленные на предупреждение распространения заболевания среди людей и животных.

Toxoplasma gondii Морфология токсоплазм и эндогенный их цикл размножения очень схож с малярийными плазмодиями, лейшманиями, неоспорами, тейлериями и другими кровепаразитами. По воздействию на организм на сегодняшний день является наиболее коварным возбудителем. Токсоплазмиды – строго ограниченная группа токсоплазмоподобных паразитических простейших (Toxoplasma, Besnoitia, Sarcocystis, Neospora, Frenkelia, Hammondia), которые являются, прежде всего, паразитами лейкоцитов, а затем уже клеток ретикуло-эндотелиальной системы и других тканей. В фазу генерализации и при хроническом течении заболевания токсоплазмиды способны к размножению как внутриклеточно, так и внеклеточно. Некоторые из них (саркоспоридии, токсоплазмы) могут инвазировать эритроциты.

www.mirvet.com.ua

Для некоторых токсоплазмид характерным является два независимых цикла размножения – половой, осуществляемый в организме дефинитивных хозяев, и бесполый, осуществляемый в организме промежуточных хозяев. Благодаря бесполому циклу размножения и развития токсоплазмиды могут циркулировать среди диких и домашних животных долгое время, практически бесконечно и таким образом поддерживать существование вида в природе. Для таких токсоплазмид, как Toxoplasma, Neospora – половая фаза развития не обязательна, а у возбудителя безноитиоза крупного рогатого скота (Besnoitia besnoiti) половая фаза развития вообще отсутствует. У всех спорообразующих паразитов, включая гемоспоридий, бесполое размножение происходит определенное количество раз, а у токсоплазм оно может продолжаться бесконечно. Доказательством является поддержание в лабораторных условиях вегетативных форм токсоплазм на чувствительных лабораторных животных и в культуре клеток. Для поддержания вида спорообразующим паразитам необходима стадия полового развития, последующая за бесполым размножением. Для токсоплазм она не обязательна. Действительно, эволюционно этот паразит безукоризнен. Комплексный жизненный цикл Toxoplasma gondii включает в себя два этапа: • Половое размножение – осуществляется только в организме животных семейства кошачьих. • Бесполое размножение – может осуществляться в организме любого теплокровного животного (млекопитающие, включая человека и птиц). Существует три инвазионные стадии, способные к заражению: • спорулированные ооцисты; • брадизоиты; • тахизоиты. Cпорулированные ооцисты. Сначала ооцисты, выделяющиеся с фекалиями от инфицированных кошек и диких животных из семейства кошачьих, не спорулированы. Они не контагиозны! Под воздействием окружающей среды в течение 1–5 дней происходит их спорулирование в зависимисти от

МИР ВЕТЕРИНАРИИ

ПАРАЗИТОЛОГИЯ

температуры внешней среды и влажности. Например, при 24–25 °C – в течение 1-го дня, при 15 °С – в течение 5 дней, при 11 °С – в течение 21 дня. Уже спорулированные ооцисты более устойчивы к факторам внешней среды (от +4 до +55 °C). В жидкой среде могут сохранять жизнеспособность в течение нескольких лет. Брадизоиды. Локализируются в кистах в различных тканях организма хозяина. Тахизоиты. Быстро делящиеся формы, которые размножаются практически в любых клетках промежуточного хозяина и эпителиальных клетках (за исключением кишечника) дефинитивного хозяина. Половая фаза развития токсоплазм проходит в эпителиальных клетках кишечника животных семейства кошачьих после заражения любой из инвазионных форм. Зоиты проникают в эпителиальные клетки тонкого отдела кишечника, начинают делиться и образуют несколько поколений, после чего формируются шизогонии, микро-, макрогаметы. Микрогаметы оплодотворяют макрогаметы, образуются ооцисты. Неспорулированные ооцисты с фекалиями выходят в окружающую среду, где под влиянием температуры и влажности происходит их спорулирование. Бесполая фаза цикла развития может протекать у любого теплокровного животного. После заражения одной из инвазионных форм (спорулированная ооциста, брадизоиты или тахизоиты), спорозоиты освобождаются в тонком кишечнике и начинают делиться. Тахизоиты быстро размножаются и поражают различные клетки. Иммунный ответ замедляет этот процесс, однако заболевание переходит в хроническую форму, при которой образуются кисты, содержащие брадизоиты. Итак, токсоплазмозом могут заразиться все – и кошки, и собаки, и люди. Теперь рассмотрим пути заражения.

Эпизоотология Пути заражения: • При употреблении воды, кормов, продуктов питания и овощей, загрязненных спорулированными ооцистами. • Употребление зараженных тканей млекопитающих и птиц (в основном мясо и субпродукты), содержащих

№3 май-июнь 2015

брадизоиты. Это наиболее частая форма инфицирования. • Орально-фекальный путь передачи ооцист. Таким способом, например, могут заражаться собаки. В этом случае они могут служить механическими переносчиками ооцист и создавать риск заражения человека. • Внутриутробное инфицирование: паразитемия во время беременности может привести к передаче тахизоитов от матери к плоду. • К менее важным путям передачи возбудителя следует отнести заражение с молозивом или молоком, а также переливание крови. Да, кошки играют ключевую роль в контаминации внешней среды путем фекального загрязнения почвы, воды, пищи. Исследования показывают, что регионы, где нет кошек, свободны от токсоплазмоза. Другие исследования сообщают о других возможных источниках заражения. Наибольшее эпидемиологическое значение в распространении токсоплазмоза имеют дикие и домашние кошки, живущие на ферме и личных подсобных хозяйствах. Этот факт объясняется тем, что они питаются в основном дикими птицами, грызунами, плацентой и мертворожденными плодами сельскохозяйственных и диких животных. Более высокая распространенность токсоплазмоза у взрослых кошек указывает на то, что риск заражения Т. gondii увеличивается с возрастом. Несмотря на то что токсоплазмоз не передается половым путем, некоторые авторы отмечают более высокую распространенность у котов, связывая это с их территориальным поведением.

Патогенез заболевания Острая форма. Кисты или спорулированныe ооцисты, тахизоиты активно размножаются в кишечнике, распространяются по организму через лимфатическую систему и в различных органах за счет внутриклеточного развития и деления образуют очаги некроза. При высокой интенсивности инвазии во время этой фазы животные могут погибнуть. За это время у инфицированного животного практически все биологические жидкости (фекалии, моча и др.) содержат тахизоиты, но они очень уязвимы и легко разрушаются. По этой причине заражение

www.veterinars.com

других животных на этом этапе маловероятно, даже при тесном контакте. При подостром течении деление тахизиотов приостанавливается, их количество в эпителии кишечника уменьшается, но тахизоиты, которые локализированы в тканях нервной системы, сохраняются. Данная форма болезни характеризуется появлением антител IgA, специфичных для T. gondii. Хроническое течение заболевания может быть длительным. Например, у некоторых животных может быть на протяжении всей жизни, у собак – до 10 месяцев, у крыс, голубей – до 3-х лет. В этот период тахизоиты исчезают из висцеральных тканей и локализуются только в кистах. Длительность данного периода связана с иммунным ответом, который препятствует развитию заразных форм токсоплазм.

