Infecciones cutáneas bacterianas by Grupo Asís

DOSIER DE

Alberto Martin Cordero

PRESENTACIÓN Infecciones

cutáneas

bacterianas

en pequeños animales

Servet (División de Grupo Asís Biomedia S.L.) Centro Empresarial El Trovador, planta 8, oficina I Plaza Antonio Beltrán Martínez, 1 • 50002 Zaragoza (España) Tel.: +34 976 461 480 • Fax: +34 976 423 000 • www.grupoasis.com

Infecciones cutáneas bacterianas

Alberto Martin Cordero

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Infecciones cutáneas bacterianas en pequeños animales

Infecciones

cutáneas

bacterianas

en pequeños animales Alberto Martin Cordero

AUTOR: Alberto Martin Cordero FORMATO: 17 x 24 cm NÚMERO DE PÁGINAS: 96 NÚMERO DE IMÁGENES: 117. ENCUADERNACIÓN: tapa semi-rígida

PVP

45 €

Esta obra describe las infecciones cutáneas bacterianas más coIncluye

eBook

munes en perros y gatos, su presentación clínica y agentes etiológicos; brindando consejos y técnicas prácticas para su identificación y manejo, a través de imágenes claras, tablas y esquemas. Además, otorga al médico veterinario herramientas para tratar con infecciones resistentes, así como los últimos avances en terapia tópica y sistémica.

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Infecciones cutáneas bacterianas en pequeños animales

Presentación de la obra Las infecciones cutáneas bacterianas representan un porcentaje elevado de las complicaciones que pueden encontrarse en las diferentes dermatosis. Existen distintas condiciones que pueden generar la sobrepoblación bacteriana del microbioma cutáneo, asimismo existen organismos contaminantes secundarios causantes de dermatosis en perros y gatos. En esta era en la que la resistencia bacteriana crece de manera exponencial, se hace indispensable el diagnóstico y control oportuno de las infecciones cutáneas bacterianas, con el fin de establecer un control en nuestros pacientes. Esta obra guiará al médico veterinario en el diagnóstico y la identificación de las diferentes infecciones cutáneas bacterianas, en el conocimiento de las infecciones resistentes, así como en el manejo terapéutico tópico y sistémico, evaluando las últimas terapias y descubrimientos para el manejo de estas infecciones. Por todo ello, el médico veterinario podrá hacer uso de este libro para alcanzar el éxito terapéutico y diagnóstico en enfermedades bacterianas de la piel y sus diferentes complicaciones.

Infecciones cutáneas bacterianas en pequeños animales

El autor Alberto Martin Cordero El Dr. Alberto Martin Cordero recibió el título de Médico Veterinario Zootecnista por la Universidad de Guadalajara y obtuvo el Posgrado de Dermatología Veterinaria por la European School for Advanced Veterinary Studies de la Universidad de Luxemburgo. Ha realizado cursos de capacitación en el NAVC Institute en Florida y estancias en las Animal Dermatology Clinics en Colorado State University (California, EE. UU.) y Ludwig Maximilian University (Múnich, Alemania). Es diplomado de facto por el Latin American College of Veterinary Dermatology. Actualmente se dedica a la práctica privada y es propietario de “Vetderm: Dermatología Veterinaria Especializada”, primera clínica de referencia dermatológica en Guadalajara (Jalisco, México). Además, es profesor adscrito al Departamento de Medicina Veterinaria de la Universidad de Guadalajara.

Sus intereses principales son las enfermedades de los oídos de perros y gatos, así como las enfermedades alérgicas de la piel y la videotoscopia. Ha publicado diversos artículos y casos clínicos a nivel nacional e internacional, y ha participado como ponente en congresos en México, Centroamérica, Sudamérica, Europa del Este y Asia.

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Es miembro del Comité de Programación para el North American Veterinary Dermatology Forum (NAVDF), socio fundador de la Sociedad Latinoamericana de Dermatología Veterinaria (SLDV) y coordinador del área de Dermatología Veterinaria para el Congreso Veterinario de León.

Infecciones

cutĂĄneas

bacterianas

en pequeĂąos animales Alberto Martin Cordero

Índice de contenidos 1. Microbioma cutáneo y diagnóstico de infecciones cutáneas bacterianas Microbioma cutáneo e infecciones cutáneas Microbioma y microbiota Infecciones cutáneas bacterianas Bacterias residentes o transitorias

Pioderma mucocutáneo Lesiones cutáneas Hallazgos diagnósticos Manejo terapéutico

Foliculitis bacteriana superficial Lesiones cutáneas Hallazgos diagnósticos Manejo terapéutico

Bacterias residentes Bacterias transitorias

Dermatitis atópica canina y disbiosis

Diagnóstico de infecciones cutáneas bacterianas Citología cutánea Colecta de las muestras Impresión directa con portaobjetos Citología con cinta transparente Técnica de Tzanck Citología de la cama de la uña

Tinciones Observación microscópica

2. Infecciones bacterianas superficiales Dermatitis piotraumática Lesiones cutáneas Hallazgos diagnósticos Manejo terapéutico

Intertrigo Lesiones cutáneas Hallazgos diagnósticos Manejo terapéutico

Impétigo Lesiones cutáneas Hallazgos diagnósticos Manejo terapéutico

3. Infecciones bacterianas profundas Lesiones cutáneas Toma de muestras y hallazgos citológicos Foliculitis, forunculosis profunda y celulitis Forunculosis Lesiones cutáneas Hallazgos diagnósticos Manejo terapéutico

Abscesos Lesiones cutáneas Hallazgos diagnósticos Manejo terapéutico

Celulitis Lesiones cutáneas Hallazgos diagnósticos Manejo terapéutico

Infecciones por micobacterias Manejo terapéutico Tratamiento de granuloma leproide Tratamiento de lepra felina

Actinomicosis Lesiones cutáneas Hallazgos diagnósticos Manejo terapéutico

Nocardiosis Lesiones cutáneas Hallazgos diagnósticos Manejo terapéutico

4. Pseudopiodermas Pioderma de callos Tratamiento y manejo

Celulitis juvenil Acné Foliculitis y forunculosis eosinofílica facial

5. Cultivo bacteriológico y su interpretación Elección del laboratorio Criterios para la toma de cultivo bacteriológico Citología en el diagnóstico y tratamiento de infecciones bacterianas Recurrencia no es resistencia Materiales Medio de transporte para cultivo Técnica

Concentración mínima inhibitoria y puntos de quiebre Elección del medicamento antimicrobiano

6. Terapéutica tópica de las infecciones bacterianas cutáneas Principios generales de terapia tópica Agentes antimicrobianos y sus principios de acción Clorhexidina Miconazol Peróxido de benzoilo Lactato de etilo Fluoruro de estaño Triclosán Mupirocina

Compuestos de plata Fitoesfingosina Povidona yodada Hipoclorito de sodio

7. Terapéutica sistémica de las infecciones bacterianas cutáneas Elección del antibiótico sistémico Duración del tratamiento Cumplimiento por parte del propietario

8. Resistencia bacteriana y mecanismos de resistencia Implicaciones zoonóticas de MRSP Variantes y clonalidad de MRSP

Biofilm Contaminación y desinfección de áreas hospitalarias y personal médico

Bibliografía

INFECCIONES CUTÁNEAS BACTERIANAS en pequeños animales

Tabla 1. Diversidad de la microbiota cutánea en perros, gatos y humanos en diferentes sitios de muestreo, de acuerdo con algunos estudios. Huésped

Perro

Gato

Humano

Sitios cutáneos y condición cutánea

Composición de la microbiota

Superficie mucosa o uniones mucocutáneas

Proteobacteria, Firmicutes, Actinobacteria y Bacteroidetes. Moraxella (predominante en narina), Proteobacteria y Bacteroidetes en comisura labial.

Piel con pelo

Proteobacteria (más abundante), Firmicutes, Actinobacteria y Bacteroidetes.

Piel normal

Proteobacteria, Bacteroidetes y Actinobacteria (mayor abundancia en cavidad oral).

Piel seca

Actinobacteria, Firmicutes, Proteobacteria y Bacteroidetes.

Piel húmeda

Staphylococcus y Corynebacterium.

Piel seborreica

Propionibacterium.

La disbiosis (también llamada disbacteriosis) es el desequilibrio microbiano de la microbiota normal, debido a cambios cuantitativos o cualitativos de su composición, cambios en su funcionamiento o actividades metabólicas, o bien a cambios en su distribución. Se estima que el número de bacterias que colonizan el cuerpo humano es diez veces superior al número de células humanas. Estos microbios, además de colonizar, contienen genes funcionales responsables de sintetizar numerosos metabolitos que pueden influir en la salud del huésped. En el caso de los humanos se estima que la piel humana está habitada por aproximadamente un millón de bacterias por cm², predominando estas y secundándolas en menor medida los hongos y los virus. Es de gran importancia conocer la microbiota normal de nuestros pacientes para poder entender el desequilibrio que se presenta en la mayoría de las dermatosis y, por este

medio, poder desarrollar en el futuro estrategias de control de las infecciones secundarias cutáneas con el fin de disminuir la cantidad de agentes antimicrobianos utilizados. Estos, cuando son usados de forma continua y desmesurada, generan a largo plazo la aparición de organismos multirresistentes, que complican el tratamiento de los factores secundarios de infección presentes en muchas de las dermatosis.