Клиническая картина Токсоплазмоз является одним из самых опасных зоонозных заболеваний. Тем не менее, клинические признаки, связанные с инвазией, как правило, не специфичны. Кошки могут переболевать легко, при этом у них понос чередуется с нормальным сформированным калом. Кошки выделяют ооцисты с фекалиями в течение 3–10 дней после заражения (максимум до 3 недель). В этот период у кошек может не наблюдаться клинической картины заболевания. При наличии сопутствующего заболевания (вирусный иммунодефицит кошек или инфекционный перитонит) токсоплазмоз протекает более тяжело. Кроме того, токсоплазмоз более тяжело протекает у котят, которые приобрели инвазию внутриутробно, в этом случае заболевание может быть летальным. Зараженные таким образом котята также являются источником распространения ооцист. Токсоплазмоз следует подозревать у собак и кошек с анорексией, лихорадкой, одышкой, с болезненностью живота, гепатитом, желтухой, панкреатитом, передним увеитом и расстройствами центральной нервной системы. Также существуют факторы проявления заболевания, такие как возраст, пол, штамм токсоплазмы, стресс, количество токсоплазм, попавших в организм, способ заражения (постнатальная инвазия протекает более легко, чем приобретенная во время беременности).

ПАРАЗИТОЛОГИЯ

Несмотря на неспецифичность симптомов, все же стоит о них упомянуть. Симптомы у кошек: • повышение температуры (от 40 до 41 °С); • вялость; • одышка; • увеличение лимфатических узлов; • рвота; • диарея; • желтуха; • поражение дыхательных путей; • неврологические признаки (ступор, атаксия, судороги, частичная или полная слепота и др.); • заболевания глаз (передний увеит и т.д.). Необходимо отметить, что при токсоплазмозе заболевания глаз развиваются наиболее часто в сравнении с другими сопутствующими признаками. Предполагают, что это связано с циркуляцией иммунных комплексов, которые играют важную роль в развитии офтальмологических симптомов, вследствие чего они могут проявляться без системных клинических признаков заболевания. Все вышеперечисленные клинические признаки могут сохраняться в течение нескольких дней и даже до нескольких месяцев. Теоретически может быть поражен любой орган, таким образом, клинические признаки очень изменчивы. Центральная нервная система поражается у кошек сравнительно редко. Проведенные гистологические исследования показали, что доля таких кошек составляет всего 7 %. Описаны случаи, когда у котят развивается энцефалит, животные могут непрерывно спать, у них могут быть признаки гиперестезии или нарушение координации. В результате котята не способны питаться и умирают в течение нескольких дней. Легкая форма инвазии почти всегда протекает бессимптомно, но в тяжелых случаях у собак отмечают такие клинические признаки: • расстройства дыхания (50 % случаев); • расстройства пищеварения (25 %); • неврологические расстройства (25%); • лихорадка; • потеря аппетита; • одышка; • рвота; • диарея; • судорожные припадки и атаксия. Наиболее часто это встречается у молодых собак с генерализованным

токсоплазмозом, в некоторых случаях указанные клинические признаки могут проявляться одновременно. В связи с этим важно дифференцировать токсоплазменную инвазию от таких заболеваний, как чума и неоспороз. В отличие от кошек, поражения глаз у собак при токсоплазмозе наблюдаются очень редко. Диагностика (специфическая и неспецифическая) Неспецифическая диагностика включает в себя гематологические, биохимические исследования крови, УЗИ, рентгенографию, МРТ, исследование фекалий. Основными гематологическими нарушениями, которые отмечают при токсоплазмозе, являются: нерегенеративная анемия, нейтрофильный лейкоцитоз, лимфоцитоз и эозинофилия. Тяжелая лейкопения может присутствовать у животных во время острой фазы заболевания. Лейкоцитоз в основном регистрируется в период восстановления. При биохимическом исследовании сыворотки крови отмечают такие изменения. Гипопротеинемия и гипоальбуминемия характерны для острой формы заболевания, а у кошек с хроническим токсоплазмозом отмечается гипергаммаглобулинемия. У собак с некрозом печени повышается активность трансаминаз – аланинаминотрансферазы (АЛТ) и щелочной фосфатазы (ЩФ), в то время как у кошек с холангиогепатитом или печеночным липидозом регистрируют высокий уровень билирубина. У животных с острым панкреатитом, который развился в результате токсоплазмоза, может быть резко повышен уровень амилазы и липазы. Ооцисты токсоплазм (10х12 мкм) могут быть идентифицированы в кале с помощью любого из стандартных флотационных методов, однако обнаруживаются они не более чем у 1 % кошек. Морфологически ооцисты токсоплазм неотличимы от ооцист Hammondia hammondi и Besnoitia sр. Большинство кошек с клинически протекающим токсоплазмозом не будут выделять ооцисты. Это связано с тем, что ооцисты обычно выделяются с калом в течение короткого периода времени (1–2 недели) после инфицирования, к тому же ооцисты очень мелкие (10×12 мкм), что делает микроскопический анализ весьма сложным.

www.mirvet.com.ua

Более того, выделение ооцист не связано с таким клиническим признаком, как диарея. Ооцисты этих кокцидий могут быть дифференцированы по споруляции в пробирке и далее с использованием ксенодиагностики. Специфическая диагностика включает в себя серологические методы (ИФА), прямое обнаружение токсоплазмы (цитологическое исследование бронхоальвеолярной слизи, спинномозговой жидкости (ликвора), лимфатических узлов, перитонеальной жидкости может выявить тахизоитов), биопробу (только в специализированных лабораториях), молекулярный метод – ПЦР (обнаруживает от 1 до 10 тахизоитов в спинномозговой или другой жидкости и 5 и более в образцах крови). На сегодняшний день разработаны несколько вариантов серологической диагностики (метод агглютинации, ИФА и др.). Иммуноглобулины IgM (появляются с первой-второй недели после заражения токсоплазмозом, титры остаются достаточно высокими в течение 12–16 недель) . Иммуноглобулины IgG (обнаруживаются с третьей недели и остаются на высоком уровне в течение нескольких лет и даже всю жизнь). В связи с этим для диагностики активно используется метод парных сывороток. Четырехкратное (или большее) увеличение титра антител IgG в течение 2–3 недель однозначно указывает на заболевание. Если титр IgM составляет 1:64 и более при одновременном отсутствии специфических иммуноглобулинов IgG, это свидетельствует о фазе активного заражения. Сохранение высоких титров иммуноглобулинов IgM продолжительное время может быть связано с реактивацией хронической инвазии в результате повторного заражения, глюкокортикоидной терапии или сопутствующих инфекционных заболеваний (например, вирусный иммунодефицит кошек). Однако интерпретация повышенного количества IgM может быть затруднена. Были разработаны серологические тесты для обнаружения токсоплазм в ЦНС, однако они не являются убедительными.

Прямое обнаружение токсоплазмы T. gondii Цитологическое исследование бронхоальвеолярной слизи,

МИР ВЕТЕРИНАРИИ

ПАРАЗИТОЛОГИЯ

Таблица 1. Препараты, применяемые для лечения токсоплазмоза у кошек и собак

Наименование препарата

Способ введения

Дозировка

Длительность терапии

Клиндамицина гидрохлорид

внутрь

10–20 мг/кг, 2 р/д

4 недели

Клиндамицина фосфат

внутримышечно, внутривенно

12,5–25 мг/кг, 2 р/д

4 недели

Пириметамин + триметопримсульфонамид

внутрь

0,25–0,5 мг/кг (пириметамин), 2 р/д; 30 мг/кг (триметоприм), 2 р/д

4 недели

Спирамицин

внутрь

8–10 мг/кг, 2 р/д

10 дней

Толтразурил

внутрь

5–10 мг/кг, 1 р/д

5–10 дней

спинномозговой жидкости (ликвора), лимфатических узлов, перитонеальной жидкости может выявить тахизоитов. Диагноз ставится на основании микроскопического исследования мазков, окрашенных по Романовскому-Гимзе.

Биопроба Т. gondii также может быть выделена при постановке биопробы на мышах и клеточных культурах, хотя эти методы доступны только в специализированных лабораториях.

Молекулярные методы диагностики ПЦР может обнаружить от 1 до 10 тахизоитов в спинномозговой или другой жидкости и 5 и более тахизоитов в образцах крови. Молекулярные методы диагностики, такие как полимеразная цепная реакция (ПЦР), широко используются для обнаружения токсоплазм в биологических образцах, в том числе в крови, фекалиях кошек, аспирационной жидкости, плаценте и околоплодных водах. Результаты ПЦР-анализа в ветеринарии показывают, что метод весьма эффективен для диагностики заболевания. Это было продемонстрировано в исследованиях, посредством чего обнаруживали ДНК токсоплазм методом ПЦР в реальном времени в крови и головном мозге кошек. Как интерпретировать результаты исследований? + IgG / - IgM – данный результат свидетельствует о наличии стойкого пожизненного иммунитета к возбудителю токсоплазмоза. - IgG / + IgM – вероятность первичного инфицирования токсоплазмами.

№3 май-июнь 2015

+ IgG / + IgM – возможно первичное инфицирование. - IgG / -IgM – отсутствие инфицирования. На сегодняшний день доступны такие методы диагностики – обнаружение IgG, ПЦР. К сожалению, диагностировать IgM невозможно из-за отсутствия специальных тестсистем. Поэтому постановка диагноза происходит комплексно – клинические признаки, серодиагностика на обнаружение иммуноглобулинов IgG методом парных сывороток (смотри выше).

Лечение токсоплазмоза у кошек и собак Лечение токсоплазмоза у кошек и собак направлено на приостановление деления паразита. Имеющиеся препараты (табл. 1) не способны полностью освободить организм от токсоплазм. Клиндамицин является препаратом выбора при лечении диссеминированного токсоплазмоза у обоих видов. Животных также можно лечить комбинацией сульфаниламидов и пириметамина, хотя они противопоказаны беременным кошкам и сукам. Для беременных самок может быть использован спирамицин. Клинические признаки системного заболевания обычно угасают в течение 24–48 часов после начала терапии. Применение пириметамина может вызвать дисфункцию костного мозга. Для снижения этого побочного эффекта назначают фолиевую кислоту (5 мг в день) или дрожжи (100 мг/ кг). При возникновении увеита назначают противовоспалительные средства (преднизолон или дексаметазон ацетат).

www.veterinars.com

Выделение ооцист с калом подавляется кокцидиостатиками. Серопозитивных (положительная серологическая реакция) кошек контролируют на уровень антител не менее одного раза в год с целью выявления возможной сероконверсии в результате реактивации хронической фазы. Проведение специфического лечения кошек, у которых отсутствуют симптомы, не требуется. Из-за потенциального риска для здоровья человека ветеринарные специалисты должны не только вовремя идентифицировать токсоплазмоз, но и проводить терапию больных кошек, осуществлять мероприятия, направленные на предупреждение распространения заболевания среди людей и животных. Профилактика (памятка для владельцев) • не кормите кошек сырым или термически не обработанным мясом; • убирайте кошачий туалет ежедневно, чтобы предотвратить споруляцию ооцист; • если кошка ловит мышей, не позволяйте ей заносить добычу в дом; • ежегодно проводите серологические исследования и ПЦР-анализ на токсоплазмоз; • не допускайте, чтобы ваша кошка была в помещениях, где производятся продукты питания или хранятся корма; • доноры крови животных должны быть обследованы до переливания; • не допускайте копрофагии у собак (поедание кошачьего кала); • для уничтожения паразита в кошачьем туалете используйте химическую дезинфекцию, обрабатывая все поверхности и испражнения; • контролируйте наличие беспозвоночных насекомых, которые могут выступать в качестве механических переносчиков (постельный клещ, дождевые черви, тараканы и т. д.). Коммерческие вакцины до сих пор не производятся, хотя эффективные прототипы уже существуют (вакцина Т-263 для кошек из мутантного штамма брадизоитов). После орального применения такой вакцины кошки приобретают иммунитет к токсоплазмозу, не выделяя ооцисты с фекалиями. Вакцина может вводиться здоровым кошкам, однако не рекомендуется использовать ее для беременных самок.

ПАРАЗИТОЛОГИЯ С. В. Енгашев, доктор ветеринарных наук, профессор, генеральный директор ООО «НВЦ Агроветзащита» В. Г. Москалев, кандидат медицинских наук, доцент, Курская государственная сельскохозяйственная академия И. В. Ермилов, кандидат ветеринарных наук, директор Курской областной ветеринарной лаборатории

ОПЫТ ЛЕЧЕНИЯ И ПРОФИЛАКТИКИ ДИРОФИЛЯРИОЗА Дирофиляриоз плотоядных вызывается паразитированием двух видов дирофилярий – Dirofilaria immitis и Dirofilaria repens. D. immitis паразитирует в правом предсердии, правом желудочке, основании легочных артерий, устье полых вен и нередко вызывает гибель животного; D. repens – в подкожной клетчатке, иногда – в брюшной полости, мошонке, в глазу, других органах и вызывает локальное воспаление. Тысячи личинок, отрождаемых дирофиляриями, годами циркулируют в крови и также оказывают мультифакторное патогенное действие на организм хозяина. Дирофилярии относятся к классу – Nematoda, подотряду – Filariata, семейству – Filariidae. Биогельминты. Окончательный хозяин – домашние и дикие плотоядные семейств Canidae и Felidae; промежуточный – комары родов Anopheles, Culex, Aedes. В настоящее время дирофиляриоз становится серьезной проблемой для многих регионов центрально-европейской части России. Растет инвазированность собак, участились случаи выявления дирофилярий у людей, формируются новые природные и синантропные очаги инвазии. По данным проведенного нами мониторинга, средняя экстенсинвазированность собак микрофиляриями дирофилярий в Курской области в 2013 году составила 5,9 %, в 2014 – 6,9 %. При этом большинство инвазированных собак за пределами области в течение жизни не находились. По данным областного центра гигиены и эпидемиологии, в период с 2012 по 2014 год в Курской области было зарегистрировано 8 случаев обнаружения дирофилярий у людей. Все больные в предположительный период заражения за пределы области не выезжали и неоднократно подвергались