Los estudios enfocados al microbioma cutáneo han ganado interés en los últimos diez años.

El microbioma es único y entre las diferentes especies presenta variantes importantes que están relacionadas con la edad, el sexo, la higiene, el estilo de vida e incluso el ambiente.

MicrobioMa cutáneo y diagnóstico de infecciones cutáneas bacterianas

Infecciones cutáneas bacterianas Las bacterias cutáneas se localizan en la epidermis superficial y el infundíbulo de los folículos pilosos, donde el sudor y el sebo proveen de nutrientes. La biota normal es una mezcla de bacterias que viven en simbiosis, que puede cambiar en función de la situación ambiental cutánea. Esta puede verse modificada por medio de factores como el calor, el pH, la salinidad, la humedad y los niveles de albúmina y ácidos grasos. En gatos y, en mayor medida, en perros, las infecciones cutáneas bacterianas son una de la causa más frecuente de complicación en las diferentes dermatosis. Estas infecciones normalmente se consideran complicaciones secundarias y pueden afectar diferentes estratos de la piel y tener diferente gravedad.

La mayoría de las infecciones cutáneas en perros presenta una causa subyacente, que puede ser inflamatoria, debida a un desorden de queratinización o secundaria a una parasitosis cutánea.

Cuando existe evidencia clínica de una infección bacteriana, el veterinario deberá siempre considerar cuál es el factor primario que la desencadenó, y utilizar herramientas diagnósticas para encontrar y corregir esa causa primaria con el fin de evitar la presentación de las complicaciones bacterianas en el futuro.

Bacterias residentes o transitorias Las bacterias aisladas de la piel normal se denominan habitantes normales, y se pueden clasificar en transitorias o residentes en función de su capacidad de multiplicarse en dicho hábitat.

Bacterias residentes Las bacterias residentes (tabla 2) tienen la capacidad de multiplicarse en piel normal. Algunos estudios han permitido diferenciar adecuadamente las bacterias residentes de aquellas que pueden ser originadas por una contaminación repetida de la piel.

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Tabla 2. Variedad de bacterias consideradas residentes en diferentes áreas de la piel. Área anatómica

Superficie cutánea

Bacteria residente Micrococcus spp., estafilococo coagulasa negativo (especialmente Staphylococcus epidermidis y Staphylococcus xylosus), estreptococo α-hemolítico, Clostridium spp., Propionibacterium acnes, Acinetobacter spp. y varios aerobios gramnegativos.

Tallos pilosos

Micrococcus spp., aerobios gramnegativos, Bacillus spp. y Staphylococcus pseudintermedius.

Folículo piloso

Micrococcus spp., P. acnes, estreptococos, Bacillus spp. y S. pseudintermedius.

Pelo

Bacterias transitorias Las bacterias transitorias pueden ser aisladas de la piel, pero no tienen un significado clínico a menos que se transformen en invasores y estén presentes en un proceso patológico, ya que habitualmente no se multiplican en la piel normal de la mayoría de los animales. Algunas de las bacterias transitorias en el perro son Escherichia coli, Proteus mirabilis, Corynebacterium spp., Bacillus spp., Pseudomonas spp. y estafilococos coagulasa positivos.

Dermatitis atópica canina y disbiosis La dermatitis atópica canina es una enfermedad inflamatoria, pruriginosa, crónica, con factor genético, por medio de la cual se genera una sensibilización y creación de IgE específica frente a diversos alérgenos ambientales o alimentarios. Esto genera un proceso inflamatorio cutáneo y pruriginoso que tiene como consecuencia, entre otras, la aparición de infecciones secundarias por bacterias y/o levaduras comensales. En algunas ocasiones los perros pueden generar sensibilización hacia Staphylococcus pseudointermedius o Malassezia pachydermatis, que son algunos de los principales organismos causantes de las infecciones secundarias en pacientes con dermatitis atópica. Esto da como resultado un empeoramiento de los signos clínicos ante la presencia de estos agentes secundarios, generando así una mayor respuesta inflamatoria y pruriginosa en los pacientes con estas infecciones. Las lesiones cutáneas se exacerban debido a la presencia de estas bacterias, lo que genera la aparición de pápulas, pústulas o costras.