укусам комаров по месту жительства. Таким образом, данные эпизоотологических и эпидемиологических исследований свидетельствуют о формировании на территории области очагов дирофиляриоза с местной передачей возбудителя. Сложившаяся обстановка требует принятия безотлагательных мер по сдерживанию эпизоотического и эпидемиологического процессов, разработки простых, доступных и высокоэффективных схем лечения и профилактики болезни. Основными причинами неблагополучия по дирофиляриозу, по данным проведенного нами анализа, являются: увеличение популяции комаров вследствие потепления климата и прекращения истребительных мероприятий; увеличение периода активности комаров в связи с потеплением климата; значительное сокращение поголовья крупного и мелкого рогатого скота, лошадей – потенциальных прокормителей комаров, вследствие чего возросла агрессивность этих кровососов в отношении плотоядных и людей, благодаря чему происходит более активное вовлечение последних в эпизоотический и эпидемиологический процессы; пассивная миграция собак и кошек (ввоз, вывоз, участие в междугородних и международных выставках); бродяжничество и большое количество бездомных собак и кошек; низкая осведомленность ветеринарных врачей и населения о дирофиляриозе, из-за чего нередко болезнь не диагностируется, а зараженное животное является источником заражения комаров – промежуточных хозяев и переносчиков возбудителей болезни; трудность лечения дирофиляриоза. В октябре 2011 г. в ведомственном кинологическом центре,

Рис. 1. Подвижная микрофилярия в нативном мазке крови собаки

www.mirvet.com.ua

расположенном в г. Курске, при плановом исследовании крови 21 собаки методом Кнотта, у 5 собак были обнаружены микрофилярии D. immitis. Видовая принадлежность личинок была установлена с помощью экспресс-теста. Состояние инвазированных животных было вполне удовлетворительным, признаки сердечной и легочной недостаточности отсутствовали. Рентгенографическое и сонографическое исследование не проводилось. Инвазированные собаки были освобождены от работы и тренировок на 3 месяца. Им была проведена монотерапия отечественным антигельминтиком «Диронет» в дозе, рекомендованной инструкцией, – 1 таблетка на 10 кг массы животного однократно утром натощак индивидуально. Таблетка «Диронета» в качестве действующих веществ содержит: ивермектин – 0,06 мг, пирантела пальмоат – 150 мг, празиквантел – 50 мг. Через 2 недели после применения препарата микрофилярии были обнаружены в крови всех 5 собак, но их количество было явно меньшим. Провели повторную дегельминтизацию «Диронетом» в той же дозе. Через 2 недели после повторного применения препарата единичные микрофилярии были обнаружены в крови только одной собаки, у четырех – личинки отсутствовали. Обработку «Диронетом» вновь повторили всем пяти собакам. При двух последующих исследованиях крови, с интервалом две недели, микрофилярии в крови пяти собак обнаружены не были. В последующем все инвазированные собаки получали «Диронет» в указанной дозе ежемесячно в течение года вплоть до ноября 2012 года. После трехмесячного перерыва кровь этих собак была вновь исследована на наличие микрофилярий. Ни в одной из проб личинки обнаружены не были, что свидетельствовало о 100 %-й микрофиляриецидной эффективности «Диронета». При последующих плановых исследованиях крови этих животных в течение трех лет микрофилярии также выявлены не были. Состояние животных по всем параметрам соответствовало норме. Поскольку микрофилярии в крови собак, получивших лечение «Диронетом», в течение трехлетнего периода

МИР ВЕТЕРИНАРИИ

наблюдений не выявили, а состояние этих животных соответствовало норме, логично предположить, что «Диронет» обладает не только высокой микрофиляриецидной, но и противоимагинальной активностью в отношении дирофилярий. Остальные собаки данного центра получали «Диронет» в той же дозе – 1 таблетка на 10 кг массы в течение всего периода активности комаров, т.е. с апреля по ноябрь в 2012, 2013, 2014 гг. В течение всего периода наблюдений собаки за пределы области не вывозились. Защита от комаров умышленно не проводилась. В 2012, 2013, 2014 гг. кровь всех собак данного центра подвергалась двукратному (в августе и феврале) плановому исследованию на дирофиляриоз методом Кнотта. Ни в одном случае микрофилярии обнаружены не были. Аналогичные результаты в отношении микрофиляриецидной активности «Диронета» были получены нами при лечении 12 собак, принадлежащих гражданам г. Курска. 100%-й протективный эффект «Диронета» при применении его в период активности комаров также подтвержден исследованиями крови по Кнотту 18 собак, принадлежащих гражданам, спустя 9–10 месяцев после окончания сроков возможного заражения дирофиляриозом. Полученные нами данные свидетельствуют о высокой микрофиляриецидной и протективной эффективности «Диронета» при дирофиляриозе. Наряду с этим, доступная рядовому потребителю цена препарата позволяет рекомендовать «Диронет» как для лечения, так и для профилактики дирофиляриоза. Для лечения собак, в крови которых обнаружены микрофилярии, «Диронет» следует использовать в разовой дозе из расчета 1 таблетка на 10 кг массы утром натощак на корень языка или в истолченном виде с небольшим количеством лакомого корма двукратно с интервалом 2 недели, а затем с интервалом 1 месяц в течение года. Для профилактики дирофиляриоза «Диронет» следует использовать в той же дозе 1 раз в месяц в течение всего периода активности комаров, исходя из сложившейся эпизоотической обстановки в РФ, повсеместно. Учитывая серьезную опасность дирофиляриоза не только для плотоядных, но и для людей (с 2003 года дирофиляриоз включен в СанПин 3.2.1333-03 «Профилактика паразитарных болезней на территории РФ») и исходя из складывающейся эпизоотической и эпидемиологической обстановки, в Курской области в 2012 году была разработана, а с 2013 года внедрена система противоэпизоотических мероприятий по дирофиляриозу. В рамках системы: 1. С 2013 года в г. Курске и всех районах области проводятся плановые адресные

№3 май-июнь 2015

мониторинговые исследования крови собак на дирофиляриоз в объеме не менее 200 проб в год на район. Забор и исследования крови проводятся бесплатно для владельцев животных. Исследования крови проводятся в лаборатории паразитологии диагностического отдела областной ветеринарной лаборатории (ОВЛ) и в межрайонных ветлабораториях. 2. Ежемесячно станции борьбы с болезнями животных (СББЖ) и межрайонные ветлаборатории представляют сведения в ОВЛ о количестве обследованных и выявленных инвазированных собак с указанием фамилий их владельцев. 3. По результатам исследований проводится работа по ликвидации источника инвазии путем микрофилярицидной терапии выявленных зараженных животных. Для этого ветработники проводят персональную разъяснительную работу на дому владельцев инвазированных животных и, при их согласии, дегельминтизацию с целью уничтожения циркулирующих в крови микрофилярий. В качестве антигельминтика в области с успехом используется доступный по цене отечественный лекарственный препарат «Диронет» производства «НВЦ Агроветзащита». 4. Кафедрой эпизоотологии КГСХА и областной ветеринарной лабораторией проведена краткосрочная переподготовка врачей ОВЛ и межрайонных ветлабораторий по диагностике дирофиляриоза. 5. Управлением ветеринарии и кафедрой эпизоотологии КГСХА проведен семинар по дирофиляриозу для врачей-эпизоотологов СББЖ. 6. Врачам-эпизоотологам СББЖ вменено в обязанности проведение разъяснительной работы с владельцами собак и кошек по профилактике дирофиляриоза. При этом, владельцам рекомендуется периодически обследовать животных на дирофиляриоз путем исследования крови на наличие микрофилярий. В период активности комаров, т.е. с мая по октябрь, всем собакам и кошкам, с целью профилактики дирофиляриоза, предлагается ежемесячно применять «Диронет» или другие ивермектинсодержащие антигельминтики. Одновременно рекомендуется защищать животных от комаров инсектицидно-репеллентными средствами. 7. Организовано взаимодействие с Управлением Роспотребнадзора по Курской области с целью взаимоинформирования и координации работы по борьбе с дирофиляриозом. 8. Проводится работа по сокращению количества бездомных собак и кошек. Считаем, что использование вышеизложенного комплекса будет способствовать стабилизации и улучшению эпизоотической и эпидемиологической обстановки по дирофиляриозу.

www.veterinars.com

БОЛЕЗНИ ДИКИХ И ЭКЗОТИЧЕСКИХ ЖИВОТНЫХ Л. А. Стоянов врач ветеринарной медицины сети океанариумов «Немо», начальник ветеринарно-медицинского отдела экзотических животных международной ассоциации океанариумов и дельфинариев, член ARAV*, г. Одесса

ПОРАЖЕНИЯ КОЖИ У РЕПТИЛИЙ РАЗЛИЧНОЙ ЭТИОЛОГИИ

Одними из наиболее часто встречающихся заболеваний рептилий являются различные поражения кожных покровов. Большинство из них связано с нарушением правил содержания и кормления рептилий в неволе. Поэтому одной из важнейших задач ветеринарного врача является проведение консультаций по оптимизации условий содержания рептилий, необходимо максимально приблизить их к естественным природным условиям. Кожа рептилий уникальна по строению и физиологии. У большинства видов кожа формирует чешуи, однако ее клеточное строение значительно варьирует у разных видов. Кроме того, кожные покровы могут отличаться в пределах тела отдельной особи. Например, на голове рептилии кожа

может быть толще и образовывать выросты и шипы. Эпидермис рептилий состоит из трех слоев кератина разной эластичности. Дерма содержит соединительную ткань, сосуды, нервные окончания. Пигментные клетки также в основном присутствуют в этом слое, хотя меланоциты могут находиться в базальном слое и кератиновых слоях у игуан и некоторых змей. Множество меланофоров, способных расширяться и сжиматься, контролируют изменение окраски у хамелеонов. Также в коже рептилий расположено небольшое количество секреторных органов, которые в основном представлены бедренными порами у игуан и пахучими железами у черепах и змей. К особым кожным органам, характерным только для рептилий, относятся тепловые сенсоры на голове у змей и париетальный глаз у некоторых лацертид. Линька у рептилий – это сложный физиологический процесс, и ее нарушение может служить индикатором плохого состояния здоровья рептилии или неадекватных условий содержания. Любые факторы, вызывающие дегидратацию или гипопротеинемию, могут вызывать и нарушение линьки, то есть множество заболеваний, не имеющих отношения к коже, могут проявляться на ней. Учащение линек приводит к излишнему расходу энергии и системным заболеваниям. Ящерицы и змеи отличаются генерализованным типом линьки, тогда как у черепах и крокодилов слущивание эпидермиса происходит аналогично таковому у млекопитающих. Важно

помнить, что рептилии с генерализованной линькой неспособны к локальному заживлению ран. Диагностическими признаками дизекдиса (нарушения линьки) у змей являются остаточные линзы на глазах и нарушение целостности выползка, у водных черепах – остаточные щитки на панцире, у прочих рептилий – образование перетяжек на пальцах, лоскутов старой кожи на теле и пр. Множество вирусных заболеваний рептилий проявляются в виде новообразований на покровах. К ним относятся папилломавирусы, ретровирусы и прочие. Бактериальные заболевания, как правило, связаны с наличием травм, нарушением целостности кожного покрова, избыточной влажностью, присутствием бактерий в субстрате и ослаблением иммунитета рептилии. Диагностика бактериальных заболеваний включает забор материала для исследований в виде мазков, соскобов, аспиратов и биоптатов. Любой из них может быть использован для обнаружения аэробных и анаэробных бактерий и последующей их проверки на чувствительность к различным антибиотикам. Наиболее часто встречающейся бактериальной патологией кожных покровов у рептилий является образование абсцессов. В связи с отсутствием подкожной жировой клетчатки и слабой васкуляризацией, абсцессы способны лизировать ткани в области очага поражения, в том числе костную, мышечную и нервную. При удалении абсцессов

Рис. 1. Свиноносая черепаха (Carettochelys insculpta) со смешанной бактериально–микотической инфекцией *Association of Reptilian and Amphibian Veterinarians

www.mirvet.com.ua

МИР ВЕТЕРИНАРИИ

БОЛЕЗНИ ДИКИХ И ЭКЗОТИЧЕСКИХ ЖИВОТНЫХ

Рис. 2. Пантеровый хамелеон с ожогом 2-й степени необходимо удалять фиброзную капсулу с содержимым. Поверхностные микозы (рис. 1) следует дифференцировать от бактериальных инфекций. Для предварительной диагностики в большинстве случаев достаточно провести исследование мазка-отпечатка с окраской гематоксилин-эозином, азур-эозином или красителем Diff-Quick. Эту процедуру следует освоить каждому ветеринарному врачу для проведения быстрой диагностики грибковых инфекций. Более точное определение возбудителя основано на микроскопии, которая позволит отличить дрожжевые грибы от мицельных, что очень важно при выборе противогрибковых препаратов. Самым надежным методом диагностики можно считать идентификацию гриба, выращенного в лабораторной культуре. Тем не менее, на практике чувствительность к препарату проверять не обязательно, так как для лечения поверхностных микозов используются противогрибковые мази широкого спектра действия. Локальная концентрация действующего вещества при нанесении мази всегда будет довольно высокой, что позволит бороться с возбудителями наиболее эффективно. Однако для получения наилучших результатов мы рекомендуем дополнительно назначать системный антимикотик. Нередко повреждения кожи и нарушения линек связаны с инвазиями различных эктопаразитов. Главным образом, это клещи, которых у рептилий описано 250 видов, а наиболее распространенными являются змеиный клещ – Ophionyssus natricis, ящеричный