MicrobioMa cutáneo y diagnóstico de infecciones cutáneas bacterianas

Diagnóstico de infecciones cutáneas bacterianas Citología cutánea La citología constituye una de las herramientas más importantes en el diagnóstico dermatológico. Otorga una gran cantidad de información y es la prueba más utilizada en la consulta de dermatología. La citología cutánea se puede definir como la evaluación microscópica de las células y los organismos localizados en la superficie de la piel. Además de ser una prueba que aporta gran cantidad de información, su precio es muy inferior al de otras pruebas, como la biopsia, el cultivo bacteriológico o el cultivo de hongos. Puede suponer un ingreso económico considerable para la clínica, debido a su bajo costo, su aporte diagnóstico y la posibilidad de nuevos chequeos, que permiten evaluar la evolución del paciente y modificar la terapia de acuerdo con los hallazgos citológicos. Al comenzar a utilizar la citología básica, el clínico podrá ser capaz de identificar microorganismos presentes en las muestras cutáneas y, por tanto, comenzar a diferenciar entre bacterias y levaduras.

Colecta de las muestras Para la colecta de las muestras en citología cutánea se utilizan diferentes materiales: ■ Hisopos ■ Portaobjetos ■ Espátula ■ Hoja de bisturí ■ Aguja calibre 26G o 22G ■ Cinta transparente

Es importante elegir correctamente la técnica que se va a utilizar para la colecta de la muestra, dependiendo del tipo de lesión o incluso de la localización anatómica.

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Impresión directa con portaobjetos La impresión directa con portaobjetos es la técnica preferida por el autor, ya que se lleva a cabo de una manera práctica y rápida, proporcionando información valiosa y sin que exista demasiada contaminación con partículas o residuos. Se realiza ejerciendo presión ligera a moderada sobre la lesión, que puede estar debajo de una costra (fig. 1) o ser de collarete epidérmico (fig. 2), exudativa, ulcerativa, pustular (fig. 3) o papular (fig. 4). Sin embargo, no es adecuada para tomar muestras de los espacios interdigitales, debido a que el portaobjetos no se puede colocar fácilmente en esta área. Así mismo, no se recomienda para lesiones exfoliativas secas, ya que estas no permiten la adherencia de material citológico en la laminilla o portaobjetos. No obstante, en algunas lesiones exfoliativas (fig. 5) puede emplearse. a

Figura 1. Toma de muestra por impresión directa con portaobjetos de una lesión costrosa localizada en el puente nasal. (a) El portaobjetos puede usarse para levantar la costra de la lesión. (b) Con el portaobjetos, se realiza una impronta de la lesión bajo la costra.

Figura 2. Toma de muestra mediante impresión directa con portaobjetos de una lesión de collarete epidérmico. (a) (b) El canto del portaobjetos se utiliza para levantar el margen de la lesión. (c) Se realiza una impresión de la lesión presionando moderadamente el portaobjetos sobre el borde del collarete epidérmico.

MicrobioMa cutáneo y diagnóstico de infecciones cutáneas bacterianas

Figura 3. Toma de muestra mediante impresión directa con portaobjetos de una lesión pustular. (a) Aspecto de la lesión. (b) La pústula se abre utilizando el borde del portaobjetos. (c) (d) Al mismo tiempo, se presiona el portaobjetos y se desliza para recoger el material.

Figura 4. Toma de muestra por impresión directa con portaobjetos de una lesión papular. (a) El portaobjetos se utiliza para realizar la impronta. (b) Al mismo tiempo, el portaobjetos se desliza.

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Figura 5. Toma de muestra por impresión directa con portaobjetos de una lesión exfoliativa. (a) Aspecto de la lesión. (b) Se realiza un raspado utilizando el canto del portaobjetos. (c) (d) Al mismo tiempo que se ejerce el movimiento de raspado, con una presión ligera a moderada se realiza una impronta del área en contacto con el portaobjetos.

Citología con cinta transparente El uso de la cinta transparente o impresión con cinta de acetato tiene diferentes aplicaciones en el campo de la dermatología veterinaria. Las más destacadas son su utilización como técnica añadida al raspado cutáneo y la colecta de material para evaluación citológica. La citología con cinta transparente constituye una técnica muy económica y sencilla de realizar que aporta un importante valor diagnóstico. El material que se requiere es básicamente una cinta de acetato transparente como las que se utilizan como material para oficina. El uso de la cinta de acetato es de particular utilidad en la colecta de material para evaluación citológica de lesiones secas y áreas de difícil acceso en las que

MicrobioMa cutáneo y diagnóstico de infecciones cutáneas bacterianas

el portaobjetos no puede ser usado para realizar impresiones. Estas áreas son la cama de la uña, los espacios interdigitales figs. 6 y 7), el área periocular y las zonas de pliegues. Una vez tomada la muestra, la cinta transparente se adhiere a uno de los extremos de un portaobjetos, lo que permitirá utilizarlo como un mango para proceder a la tinción (figs. 7 y 14).