№3 май-июнь 2015

клещ – Hirstiella trombidiiformis и краснотелка – Trombicula irritans. Ожоги – еще одно поражение кожи, которые у рептилий встречаются чаще, чем у других животных. Зоны терморецепции и болевой чувствительности имеют независимую иннервацию, как и у других животных, но при этом у рептилий более замедленная реакция при контакте с горячей поверхностью. Ожоги чаще всего вызывают горячие камни и лампы накаливания мощностью от 40 Вт. Для того чтобы их избежать, контактная поверхность нагревателя должна быть не выше 40 °С, в противном случае прибор необходимо монтировать вне террариума или изолировать решеткой. Ожоги первой степени – поверхностные – захватывают только поверхностный слой. Характеризуются потемнением тканей, как правило,

не требуют врачебного вмешательства, заживление проходит после первой линьки. Ожоги второй и третьей степени вызывают полную деструкцию эпидермиса, захватывая как мышечную, так и костную ткань. Они очень болезненны и у рептилий обычно сопровождаются локальным отеком подкожной клетчатки, образованием волдырей с подтеканием лимфы, обширными экхимозами и изменением цвета тканей. Лечение таких ожогов длительное и трудоемкое. Кожу необходимо охладить, обработать антисептическим раствором (хлоргексидин). Свежие поверхностные ожоги лучше постоянно держать под пленкой пантенола или олазоля, более глубокие – под мазью (сульфаргин, дермазин) для профилактики вторичной инфекции. Кроме того, серьезные повреждения требуют системной инфузионной и антибиотикотерапии. Зуд у животных может усиливаться при выздоровлении, следует не допускать расчесывания животными пораженной области, например, путем иммобилизации конечности, которой можно дотянуться до раны. После формирования струпа используют эпителизирующие мази и аэрозоли. К другим поражениям кожи, которые нередко встречаются в практике ветеринарного врача, относятся укусы и другие травмы, а также внешние проявления гипо- и гипервитаминозов. Лечение таких патологий сводится к своевременной хирургической обработке ран и коррекции рациона.

Рис. 3. Панцирь шпороносной черепахи (Geochelone sulcata) с поражением грибком Fusarium

www.veterinars.com

ВЕРТЕБРОЛОГИЯ / НЕВРОЛОГИЯ А. И. Еременко врач ветеринарной медицины, рентгенолог, невролог, ветеринарная клиника «Ветеринарная скорая помощь», г. Днепропетровск darvin@xray.com.ua

ОСНОВНЫЕ МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ МЕЖПОЗВОНКОВЫХ ГРЫЖ У СОБАК

К часто встречаемым заболеваниям межпозвонковых дисков у собак относится пролапс диска. Межпозвонковые диски располагаются между телами всех позвонков и обеспечивают эластичность соединения и амортизацию между сегментами при движении. Исключением являются два сегмента: атлантозатылочный и атлантоосевой (атланто-аксиальный) суставы – они содержат в суставной полости только синовиальную жидкость. Каждый межпозвонковый диск состоит из фиброзного кольца и пульпозного ядра (рис. 1, 2). Пульпозное ядро состоит из мукоидной желатинообразной массы, которая создает давление изнутри, за счет чего происходит равномерное распределение нагрузки и амортизация. В процессе развития позвонки растут быстрей спинного мозга, в связи с этим номер сегмента спинного

мозга не всегда совпадает с порядковым номером позвонка (рис. 3). Это имеет важное значение при неврологическом осмотре для топической диагностики поражения спинного мозга и определения уровня его поврежденного сегмента. Грыжа межпозвонкового диска (рис. 4) может возникать у представителей всех пород собак, но особенно предрасположены к этому заболеванию так называемые хондродистрофичные породы собак, к ним относятся таксы, спаниели, французские бульдоги, пекинесы и др., у которых часто развиваются дегенеративные процессы с метаплазией хрящевой ткани. Вследствие дегенеративных процессов происходит кальцификация пульпозного ядра, диск теряет свои амортизационные свойства и может выходить из места своего естественного расположения. У пород, предрасположенных

Фиброзное кольцо

Пульпозное ядро

Рис. 1. Схема межпозвонкового диска [1]

Рис. 2. Mежпозвонковый диск [1]

к этому заболеванию, грыжи дисков регистрируют даже в раннем возрасте, до года. У других пород собак это заболевание встречается с меньшей частотой и в более старшем возрасте (как правило, после 5-ти лет). Классифицируют грыжи межпозвонковых дисков по механизму формирования по схеме, предложенной Хансеном. Развитие межпозвонковой грыжи по типу Хансен I представляет собой полный разрыв фиброзного кольца и продольной дорсальной связки и выход части пульпозного ядра в спинномозговой канал (рис. 5). Она может оставаться в межпозвоночном пространстве, выстилать внутреннюю поверхность спинномозгового канала либо полностью окружать спинной мозг. Такие грыжи по типу Хансен I чаще всего встречаются у хондродистрофичных пород собак. Межпозвонковая грыжа по типу Хансен II характеризуется разрывом глубоких слоев фиброзного кольца и выпячиванием пульпозного ядра в сторону надрыва, что приводит к сужению спинномозгового канала (рис. 6). Такой тип чаще всего встречается у собак нехондродистрофичных пород более старшего возраста и характеризуется менее выраженными клиническими симптомами.

Клинический осмотр Клинический осмотр всегда нужно начинать со сбора анамнеза, который важен, как и при любом другом заболевании. При сборе анамнеза следует уделить внимание таким моментам, как динамике заболевания,

Рис. 3. Соотношение сегментов спинного мозга и позвонков [2]

www.mirvet.com.ua

Рис. 4. Грыжа межпозвонкового диска [1]

МИР ВЕТЕРИНАРИИ

ВЕРТЕБРОЛОГИЯ / НЕВРОЛОГИЯ

Таблица 1. Определение уровня поражения по характеру изменения спинальных рефлексов

Рефлекс

Отсутствует или ослаблен

Норма или усилен

Выявляется с одной стороны

Трицепса Бицепса

С7–Th1

краниальнее С7

n. radialis

С6–С8

краниальнее С6

Коленный

L4–L6

Ахиллова сухожилья

L5–L7, S1

краниальнее L5

Анальный

S1–S3

краниальнее S1

Панникулюса

Чаще всего изменен на 1–2 позвонка каудальнее места поражения

Рис. 5. Схема развития межпозвонковой грыжи по типу Хансен I [2] латерализации симптомов, если она имеется, ранее проводимому лечению и его эффекту, сопутствующим заболеваниям. При клиническом осмотре стоит учитывать психический статус животного, постановку тела в пространстве, походку, симметричность и координацию движений.

Неврологическое обследование Проведение неврологического осмотра включает в себя исследование спинальных рефлексов (сухожильные рефлексы, коленный рефлекс, рефлекс ануса, панникулярный рефлекс, проверку глубокой болевой чувствительности) (табл. 1). Исходя из результатов неврологического обследования, можно предварительно определить, в каком сегменте спинного мозга имеется компрессия. Оценивают неврологические расстройства в зависимости от их тяжести и неврологического дефицита (табл. 2).

Специальные методы исследования После проведения общего клинического и неврологического обследования приступают к специальным методам исследования: рентгенография, как обзорная, так и контрастная, магнитно-резонансная томография (МРТ), лабораторное исследование ликвора.

№3 май-июнь 2015

Рис. 6. Схема развития межпозвонковой грыжи по типу Хансен II [2]

Рентгенография Проведение обзорной рентгенографии является обязательным, для исключения опухолей позвоночника, переломов, врожденных патологий позвонков. Обзорная рентгенография должна присутствовать в обследовании, даже если проводится МРТ в связи с тем, что при сканировании определенного участка на томографе можно упустить, например, перелом позвоночника в другом отделе (рис. 7). Рентгеновские снимки делают в двух проекциях.

Миелография Следующий метод исследования – миелография – введение контрастного вещества в субарахноидальное пространство, где контраст смешивается со спинномозговой жидкостью

и окрашивает контуры спинного мозга, окруженного твердой мозговой оболочкой. Проведение миелографии проводят только под седацией с интубацией трахеи. В качестве контраста мы используем препарат Омнипак 300 в дозе 0,4 мл/кг, но не более 10 мл на животное. Перед проведением исследования рекомендуется введение глюкокортикоидов в высоких дозах, метилпреднизолон 30 мг/кг. Для введения контраста используют два способа: окципитальный и люмбальный. При использовании окципитального доступа иглу вводят в средину треугольника, образованного затылочным гребнем и краями крыльев атланта, шея максимально согнута, иглу

Таблица 2. Оценка степени неврологического расстройства в зависимости от неврологического дефицита

Степень

Неврологический дефицит

Боли в области спины, неврологический дефицит отсутствует

Парапарез с сохранением способности передвигаться, нормальное мочеиспускание

III

Парапарез с сохранением способности передвигаться, задержка мочеиспускания

Парапарез/параплегия с невозможностью передвигаться, задержка мочи, глубокая болевая чувствительность сохранена

Параплегия, задержка мочи, потеря глубокой болевой чувствительности

www.veterinars.com

ВЕРТЕБРОЛОГИЯ / НЕВРОЛОГИЯ

Рис. 7. Перелом поясничного позвонка [3] вводят перпендикулярно коже (рис. 8). При правильном введении иглы из канюли начнет выступать ликвор. Рекомендуется удалить количество ликвора, примерно равное объему вводимого контраста, для исключения повышения давления. При введении контраста в атлантоокципитальную цистерну нельзя нагнетать высокое давление поршнем шприца, за счет этого контраст не всегда доходит до зоны компрессии, в этом минус этого метода. Плюсы этого метода: - достаточно простое исполнение; - возможность взятия ликвора на цитологическое исследование; - контраст не попадет в эпидуральное пространство. При проведении люмбальной миелографии пункцию проводят в области L4–L5; L5–L6, положение животного на животе, под живот можно положить мягкий валик, чтобы обеспечить сгибание спины (рис. 9). Иглу вводят сбоку от остистого отростка у его каудального края, упираясь в дужку позвонка, иглу наклоняют краниальнее и сагиттальнее, прощупывая по миллиметру, двигаются краниально до вхождения в междужковое пространство и вводят иглу до вентральной поверхности спинномозгового канала. При прокалывании спинного мозга задняя часть туловища реагирует однократным вздрагиванием, это нормально. Упершись в вентральную поверхность спинномозгового канала, на 1–2 мм оттягивают иглу, это делают для предупреждения попадания контраста в эпидуральное пространство. При проведении люмбальной пункции ликвор получить удается редко. Есть вероятность попадания контраста в эпидуральное пространство, что затрудняет правильную интерпретацию снимка. Плюсом этого метода является возможность

Рис. 9. Схема проведения пункции при люмбальном введении контраста при миелографии [2]

Рис. 8. Схема проведения пункции при окципитальном введении контраста при миелографии [2] введения контраста под давлением, что дает возможность проталкивать его выше места компрессии, а не только до начала отека.

Магнитно-резонансная томография Проведение МРТ не должно быть основным методом при обследовании пациента с межпозвонковой грыжей. Это более точный метод, который позволяет определить не только место компрессии и сторону, но и исключить опухоль спинного мозга. Недостатки метода: - длительное время проведения исследования – от 30 мин до 1 часа; - длительная анестезия и невозможность постоянного нахождения анестезиолога рядом с пациентом; - небольшие зоны и срезы исследования у более крупных пород собак; - трудности в плане оборудования (вопервых, в Украине один ветеринарный аппарат МРТ, во-вторых, значительные трудности проведения МРТ в медицинских учреждениях – нелегальность, необходимость обеспечения длительной анестезии).

www.mirvet.com.ua

Рис. 10. Миелография (фото автора) Точное неврологическое обследование, правильно проведенная диагностика и ее интерпретация позволяют сделать прогноз и своевременно начать адекватное лечение для восстановления нормальной жизнедеятельности животного.

Литература: 1. Неврология домашних животных (Заболевания. Синдромы. Диагностика. Лечение). / Специальный выпуск журнала «Ветеринар» / ЗАО «Издательский дом «ДРУГ». 2. Презентация: «Хирургическое лечение компрессионных заболеваний спинного мозга» Хирургического ветеринарного сообщества при содействии ветеринарной клиники «Белый клык». 3.

http://www.vetkzn.ru/veterinarnye_ kliniki/rentgen/.

4. «Ортопедия собак и кошек» / Х. Денни ; С. Баттервоф / «Аквариум ЛТД», 2004 г. 5. Презентация: «Клиника неврологии, травматологии и интенсивной терапии доктора Сотникова», «Миелография» / Санкт-Петербург, 2008 г.

МИР ВЕТЕРИНАРИИ

ВЕТЕРИНАРНОЕ ОБРАЗОВАНИЕ

Спикер-тур с Натальей Игнатенко

Hill’s Pet Nutrition постоянно поддерживает образовательные и инновационные программы для ветеринарных врачей. И этой весной компания «Барбус», официальный дистрибьютор Hill’s в Украине, стала организатором очередного интереснейшего мероприятия. В мае начался лекционный тур на тему «Наиболее частые эндокринные патологии у собак и кошек: секреты диагностики и лечения» с замечательным специалистом и уже полюбившимся лектором Натальей Игнатенко. Наталия Игнатенко – кандидат ветеринарных наук, член европейского

№3 май-июнь 2015

общества дерматологов (ESVD), эндокринологов (ESVE) и онкологов (ESVONC). В рамках программы последипломного образования общества Карла Дуйсберга (Германия) прошла стажировку в клинике мелких животных ветеринарного университета ТиНо (Ганновер, Германия). Закончила интернатуру в хирургической клинике мелких животных под руководством профессоров У. Матис и Р. Кестлина, курс по онкологии мелких животных в отделении онкологии терапевтической клиники под руководством профессора Й. Хиршбергера, интенсивный курс по эндокринологии мелких домашних животных в отделении эндокринологии под руководством доктора А. Ваннера в Людвиг Максимилианс университете (Мюнхен, Германия). Спикер-тур стартовал в гостеприимном южном городе Одесса и продолжился в Киеве, Днепропетровске и Харькове. Семинар вызвал невероятный интерес у ветеринарных врачей из всех регионов Украины. В Киеве 14 мая для столичных ветеринарных специалистов свои двери открыл просторный конференц-зал бизнес-центра «Инком». Программа мероприятия включала в себя лекции Натальи Игнатенко на такие темы: 1. Сахарный диабет кошек: стратегии успешной терапии.