Técnica de Tzanck Esta técnica de colecta consiste en puncionar una lesión pustular, vesicular o bullosa por medio de una aguja y colocar el material contenido sobre un portaobjetos (fig. 8).

Figura 6. Eritema e inflamación entre los cojinetes plantares de un Bulldog Inglés con dermatitis atópica canina.

Figura 7. Colecta de material para evaluación citológica mediante cinta transparente. (a) La cinta se coloca en la zona afectada y se ejerce presión sobre el sitio a muestrear. (b) A continuación, la cinta se desprende y (c) se coloca en un extremo del portaobjetos para utilizarlo como medio de sujeción para la tinción.

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Figura 8. Toma de muestra de una lesión pustular mediante la técnica de Tzanck. (a) La pústula se punciona con una aguja de calibre 26G. (b) El material se colecta por medio de un portaobjetos o de la aguja empleada, evitando tener contacto con la piel o ejerciendo presión sobre esta. (c) El material colectado se extiende sobre el portaobjetos.

La ventaja de esta técnica sobre la de impresión directa con portaobjetos es que no existe riesgo alto de contaminación bacteriana, ya que se procura evitar el contacto con la piel que rodea la lesión.

Citología de la cama de la uña La cama de la uña suele ser un área a la que el clínico no presta especial atención. Sin embargo, en pacientes alérgicos (fig. 9) puede albergar infecciones por levaduras y bacterias, lo que genera signos clínicos de prurito en la zona.

Si se observan signos de prurito, inflamación o cambio de coloración en la cama o base de la uña, se sugiere realizar una citología.

Las muestras para citología de la cama de la uña se pueden colectar por medio del canto del portaobjetos (fig. 10), aunque esta técnica a menudo puede causar daño en el área. También puede utilizarse un palillo de madera o mondadientes como menciona un estudio reciente (Rosenkrantz, 2016), una espátula de metal (fig. 11) o incluso cinta transparente (fig. 12). En caso de utilizar un palillo de dientes o una espátula, el material colectado se extiende a continuación sobre un portaobjetos.

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Figura 9. Cama de la uña con cambios de coloración en la base e inflamación.

Figura 10. Toma de muestra de la cama de la uña mediante portaobjetos. (a) El material se colecta presionando con un portaobjetos sobre la zona. (b) El material colectado queda adherido al portaobjetos.

Figura 11. Colecta de muestra de la cama y la base de la uña con una espátula de metal. (a) Por medio de la espátula, se realiza un raspado ligero. (b) Se obtiene el material. (c) El material se extiende sobre un portaobjetos.

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Figura 12. Para la colecta de muestras de la cama de la uña con cinta transparente, esta se pega en el área elegida y se despega.

Tinciones Una vez colectada la muestra para citología se lleva a cabo su tinción. Los métodos de tinción más utilizados en dermatología son el Diff-Quik o hemocolorante rápido (figs. 13 y 14) y el nuevo azul de metileno. El Diff-Quik es una tinción de tipo Romanowsky que proporciona menor detalle nuclear que las tinciones supravitales, sin embargo, permite una diferenciación citoplasmática bastante buena y la visualización de estructuras citoplasmáticas y de microorganismos. Dado que la mayoría de las enfermedades que se evaluarán serán de tipo no neoplásico, es el método de elección. La tinción mediante el método de Gram puede utilizarse para evaluar bacterias, especialmente en muestras óticas, sin embargo, no proporciona un valor añadido y es menos práctica que el Diff-Quik. El Diff-Quik está compuesto por tres soluciones: una solución fijadora (1), una solución roja (2) y una solución de color morado (3). Para la tinción, la muestra se introduce durante 5 segundos 3 veces en cada una de ellas siguiendo el orden 1, 2 y 3, y sin regresar a la solución anterior. No obstante, el autor prefiere sumergirla durante 15 a 20 segundos en cada una. Una vez teñida la muestra, se enjuaga con agua destilada o preferiblemente con agua corriente potable, y se deja secar. Cuando está seca, se procede a la observación y evaluación microscópica. Si se desea preservar la muestra citológica para realizar evaluaciones en el futuro o iniciar una colección, puede colocarse un cubreobjetos y fijarlo con una resina.

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