www.veterinars.com

2. Гипотиреоз и синдром эутиреоидной патологии у собак: как не перепутать? Особенности диагностики и лечения гипофункции щитовидной железы у собак. 3. Гипертиреоз кошек: клиническая и субклиническая формы. Всегда ли необходимо лечить? Вниманию ветеринарных специалистов был предоставлен доклад на тему: «Жир-убийца или жир как важный эндокринный орган. Прорыв в решении проблем избыточного веса и ожирения», а также презентация «Новое в диетологии: контроль гипертиреоза кошек. Диетический корм Hill’s Prescription Diet y/d». Обсуждение актуальных вопросов ветеринарной эндокринологии не прекращалось даже во время кофе-брейков и обеда. Ветеринарные врачи задавали вопросы лектору, обсуждали клинические случаи и просто делились опытом друг с другом. После лекционной части участников и гостей семинара ждал розыгрыш приятных призов, вручение сертификатов, а также возможность продолжить общение за несколькими бокалами шампанского в непринужденной атмосфере. До скорой встречи с новыми знаниями и опытом в ветеринарной эндокринологии!

ВЕТЕРИНАРНОЕ ОБРАЗОВАНИЕ

В ДНЕПРОПЕТРОВСКЕ ПОД ЭГИДОЙ ЦЕНТРА ВЕТЕРИНАРНОЙ ПОМОЩИ «ЭЛИТВЕТ» СОСТОЯЛАСЬ ВЕТЕРИНАРНАЯ КОНФЕРЕНЦИЯ 1–2 мая 2015 года состоялась вторая масштабная ветеринарная конференция в г. Днепропетровске. Традиционно конференцию организовали ЦВП «Элитвет» совместно с факультетом ветеринарной медицины Днепропетровского Государственного аграрно-экономического университета, а также компанией MSD Animal Health. Хочется отметить и отдельно поблагодарить заведующую кафедрой клинической диагностики и внутренних болезней животных к.вет.н. Наталью Суслову. Благодаря ей на факультете ветеринарной медицины слушателям были предоставлены два лекционных зала, аудитория для мастер-классов. Спонсоры смогли комфортно расположиться в холле. Очень приятно, что второй год подряд нас поддерживает компания, являющаяся одним из лидеров на мировом ветеринарном рынке – MSD Animal Health. Мы надеемся и на дальнейшее сотрудничество во благо развития ветеринарии в нашей стране, и особенно в Днепропетровском регионе. Поддержали организацию и проведение конференции 10 компанийспонсоров: Vetbio Group, «Артериум», «Гранд Шериф», Beafar, «Интермед», «Кормотех», новая компания «Одежда для супергероев». Информационными спонсорами выступили журнал «Мир ветеринарии», ЦВМ «Хелс» г. Сумы, ветеринарная клиника «Айболит», г. Одесса. Участие спонсоров в нестабильное для нашей страны время сыграло важную роль в организации мероприятия. Несмотря на праздничные дни, конференцию посетило более 200 человек из разных городов Украины. Киев, Харьков, Сумы, Одесса, Запорожье – это небольшой список географии данного мероприятия. Особое внимание в этом году было уделено мастерклассам. Благодаря тому, что ветеринария последние годы очень активно развивается, практически в каждом ветеринарном кабинете есть аппарат ультразвуковой диагностики, но практического обучения в этой сфере недостаточно. В связи с этим было организовано 2 мастер-класса. Мастер-класс «Ультрасонография брюшной полости собак» под руководством Александра Кудрявцева включал 12 человек, хотя желающих было гораздо больше.

Мастер-класс «УЗИ глазного яблока» посетили 8 человек. Практические навыки, приобретение опыта – одна из самых важных составляющих ветеринарного врача-специалиста. Однако неожиданные трудности у организаторов все-таки возникли. Все с нетерпением ожидали харизматичного, опытного лектора и врача-офтальмолога Александра Константиновского. Вся подготовка к конференции началась с того момента, когда Александр смог выкроить в своем насыщенном графике 2 дня и подтвердил свое присутствие. Но в последний момент все пошло не так, как ожидалось. Сложные отношения между нашими странами, Россией и Украиной, сыграли свою отрицательную роль и добавили еще больше разочарования. А. Константиновского не пустили на территорию Украины. В связи с этим организаторам, в последний момент, даже последнюю ночь, пришлось экстренно искать врача-офтальмолога. При этом качество обучения слушателей пострадать не должно было. Огромное спасибо Владимиру Нестерчуку, офтальмологу ветеринарной клиники «Зоолюкс», г. Киев, который смог помочь в этой ситуации и все прошло на должном уровне. В этом году с докладами выступили как профессиональные лекторы, так и начинающие докладчики, но профессионалы ветеринарного дела, которые хотят делиться своим опытом и знаниями. Профессиональные доклады Олеси Фиськович (клиника «Зоолюкс», г. Киев) по дерматологии посетили большинство слушателей, МРТ-диагностику доступно и просто

осветил Виталий Романишин (ЦСВМ, г. Киев), о сложных операциях из собственной практики и особенностях их проведения рассказал Сергей Киянченко (клиника «5 элемент», г. Васильков), плюсы анестезиологии, споры и дискуссии на эту тему развеял Сергей Бондарь (ЦВМ «Хелс», г. Сумы), о пломбах, коронках и других новинках в ветеринарной стоматологии с интересом слушали как новички, так и опытные врачи. Доклад по стоматологии представил Сергей Ткаченко (ЦВП «Элитвет», г. Днепропетровск). Массу положительных эмоций и интерес вызвали доклады Анны Степаненко (клиника «Кот+Пёс», г. Харьков) об экзотических животных. О демодекозе во всех тонкостях доложила Мария Ткаченко (ЦВП «Элитвет», г. Днепропетровск). Несмотря на то, что лекция о лабораторных исследованиях была последней, ее посетило значительное количество слушателей, которые с любопытством прослушали доклад Р. И. Кальницкой (ЦВМ «Хелс», г. Сумы). Для выпускников, а также для врачей, только начинающих частную практику/ветеринарный «бизнес», интересны были доклады Александра Кирилюка (г. Житомир) и Сергея Кондрата (г. Киев). Не менее интересными были доклады и презентации представителей компаний-участниц и спонсоров конференции. Надеемся, традиция первомайские праздники проводить с коллегами в Днепропетровске закрепится на долгие годы. И это очень хорошо. Предлагаем всем планировать уже сейчас, так как третья конференция обязательно состоится. До новых встреч! ЦВП - центр ветеринарной помощи

www.mirvet.com.ua

МИР ВЕТЕРИНАРИИ